Астра электрофорез белковых фракций

Предлагаем вашему вниманию устройство электрофореза сыворотки крови УЭФ-01-«Астра» (регистрационное удостоверение N ФСР 2009/04670 от 07.05.2018) и программу обработки данных электрофореза «Анализ ФСК», которая совместно с персональным компьютером и планшетным сканером выполняет функции денситометра.

Устройство УЭФ-01-«АСТРА» позволяет проводить:

электрофорез белков сыворотки крови,
электрофорез с иммунофиксацией,
электрофорез липопротеидов,
электрофорез белков в моче,
электрофорез гликозамингликанов (ГАГ)

Устройство УЭФ-01-«АСТРА» состоит из:

Источника питания
Камеры деления для белков сыворотки крови
Камеры деления для иммунофиксации
Комплекта аппликаторов для нанесения проб на АЦ мембраны
Комплекта планшетов для проб пациентов
Комплекта мостиков для закрепления мембран в камере
Комплекта емкостей для реагентов
Емкостей для дезинфекции

Источник питания представляет собой программируемый источник напряжения. Питается от сети 220 В ± 10 %, частота 50 Гц. Имеет возможность регулировки: — по напряжению U = 10 … 300 В (дискретность 2 В); — времени t = 1 … 99 мин. (дискретность 1 мин).

Источник питания не требует времени подготовки к работе.

В процессе электрофореза имеется возможность контролировать заданные и текущие параметры (напряжение, ток, время), которые отображаются на индикаторе. Существует, также, звуковая сигнализация режимов работы (таймер, обрыв цепи, короткое замыкание, окончание работы).

Источник питания имеет восемь режимов работы. Каждый режим можно запрограммировать на свой вид анализа. Имеются возможность изменения запрограммированных параметров. Габаритные размеры источника питания 200х202х113 мм.

Камера деления позволяет работать одновременно с тремя ацетатцеллюлозными пленками формата 57х95 мм. Конструкция камеры обеспечивает наиболее оптимальные параметры для электрофореза, а также электрическую безопасность персонала при работе. Габаритные размеры камеры деления 298х180х85 мм.

Камера для иммунофиксации позволяет производить электрофорез гемоглобина и электрофорез с иммунофиксацией.

Многоразовый аппликатор позволяет наносить на пленку одновременно 8 проб сыворотки крови. Объем наносимой пробы — не более 0,2 мкл. Аппликатор имеет конструкцию, защищающую рабочую поверхность от механических повреждений при падении и ударах.

Аппликаторы, мостики для закрепления пленки и планшеты для раскапывания сыворотки крови имеют цветовую маркировку, исключающую ошибку в нумерации проб.

Полученная в результате электрофореза пленка, обработанная специальным образом (окраска, закрепление), помещается в сканер. Считывание результатов электрофореза и их обработка производится с помощью специальной программы (С) “Анализ фракций сыворотки крови”, которая совместно с персональным компьютером и планшетным сканером выполняет функции денситометра.

Программа обработки данных электрофореза имеет банк образцов, позволяющий сохранить изображение необработанной пленки в течение необходимого времени. Это удобно при выполнении большой серии проб.

Обработка результатов анализа производится автоматически одновременно для всех нанесенных на пленку проб. При некачественном разделении или нестандартном распределении фракций возможно ручное редактирование. Программа рассчитывает процентное содержание белков, их содержание в грамм/литр, строит график распределения фракций.

Результаты анализа вместе с изображением исследуемой фореграммы можно поместить в архив и при необходимости извлечь и распечатать. Информация хранится в архиве сколь угодно долго.

Предусмотрена возможность сортировки информации в архиве по имени, дате, номеру анализа и др.

Информация на печать выводится в виде протокола, на котором кроме результатов анализа имеются, сведения о пациенте, лечебном учреждении, времени и дате анализа, необходимые комментарии и т.д.

В стандартный комплект поставки входит стартовый набор расходных материалов для электрофореза белков сыворотки крови. Для производства других типов анализов необходимо заказать соответствующие комплекты расходных материалов.

п/п

Наименование Устройство электрофореза белков сыворотки крови УЭФ-01-«АСТРА» в составе: Источник питания 1 Камера деления для белков 1 Камера для гемоглобина и иммунофиксации 1 Аппликатор на 8 позиций 3 Мостик для закрепления пленки 3 Планшет для образцов двойной 3 Планшет-фиксатор двойной 1 Емкость для реактивов вертикальная 4 Картридж для пленки 2 Планка прижимная 3 Поддон для ёмкостей 1 Емкость для дезинфекции 2 Шнур сетевой 1 Предохранитель 2А 2

Стартовый комплект реагентов на 800 анализов для проведения электрофореза белков в составе:

Мембрана из ацетата целлюлозы для электрофореза белков,57х95 мм, (50 шт./уп.)- 2 уп.

Клинитест- ЭФ 1 уп, РФ-18- 2 уп.

Компьютерный комплекс в составе: Системный блок OC Win10 Home

источник

УСТРОЙСТВО ЭЛЕКТРОФОРЕЗА БЕЛКОВ СЫВОРОТКИ КРОВИ НА ПЛЕНКАХ ИЗ АЦЕТАТА ЦЕЛЛЮЛОЗЫ

С РЕГУЛИРУЕМЫМИ ПАРАМЕТРАМИ НАПРЯЖЕНИЯ,

СИЛЫ ТОКА И РЕЖИМОВ УЭФ-01-«АСТРА»
Руководство по эксплуатации

АСТР.054954.001 РЭ

г. УФА, 2010

1. Технические данные . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .	4
2. Принцип работы . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .	5
3. Ввод в эксплуатацию . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .	6
4. Подготовка прибора к работе . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .	–
5. Порядок работы . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .	9
6. Завершение работы . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .	12
7. Программирование прибора . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .	13
8. Техническое обслуживание . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .	–
9. Характерные неисправности и методы их устранения . . . . . . . . . . . . . . .	14
10. Меры безопасности . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .	–
11. Упаковка, хранение, транспортировка . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .	–
12. Гарантии изготовителя . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .	–
13. Дезинфекция устройства . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .	15
14. Приложение 1 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .	16
15. Приложение 2 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .	17
16. Приложение 3 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .	18

Устройство электрофореза сыворотки крови на пленках из ацетата целлюлозы с регулируемыми параметрами напряжения, силы тока и режимов УЭФ-01-«АСТРА» (в дальнейшем – устройство) предназначено для исследования спектра сыворотки крови методом электрофореза в биохимических, клинико-диагностических и научных лабораториях медицинских учреждений.
Устройство поставляется в следующем комплекте

Наименование	Системный номер	Количество
Источник питания	101001	1 шт.
Камера деления	101002	1 шт.
Аппликатор на 8 позиций	101003	3 шт.
Мостик для пленки формата 57Ч140 мм	101004	3 шт.
Планшет на 8 позиций	101005	3 шт.
Емкости для реактивов	101006	5 шт.
Емкость для дезинфекции	101009	1 шт.
Сетевой шнур источника питания	101010	1 шт.
Рабочий столик	101007	1 шт.

К работе с устройством допускается медперсонал, ознакомившийся с настоящим руководством и прошедший специальное обучение.

1. ТЕХНИЧЕСКИЕ ДАННЫЕ
Источник питания

Напряжение питания	220 V, 50 Гц
Потребляемая мощность	не более 200 ВЧА
Рабочий выходной ток	1. 99 mA (дискретность 1 mA)
Напряжение на выходе	2. 350 В (дискретность 1 В)
Время работы	1…99 мин (дискретность 1 мин.)
Электрическая защита	от короткого замыкания (ограничение по току и отключение), от обрыва цепи (отключение)
Элементы сигнализации	четырехразрядный индикатор (три разряда – цифровая информация, один разряд – регулируемый параметр), наличие светодиодов «Режим», пьезоэлектрический звукоизлучатель
Сигнализация	текущие параметры, обрыв цепи, короткое замыкание
Габаритные размеры	120Ч170Ч220 мм
Материал и тип электродов	титановые
Материал корпуса	химически стойкий пластик
Тип носителя	мембраны из ацетата целлюлозы
Размеры носителя	57Ч140 мм
Количество аппликаторов в комплекте	3Ч8 позиций

2. ПРИНЦИП РАБОТЫ
Принцип электрофоретического разделения веществ заключается в использовании свойства их перемещения в постоянном электрическом поле определенной напряженности. Скорость перемещения веществ в этом случае зависит от электрического заряда их молекул, от молекулярной массы и других факторов. Наиболее удобным для использования в клинической практике является зональный электрофорез на поддерживающих средах-носителях, в качестве которых используется хроматографическая бумага, ацетатцеллюлозные мембраны, агаровый, крахмальный или полиакриламидный гели и др., а также комбинированные среды.

Электрофорез на бумаге все ещё применяется в некоторых лабораториях, однако, этот способ имеет существенные недостатки: низкое качество разделение на фракции из-за неоднородности бумаги, длительность процессов разделения, окрашивания, отмывания и т. д. Электрофорез в агаровом, крахмальном и особенно в полиакриламидном геле дает существенно лучшие результаты, позволяя получать четкое разделение и идентифицировать большее количество белковых фракций сыворотки (до 30), но ему присущи свои недостатки — сложность процедуры приготовления геля и дороговизна готовых гелевых пластин. Использование для электрофореза мембран из ацетата целлюлозы позволяет достигнуть компромисса и использовать главные особенности пленок – химическую однородность материала и одинаковый размер пор, очень малую емкость слоя, требующую малый объём пробы (0,2–2 мкл), быстроту разделения и окраски белков (20–80 мин), незначительный эндоосмос, легкость отмывания фона, а также относительно низкую их стоимость.

Знак и величина заряда молекул, а значит, направление и скорость их движения при электрофоретическом разделении зависят от значения рН и ионной силы среды. В связи с этим для получения сопоставимых данных электрофорез должен осуществляться при строго определенном значении указанных параметров, т. е. в стандартном буферном растворе. В качестве электролита для электрофореза белков сыворотки крови чаще всего применяются веронал-мединаловый, веронал-ацетатный, мединал-цитратный с рН=8,6 или трис-буфер с рН=8,9; для электрофореза липопротеидов – веронал-мединаловый с рН=8.6. 8.8 или трис-глициновый буфер.

Устройство электрофореза УЭФ-01-«АСТРА» обеспечивает проведение всех указанных этапов электрофореза на ацетатцеллюлозных пленках.
3. ВВОД В ЭКСПЛУАТАЦИЮ

Освободите от упаковки источник питания и камеру деления. Установите их на ровный стол. Вставьте сетевой шнур источника питания в гнездо «СЕТЬ», расположенное на задней панели источника питания, а шнур «ВЫХОД» – в гнездо на задней стенке камеры деления. Включите прибор в розетку. Включите переключатель «СЕТЬ» находящийся на задней панели. После окончания звукового сигнала и прохождения теста индикации устройство готово к работе.

При отсутствии в лаборатории розетки с заземлением ее следует предварительно установить. Использование заземления обязательно!

4. ПОДГОТОВКА ПРИБОРА К РАБОТЕ
4.1. Подготовка растворов.

Приготовить электродный буфер и красящий раствор в соответствии с инструкцией, прилагаемой к набору реактивов.
4.2. Подготовка аппарата.

Сетевую вилку прибора подключить к сетевой розетке, которая для обеспечения безопасности должна иметь заземляющий контакт.

Подключить к выходному кабелю прибора камеру деления. Налить буфер в камеру так, чтобы его уровень не доходил на 2–3 мм до края барьера, разделяющего два отделения камеры.

Включить выключатель СЕТЬ на задней панели прибора. Запустится тест индикатора (последовательно высветятся цифры от 0 до 9). После окончания теста прозвучит звуковой сигнал, на индикаторе прибора появится надпись Р1 (режим 1).

Если Вы хотите ввести новые параметры – воспользуйтесь пунктом 7 данного Руководства.
4.3. Подготовка проб.

Налить в емкости для реагентов по 100 мл буферного раствора, красителя и отмывающего раствора. Извлеченную из пачки ацетатцеллюлозную пленку аккуратно поместить на поверхность электродного буфера на 10–25 минут, следя за равномерностью смачивания. Слишком быстрое погружение в раствор может привести к задержке пузырьков воздуха в порах. Удалить избыток раствора с поверхности, слегка отжав пленку между листами фильтровальной бумаги. Закрепить пленку в мостике с желтым замком. Маркировать пленку, произведя прокол о шип в основании мостика.

То же проделать еще с двумя пленками и закрепить в мостиках с красным и зеленым замками.

Мостики с закрепленными в них пленками установить в камере деления так, чтобы цветные замки совпадали с меткой «–» камеры.

Включить источник питания согласно пункту 5.1.1.

Закрыть крышку камеры и нажать кнопку ПУСК, начав процедуру префореза. Через 10 минут нажать кнопку СТОП. Данная операция позволяет устранить неоднородное пропитывание и недостатки отжимания ацетатцеллюлозной пленки.

Нанести микропипеткой исследуемые образцы в лунки планшета (первая лунка помечена цифрой «1»).

Заправить аппликатор с желтой меткой исследуемыми образцами из планшета (аппликатор устанавливается желтой стороной к желтой стенке планшета).

Затем установить его на мостик (желтой стороной к желтому замку) и плавно нажать кнопку до соприкосновения скобок аппликатора с поверхностью пленки.

Таким же образом наносятся исследуемые пробы на пленки в мостиках с красной и зеленой меткой.

Нажать кнопку ПУСК ( подробней см. пункт 5.1.).

При проведении электрофореза липопротеидов на каждую пленку наносят большую порцию сыворотки (две аппликации). См. Приложение 1.

5. ПОРЯДОК РАБОТЫ
5.1. Процедура электрофореза:
5.1.1. Запуск прибора в работу.

После включения выключателя СЕТЬ начинается тест индикации, т.е. в каждом разряде индикатора высвечивается последовательность: 0,1,2…9, и горят все светодиоды. После окончания тестирования звучит звуковой сигнал, гасятся светодиоды (кроме светодиода СЕТЬ) и зажигается надпись Р1 (режим 1).

Соответствие символов клавиатуры и режимов работы

источник

Что такое клинические исследования и зачем они нужны? Это исследования, в которых принимают участие люди (добровольцы) и в ходе которых учёные выясняют, является ли новый препарат, способ лечения или медицинский прибор более эффективным и безопасным для здоровья человека, чем уже существующие.

Главная цель клинического исследования — найти лучший способ профилактики, диагностики и лечения того или иного заболевания. Проводить клинические исследования необходимо, чтобы развивать медицину, повышать качество жизни людей и чтобы новое лечение стало доступным для каждого человека.

У каждого исследования бывает четыре этапа (фазы):

I фаза — исследователи впервые тестируют препарат или метод лечения с участием небольшой группы людей (20—80 человек). Цель этого этапа — узнать, насколько препарат или способ лечения безопасен, и выявить побочные эффекты. На этом этапе могут участвуют как здоровые люди, так и люди с подходящим заболеванием. Чтобы приступить к I фазе клинического исследования, учёные несколько лет проводили сотни других тестов, в том числе на безопасность, с участием лабораторных животных, чей обмен веществ максимально приближен к человеческому;

II фаза — исследователи назначают препарат или метод лечения большей группе людей (100—300 человек), чтобы определить его эффективность и продолжать изучать безопасность. На этом этапе участвуют люди с подходящим заболеванием;

III фаза — исследователи предоставляют препарат или метод лечения значительным группам людей (1000—3000 человек), чтобы подтвердить его эффективность, сравнить с золотым стандартом (или плацебо) и собрать дополнительную информацию, которая позволит его безопасно использовать. Иногда на этом этапе выявляют другие, редко возникающие побочные эффекты. Здесь также участвуют люди с подходящим заболеванием. Если III фаза проходит успешно, препарат регистрируют в Минздраве и врачи получают возможность назначать его;

IV фаза — исследователи продолжают отслеживать информацию о безопасности, эффективности, побочных эффектах и оптимальном использовании препарата после того, как его зарегистрировали и он стал доступен всем пациентам.

Считается, что наиболее точные результаты дает метод исследования, когда ни врач, ни участник не знают, какой препарат — новый или существующий — принимает пациент. Такое исследование называют «двойным слепым». Так делают, чтобы врачи интуитивно не влияли на распределение пациентов. Если о препарате не знает только участник, исследование называется «простым слепым».

Чтобы провести клиническое исследование (особенно это касается «слепого» исследования), врачи могут использовать такой приём, как рандомизация — случайное распределение участников исследования по группам (новый препарат и существующий или плацебо). Такой метод необходим, что минимизировать субъективность при распределении пациентов. Поэтому обычно эту процедуру проводят с помощью специальной компьютерной программы.

бесплатный доступ к новым методам лечения прежде, чем они начнут широко применяться;
качественный уход, который, как правило, значительно превосходит тот, что доступен в рутинной практике;
участие в развитии медицины и поиске новых эффективных методов лечения, что может оказаться полезным не только для вас, но и для других пациентов, среди которых могут оказаться члены семьи;
иногда врачи продолжают наблюдать и оказывать помощь и после окончания исследования.

новый препарат или метод лечения не всегда лучше, чем уже существующий;
даже если новый препарат или метод лечения эффективен для других участников, он может не подойти лично вам;
новый препарат или метод лечения может иметь неожиданные побочные эффекты.

Главные отличия клинических исследований от некоторых других научных методов: добровольность и безопасность. Люди самостоятельно (в отличие от кроликов) решают вопрос об участии. Каждый потенциальный участник узнаёт о процессе клинического исследования во всех подробностях из информационного листка — документа, который описывает задачи, методологию, процедуры и другие детали исследования. Более того, в любой момент можно отказаться от участия в исследовании, вне зависимости от причин.

Обычно участники клинических исследований защищены лучше, чем обычные пациенты. Побочные эффекты могут проявиться и во время исследования, и во время стандартного лечения. Но в первом случае человек получает дополнительную страховку и, как правило, более качественные процедуры, чем в обычной практике.

Клинические исследования — это далеко не первые тестирования нового препарата или метода лечения. Перед ними идёт этап серьёзных доклинических, лабораторных испытаний. Средства, которые успешно его прошли, то есть показали высокую эффективность и безопасность, идут дальше — на проверку к людям. Но и это не всё.

Сначала компания должна пройти этическую экспертизу и получить разрешение Минздрава РФ на проведение клинических исследований. Комитет по этике — куда входят независимые эксперты — проверяет, соответствует ли протокол исследования этическим нормам, выясняет, достаточно ли защищены участники исследования, оценивает квалификацию врачей, которые будут его проводить. Во время самого исследования состояние здоровья пациентов тщательно контролируют врачи, и если оно ухудшится, человек прекратит своё участие, и ему окажут медицинскую помощь. Несмотря на важность исследований для развития медицины и поиска эффективных средств для лечения заболеваний, для врачей и организаторов состояние и безопасность пациентов — самое важное.

Потому что проверить его эффективность и безопасность по-другому, увы, нельзя. Моделирование и исследования на животных не дают полную информацию: например, препарат может влиять на животное и человека по-разному. Все использующиеся научные методы, доклинические испытания и клинические исследования направлены на то, чтобы выявить самый эффективный и самый безопасный препарат или метод. И почти все лекарства, которыми люди пользуются, особенно в течение последних 20 лет, прошли точно такие же клинические исследования.

Если человек страдает серьёзным, например, онкологическим, заболеванием, он может попасть в группу плацебо только если на момент исследования нет других, уже доказавших свою эффективность препаратов или методов лечения. При этом нет уверенности в том, что новый препарат окажется лучше и безопаснее плацебо.

Согласно Хельсинской декларации, организаторы исследований должны предпринять максимум усилий, чтобы избежать использования плацебо. Несмотря на то что сравнение нового препарата с плацебо считается одним из самых действенных и самых быстрых способов доказать эффективность первого, учёные прибегают к плацебо только в двух случаях, когда: нет другого стандартного препарата или метода лечения с уже доказанной эффективностью; есть научно обоснованные причины применения плацебо. При этом здоровье человека в обеих ситуациях не должно подвергаться риску. И перед стартом клинического исследования каждого участника проинформируют об использовании плацебо.

Обычно оплачивают участие в I фазе исследований — и только здоровым людям. Очевидно, что они не заинтересованы в новом препарате с точки зрения улучшения своего здоровья, поэтому деньги становятся для них неплохой мотивацией. Участие во II и III фазах клинического исследования не оплачивают — так делают, чтобы в этом случае деньги как раз не были мотивацией, чтобы человек смог трезво оценить всю возможную пользу и риски, связанные с участием в клиническом исследовании. Но иногда организаторы клинических исследований покрывают расходы на дорогу.

Если вы решили принять участие в исследовании, обсудите это со своим лечащим врачом. Он может рассказать, как правильно выбрать исследование и на что обратить внимание, или даже подскажет конкретное исследование.

Клинические исследования, одобренные на проведение, можно найти в реестре Минздрава РФ и на международном информационном ресурсе www.clinicaltrials.gov.

Обращайте внимание на международные многоцентровые исследования — это исследования, в ходе которых препарат тестируют не только в России, но и в других странах. Они проводятся в соответствии с международными стандартами и единым для всех протоколом.

После того как вы нашли подходящее клиническое исследование и связались с его организатором, прочитайте информационный листок и не стесняйтесь задавать вопросы. Например, вы можете спросить, какая цель у исследования, кто является спонсором исследования, какие лекарства или приборы будут задействованы, являются ли какие-либо процедуры болезненными, какие есть возможные риски и побочные эффекты, как это испытание повлияет на вашу повседневную жизнь, как долго будет длиться исследование, кто будет следить за вашим состоянием. По ходу общения вы поймёте, сможете ли довериться этим людям.

Если остались вопросы — спрашивайте в комментариях.

источник

Для разделения белков сыворотки крови на их составляющие используют метод электрофореза, основанный на различной подвижности белков сыворотки крови в электрическом поле.

Принцип разделения белков сыворотки крови на фракции состоит в том, что в электрическом поле белки сыворотки крови движутся по смоченной буферным раствором хроматографической бумаге (ацетатцеллюлозной пленке, крахмаловому, агаровом гелям) со скоростью, зависящей в основном от величины электрического заряда и молекулярной массы частиц.

Вследствие этого белки сыворотки крови разделяются обычно на пять основных фракций: альбумины, альфа-1-глобулины, альфа-2-глобулины, бета-глобулины, гамма-глобулины, содержание которых определяется с помощью фотометрии или денситометрии.

Электрофорез в агаровом, крахмальном и особенно полиакриламидном геле дает лучшие результаты: четкое разделение и большое количество белковых фракций сыворотки. Недостатки метода: сложность процедуры приготовления геля (дороговизна готовых гелевых пластин).

Преимущества электрофореза на ацетатцеллюлозной пленке:

1. Химическая однородность пленки и одинаковый размер пор

2. Требует малый объем пробы (0,2-2 мкл) для разделения

3. Быстрота разделения и окраски белков, легкость отмывания фона

В сыворотке крови здорового человека при электрофорезе можно обнаружить шесть белковых фракций: преальбумины, альбумины, альфа-1-глобулины, альфа-2-глобулины, бета-глобулины и гамма-глобулины.

Это исследование в диагностическом отношении более информативно чем определение только общего белка или альбумина. При многих заболеваниях изменяется процентное соотношение белковых фракций, хотя общее содержание белка в сыворотке крови остается в пределах нормы.

Анализ фореграммы белков позволяет установить, за счет какой фракции происходит увеличение или дефицит белка, а также судить о специфичности изменений, характерных для данной патологии. Исследование белковых фракций, позволяет судить о характерном для какого-либо заболевания избытке или дефиците белка только в самой общей форме.

Белковые фракции сыворотки крови в норме:

Фракции	Содержание, %
Преальбумины	2-7
Альбумины	52-65
Альфа-1-глобулины	2,5-5,0
Альфа-2-глобулины	7,0-13,0
Бета-глобулины	8,0-14,0
Гамма-глобулины	12,0-22,0

При анализе результатов исследования сыворотки крови на белковые фракции выявляются три типа нарушений:

1. Диспротеинемия (изменение соотношения белковых фракций)

2. Генетические дефекты синтеза белков

3. Парапротеинемия (аномальные белки в крови)

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: На стипендию можно купить что-нибудь, но не больше. 8982 — | 7233 — или читать все.

195.133.146.119 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.

Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)
очень нужно

источник

Получено Регистрационное Удостоверение Росздравнадзора на новую линейку двух- и четырехканального полуавтоматических анализаторов гемостаза КоаТест-2 и КоаТест-4 РУ № РЗН 2016/3833 от 29 марта 2016 года.
(Подробнее. )

Начато производство кювет, с уменьшенным объемом пробы — 50 мкл. Новая кювета позволит сократить стоимость анализа в два раза
(Подробнее. )

Внимание! Изменился ассортимент продукции
(Подробнее. )

ООО «НПЦ «Астра» информирует Вас, что с 10.10.2012г. обладателем прав на Анализатор гематологический автоматический ГЕМА 8-01-«АСТРА» рег.уд. № ФСР 2008/02429 от 03.04.08 и его модификаций является ООО «Астра Лаб».
(Подробнее. )

Внимание! Изменились цены и ассортимент поставляемой продукции
(Подробнее. )

НПЦ «Астра» совместно с Челябинской формой «СПЕЦПРОМСЕРВИС» с 31 мая по 3 июня 2011 года приняли участие в XVII межрегиональной медицинской выставке УРАЛ-МЕДИКА 2011.
(Подробнее. )

НПЦ «Астра» приняло участие в собрании общества врачей лаборантов в городе Уфе.
(Подробнее. )

НПЦ «Астра» совместно с британской фирмой Helena Biosciences Europe начинает совместный проект по поставке реагентов для анализаторов свёртываемости крови АСКа-2-01-«Астра».
(Подробнее. )

Обновление сайта НПЦ «Астра».
(Подробнее. )

Предлагаем вашему вниманию устройство электрофореза сыворотки крови УЭФ-01-«Астра» (регистрационное удостоверение N ФСР 2009/04670 от 01.09.09) и программу обработки данных электрофореза «Анализ ФСК», которая совместно с персональным компьютером и планшетным сканером выполняет функции денситометра.

Устройство электрофореза УЭФ-01-«Астра» предназначено для анализа белков, липопротеидов и ЛДГ сыворотки крови методом электрофореза на ацетатцеллюлозных пленках.

Устройство электрофореза состоит из:

√ источника питания
√ камеры деления
√ мостика
√ аппликатора
√ емкости для реактивов
√ плашки
√ рабочего столика

Источник питания представляет собой программируемый источник напряжения. Питается от сети 220 В, частота 50 Гц. Имеет возможность регулировки:

— по напряжению U = 2 . 300 В (дискретность 2 В)
— по току I = 1 . 99 mA (дискретность 1 mA)
— времени t= 1 . 99 сек. (дискретность 1 сек)

Источник питания не требует времени подготовки к работе.

В процессе электрофореза имеется возможность контролировать заданные и текущие параметры (напряжение, ток, время), которые отображаются на четырехразрядном индикаторе (три разряда — цифровая информация, один разряд — регулируемый параметр). Существует, также, звуковая сигнализация режимов работы (таймер, обрыв цепи, короткое замыкание, окончание работы).

Источник питания имеет восемь режимов работы: 0-й режим — электрофорез белков сыворотки крови; 1-й режим — электрофорез липопротеидов. Кроме того, источник питания имеет дополнительно 6 программ, параметры которых можно задавать по собственному усмотрению (электрофорез ЛДГ, гемоглобина и др.). Все режимы имеют возможность изменения параметров: их последние значения хранятся в памяти источник питания. Габаритные размеры источника питания 125х165х225 мм.

Камера деления позволяет работать одновременно с тремя ацетатцеллюлозными пленками формата 57х140 мм. Исследуемые пробы сыворотки крови можно наносить на пленки непосредственно в камере деления. Конструкция камеры позволяет обеспечивать наиболее оптимальные параметры для электрофореза, а также электрическую безопасность персонала при работе. Габаритные размеры камеры деления 300х180х80 мм.

Многоразовый аппликатор позволяет наносить на пленку одновременно 8 проб сыворотки крови. Объем наносимой пробы — не более 0,2 мкл. Аппликатор обеспечивает контакт с носителем, не зависящий от усилия нажатия на клавишу. Аппликатор имеет конструкцию, защищающую рабочую поверхность от механических повреждений, при падении и ударах.

Аппликаторы, мостики для закрепления пленки и плашки для раскапывания сыворотки крови имеют цветовую маркировку, исключающую ошибку в нумерации проб. Камера деления и аппликаторы позволяют работать одновременно с тремя ацетатцеллюлозными пленками формата 57х140 мм.
источник

ОФС.1.8.2.0009.15 Определение однородности лекарственных препаратов из сыворотки крови человека и животных методом электрофореза на плёнках из ацетата целлюлозы

Содержимое (Table of Contents)

ОФС.1.8.2.0009.15 Определение однородности лекарственных препаратов из сыворотки крови человека и животных методом электрофореза на плёнках из ацетата целлюлозы

Настоящая общая фармакопейная статья распространяется на метод электрофореза на пленках из ацетата целлюлозы, который предназначен для определения однородности (идентичности) иммунобиологических лекарственных препаратов (иммуноглобулинов). Метод основан на различной скорости перемещения белков в электрическом поле в зависимости от соотношения основных и кислотных групп белка, рН, ионной силы буферного раствора, величины заряда и молекулярной массы частиц.

МИНИСТЕРСТВО ЗДРАВООХРАНЕНИЯ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

ОБЩАЯ ФАРМАКОПЕЙНАЯ СТАТЬЯ

Определение однородности ОФС.1.8.2.0009.15

лекарственных препаратов

из сыворотки крови человека

и животных методом

электрофореза на плёнках

из ацетата целлюлозы Вводится впервые

Белки движутся в электрическом поле со скоростью, пропорциональной их суммарному заряду. Белки, имеющие суммарный отрицательный заряд, движутся к аноду (+), а положительно заряженные – к катоду (–). По скорости движения в электрическом поле белки делятся на 5 основных фракций: альбумины, α1-глобулины, α2-глобулины, β-глобулины и γ-глобулины. Наименьшей скоростью продвижения обладают γ – глобулины (молекулярная масса 150-160 тыс. кДа); они практически остаются на линии старта, т.к. их заряд близок к нейтральному. Альбумины обладают выраженным отрицательным зарядом и меньшей молекулярной массой (67-70 тыс. кДа), поэтому в электрическом поле они движутся с наибольшей скоростью и в результате обнаруживаются дальше других белковых фракций от линии старта. С меньшей скоростью, чем альбумины, в электрическом поле перемещаются α1-, α2- и β-глобулины.

На увлажнённую плёнку из ацетата целлюлозы размером 90х90 мм, заправленную в специальную рамку, наносят 2-4 мкл исследуемых образцов (5 образцов в 2-х параллельных определениях) и для идентификации контрольный образец – сыворотка для контроля качества электрофоретического разделения белковых фракций. Определение проводят в 2-х параллельных определениях. Предварительно в электродные секции камеры (аппарат для электрофореза на плёнках из ацетата целлюлозы) наливают барбиталовый буферный раствор (рН 8,4). Вместо барбиталового буферного раствора можно использовать любой подходящий коммерческий буферный раствор с указанным значением рН.

Рамку с пленкой из ацетата целлюлозы помещают в разделительную камеру, закрывают крышкой, включают источник питания (сила тока 8-10 мА, напряжение 100-129 В). Разделение проводят в течение 30-40 мин. После проведения электрофореза снимают крышку разделительной камеры, не допуская попадания конденсационной воды на пленку. Рамку с плёнкой извлекают из камеры, избегая контакта с участками, где происходил электрофорез испытуемых образцов. Пленку достают из рамки пинцетом и дают подсохнуть на воздухе. Затем плёнку обрезают с обоих концов (около 2,5 мм), помещают в кювету с 50 мл раствора красителя и выдерживают в течение не более 5 мин (контакт с красителем в течение более длительного времени может деформировать плёнку). Плёнку вынимают из кюветы и после стекания избыточной жидкости помещают на 5 мин поочерёдно в 3 кюветы, со 100 мл отмывочной жидкости (для ускорения процесса отмывки кювету покачивают). После отмывки фон плёнки должен приобрести бледно-голубое окрашивание или стать почти прозрачным. Далее плёнку тщательно промывают водой, помещают между листами фильтровальной бумаги и слегка промокают.

Идентификацию белковых фракций проводят путём сравнения электрофореграммы испытуемых образцов с электрофореграммой контрольной сыворотки для контроля качества электрофоретического разделения белковых фракций. Сыворотка должна разделиться не менее, чем на 5 фракций: альбумин, α1- и α2-глобулины, β-глобулин и γ-глобулин. После проведения электрофореза проводят количественное определение фракций иммуноглобулина путём извлечения краски из плёнки элюирующим раствором с последующим колориметрированием или путём денситометрии электрофореграмм.

Колориметрическое определение. Извлечение краски каждой фракции проводят в 3 мл элюирующего раствора с 2-х параллельных электрофореграмм. Элюцию проводят в течение 40 мин при многократном встряхивании. Оптическую плотность полученного элюата измеряют на спектрофотометре при длине волны 620 нм в кюветах с толщиной слоя 10 мм по отношению к элюату неокрашенного участка электрофореграммы. Сумму оптических плотностей всех белковых фракций принимают за 100 % и рассчитывают процентное содержание каждой фракции препарата иммуноглобулина.

Денситометрическое определение. Электрофореграммы исследуемых образцов высушивают между листами фильтровальной бумаги в полиэтиленовом пакете (такие условия высушивания исключают деформацию плёнки). Высушенные плёнки просветляют вазелиновым маслом, пропитывая их таким образом, чтобы в плёнке не остались пузырьки воздуха. Для этого плёнку следует держать горизонтально и нижней поверхностью осторожно касаться масла. Избыток вазелинового масла удаляют, промокая плёнку между листами фильтровальной бумаги.

Фракции иммуноглобулина записываются денситометром в виде пиков. Величина площади каждого пика пропорциональна количеству краски, соединившейся с белком. С помощью автоматического интегратора площадь каждого пика вычисляют по формуле площади прямоугольника

(h ∙ d, где h – максимальная высота пика, d – ширина пика). Сумма площадей всех пиков фракций иммуноглобулина принимается за 100 % и вычисляется процентное содержание каждой фракции в испытуемом препарате иммуноглобулина.

Подготовка плёнки из ацетата целлюлозы. Плёнку смачивают в барбиталовом буферном растворе и гладкой стороной помещают в кювету на поверхность буферного раствора на 2 мин, а затем пинцетом погружают на дно кюветы и выдерживают 5 мин. После этого плёнку вынимают пинцетом, избыток влаги удаляют между листами фильтровальной бумаги и заправляют в рамку, избегая неравномерного натяжения и провисания.
Подготовка испытуемых образцов. Испытуемые образцы предварительно обрабатывают 0,05% раствором красителя – бромфенолового синего, используемого для отслеживания продвижения и распределения белковых фракций препарата иммуноглобулина в процессе электрофореза. В пробирку типа Эппендорф помещают 100 мкл испытуемого образца и 10 мкл 0,05% раствора бромфенолового синего и перемешивают. Окрашенные испытуемые образцы в объеме 2-4 мкл помещают в каждую лунку лотка.
Приготовление барбиталового буферного раствора (рН 8,4)*. В мерную колбу вместимостью 1000 мл помещают 8,5 г натрия барбитала, растворяют в 600-700 мл воды очищенной, прибавляют 11 мл 1М раствора хлористоводородной кислоты, доводят объём раствора водой до метки и перемешивают.

*Вместо барбиталового буферного раствора можно использовать любой другой коммерческий буферный раствор с известным значением рН.

4.Приготовление 1 М раствора хлористоводородной кислоты. В мерную колбу вместимостью 1000 мл помещают 85 мл хлористоводородной кислоты концентрированной, доводят объём раствора до метки и перемешивают.

Приготовление красителя. К 0,5 г амидочёрного 10 Б прибавляют 10 мл уксусной кислоты ледяной, 3 г трихлоруксусной кислоты и 90 мл этилового спирта и перемешивают. Для полного растворения краситель оставляют на 24 ч. Перед использованием раствор красителя перемешивают и фильтруют через бумажный фильтр.
Приготовление раствора для отмывки электрофореграмм. В мерный цилиндр вместимостью 1000 мл помещают 40 мл уксусной кислоты ледяной, прибавляют 700 мл воды очищенной и перемешивают. Затем объём раствора доводят водой очищенной до метки и вновь перемешивают.
Приготовление элюирующего раствора. Смешивают 10 мл 1 М раствора натрия гидроксида с 1 мл 1 М раствора натрия эдетата (трилон Б).

Если условия проведения анализа и реагенты отличаются от приведенных в данной статье, они должны быть указаны в соответствующей фармакопейной статье или нормативной документации с изложением иной валидированной методики анализа.

источник

Этот анализ является исследованием, которое позволяет определить их количественные и качественные показатели по тому, как белки распределяются в электрическом поле. Исследование основано на том, что белковые молекулы несут заряды, положительные или отрицательные в зависимости от того, какой кислотностью будет обладать среда, в которой будет проводиться непосредственно электрофорез. Молекулы, которые окажутся положительно заряженными, будут адсорбироваться лучше, нежели чем те, которые несут отрицательный заряд.

Носителями, которые будут применяться для электрофореза, могут быть хроматографическая бумага, агаровый гель, полиакриловой гель, ацетатцеллюлозная бумага или акриловый гель. Значительно реже применяется капиллярный электрофорез.

Во время анализа белки разделяют на 5 или 6 фракций, в зависимости от применяемого метода. Это будут гамма-глобулины, которые делятся на бета-1 и бета-2, альбумины — альфа-1 и альфа-2, а также бета-глобулины.

Имеются установленные нормы белковых фракций, которые должны присутствовать в крови. Отклонение их от показателей является признаком нарушения в организме, что требует проведения обследования для выявления причины.

Фракция	Норма в г/л
Альбумин	35-44
Глобулин альфа-1	1-3
Глобулин альфа-2	5-8
Бета-глобулин	4-10
Гамма-глобулин	5-12

Значения показателей, в зависимости от того какие реактивы применяются в конкретной лаборатории, могут несколько изменяться. Поэтому в бланке результатов исследования в каждом медицинском учреждении обязательно указываются значения нормы, которые приняты в нем. На них будет ориентироваться врач при расшифровке анализа.

Электрофорез белков крови назначают не очень часто, так как сегодня современные лабораторные исследования позволяют провести анализ на определенный белок, что ускоряет процесс диагностики. Абсолютным показанием к электрофорезу является наличие монолокальной гаммапатии. Также иногда анализ может быть показан в таких случаях:

чрезмерно высокая скорость оседания эритроцитов, когда она превышает 50 мм/ч;
значительно повышенный уровень гамма-глобулинов;
скрининговое обследование для контроля эффективности лечения миеломной болезни;
чрезмерно высокий общий белок в крови;
ряд аутоиммунных заболеваний, поражающих печень и почки;
слабость, для которой нет выраженной причины;
развитие патологических переломов костей и постоянные боли в костях;
частые рецидивы инфекционных заболеваний;
нарушения, обнаруженные в прочих анализах, указывающие на то, что у человека могут развиваться анемии, лейкемии, гиперкальциемия или гипоальбуминемия.

При общей диспансеризации и получении медицинских справок для трудоустройства данное исследование крови не осуществляется. Не требуется оно и в процессе подготовки человека к хирургическому вмешательству.

Для получения наиболее точных результатов рекомендуется соблюдение правил подготовки к анализу. Они включают в себя голодную диету в течение 15 часов до того как будет взята кровь, когда пациент может употреблять только чистую не газированную воду. За 90 минут до проведения исследования необходимо полностью исключить нагрузки как эмоциональные, так и физические, и курение в активной или пассивной форме. Чтобы не допустить искажение данных, забор материала не проводят сразу после того, как был осуществлен гемодиализ или проведена процедура, при которой использовались радиоконтрастные составы. Важно также, чтобы за несколько дней до исследования полностью было исключено лечение пенициллином, так как он вызывает расщепление амбулина, что исказит результат.

Фракция	Повышение	Понижение
Амбулин	Злоупотребление алкоголем, период вынашивания ребёнка, дегидрация	Холецистит в острой форме, лейкоз, миелома, саркоидоз, пневмония, остеомиелит, системная красная волчанка, лимфома
Глобулин альфа-1	Цирроз печени, стрессовые состояния, лимфогранулематоз, период вынашивания ребёнка, язва желудка, острое или хроническое воспаление	Гепатит вирусной природы в острой форме
Глобулин альфа-2	Сахарный диабет, остеомиелит, гломерулонефрит в острой форме, стрессовые состояния, системная красная волчанка, узловатый полиартрит, цирроз	Гипертиреоз, гепатит вирусной природы в острой форме, гемолиз интраваскулярный
Бета-глобулин	Сахарный диабет, саркоидоз, ревматоидный артрит, беременность, гломерулонефрит, желтуха подпеченочная, нефротический синдром	Лейкоз, цирроз, склеродермия имеющая системный характер, лимфома, системная красная волчанка
Гамма-глобулин	Цирроз, склеродермия системного характера, ревматоидный артрит, лимфолейкоз в хронической форме, муковисцидоз, синдром Шегрена	Лейкоз, склеродермия, гепатит вирусной природы в острой форме, лимфома, гломерулонефрит

Исказить показатели, кроме неправильной подготовки к проведению анализа, могут 2 фактора: недавно проведенная процедура гемодиализа, из-за которой произошло разрушение эритроцитов в крови, и повышенный уровень билирубина в организме. В любом из этих случаев потребуется пересдача анализа через некоторое время, которое определит врач.

источник

Электрофорез белков сыворотки крови (протеинограмма) является лабораторным исследованием, позволяющим определить количественные и качественные изменения основных белковых фракций. Данное исследование позволяет выявить острые и хронические воспаления инфекционной и неинфекционной природы, онкологические (моноклональные гаммапатии) и многие другие патологии, а также контролировать их лечение.

Благодаря ультрасовременной аппаратуре Юсуповской больницы и огромному опыту наших высококвалифицированных диагностов, грамотно интерпретирующих результаты исследования, обеспечиваются максимально точные результаты анализа в короткие сроки. Комплексным обследованием занимается мультидисциплинарная команда врачей, которые, в целях уточнения диагноза, назначают электрофорез белков сыворотки крови и другие высокотехнологичные лабораторные и инструментальные исследования, позволяющие выявить патологию на ранних стадиях развития, благодаря чему каждому пациенту подбирается наиболее эффективная индивидуальная схема лечения.

В состав общего белка сыворотки крови входят альбумины и глобулины, которые в норме находятся в определенных качественных и количественных соотношениях. Для оценки соотношения альбумина и глобулина в крови проводится электрофорез белков с применением агарозного геля.

Изменение качественного и количественного соотношения в протеинограмме может свидетельствовать о наличии в организме самых различных заболеваний (от вирусного гепатита до хронической сердечной недостаточности).

Для постановки точного диагноза, кроме результатов электрофореза белков крови, специалисты Юсуповской больницы назначают дополнительные клинические, лабораторные и инструментальные исследования.

Электрофорез белков крови позволяет точно оценить качественное и количественное соотношение основных белковых фракций у пациентов, страдающих следующими патологиями:

острые и хронические инфекционные заболевания;
заболевания печени (например, хронический вирусный гепатит);
аутоиммунные состояния;
почечные патологии (нефротический синдром);
моноклональные гаммапатии (моноклональная гаммапатия неясного происхождения и множественная миелома);
синдром иммунодефицита (агаммаглобулинемия Брутона).

Электрофорез белков сыворотки крови является довольно информативным исследованием, которое назначается пациентам Юсуповской больницы при подозрении на следующие заболевания и состояния:

острые и хронические инфекционные заболевания, определенные заболевания печени и почек, аутоиммунные состояния;
немотивированная слабость, множественная миелома, персистирующая лихорадка, патологические переломы или боли в костях, рецидивирующие инфекционные заболевания;
подозрение на недостаточный уровень альфа-1-антитрипсина, синдром Брутона и другие иммунодефицитные состояния;
отклонения в других лабораторных исследованиях, которые могут свидетельствовать о множественной миеломе: гиперкальциемия, гипоальбуминемия, лейкопения, анемия.

Нормальными значениями общего белка у детей считаются 44-80 г/л, в зависимости от возраста ребенка, у взрослых людей – от 64 до 83 г/л.:

альбумина – от 55,8 до 66,1 %;
альфа-1-глобулина – от 2,9 до 4,9%;
альфа-2-глобулина – от 7,1 до 11,8%;
бета-1-глобулина – от 4,7 до 7,2%;
бета-2-глобулина – от 3,2 до 6,5%;
гамма-глобулина – от 11,1 до 18,8%.

Изменение баланса тех или иных белковых фракций крови может сигнализировать о наличии в организме каких-либо патологических процессов.

Фракция альбумина может быть повышена при:

Фракция альбумина понижается при:

остром холецистите;
воспалительных и опухолевых заболеваниях ЖКТ;
лейкозе;
язвенной болезни;
острой ревматической лихорадке;
нефротическом синдроме;
макроглобулинемии;
сахарном диабете;
саркоидозе;
множественной миеломе;
пневмонии;
хронической сердечной недостаточности;
остеомиелите;
неспецифическом язвенном колите;
системной красной волчанке;
лимфоме;
приеме глюкокортикоидов.

Фракция альфа-1-глобулина повышается при:

лимфогранулематозе;
острых или хронических воспалительных заболеваниях;
язвенной болезни;
циррозе печени;
стрессе;
беременности;
приеме гормональных контрацептивов.

Фракция альфа-1-глобулина понижается при:

остром вирусном гепатите;
недостаточности альфа-1-антитрипсина;

Фракция альфа-2-глобулина повышается при:

хроническом гломерулонефрите;
острой ревматической лихорадке;
сахарном диабете;
циррозе печени;
саркоидозе;
лимфогранулематозе;
узловатом полиартериите;
нефротическом синдроме;
системной красной волчанке;
остеомиелите;
ревматоидном артрите;
пневмонии;
диспротеинемии;
стрессе;
язвенной болезни;
пожилом и младенческом возрасте;
мальабсорбции;
неспецифическом язвенном колите.

Фракция альфа-2-глобулина понижается при:

гипогаптоглобинемии;
остром вирусном гепатите;
гипертиреозе;
интраваскулярном гемолизе;
мальабсорбции.

Фракция бета-глобулина повышается при:

сахарном диабете;
гломерулонефрите;
острых воспалительных заболеваниях;
гиперхолестеринемии;
диспротеинемии;
саркоидозе;
макроглобулинемии;
подпеченочная желтуха;
железодефицитной анемии;
нефротическом синдроме;
ревматоидном артрите;
беременности;
приеме гормональных контрацептивов.

Фракция бета-глобулина понижается при:

лейкозе;
аутоиммунных заболеваниях;
системной склеродермии;
циррозе печени;
лимфоме;
нефротическом синдроме;
системной красной волчанке;
стеаторее;
неспецифическом язвенном колите.

Фракция гамма-глобулина повышается при:

циррозе печени;
хроническом лимфолейкозе;
амилоидозе;
множественной миеломе;
муковисцидозе;
моноклональной гаммапатии неясного генеза;
ювенильном ревматоидном артрите;
синдроме Шегрена;
системной склеродермии;
системной красной волчанке;
тиреоидите Хашимото;
криоглобулинемии;
саркоидозе;
ревматоидном артрите;
макроглобулинемии Вальденстрема.

Фракция гамма-глобулина понижается при:

агаммаглобулинемии;
остром вирусном гепатите;
склеродермии;
мальабсорбции;
лейкозе;
нефротическом синдроме;
стеаторее;
лимфоме;
гломерулонефрите;
неспецифическом язвенном колите.

За 12-15 часов до исследования рекомендуется отказаться от приема пищи.

Минимум за час-полтора до забора крови для анализа необходимо избегать физического и эмоционального перенапряжения, исключить курение.

Во избежание получения искаженных результатов не стоит проводить электрофорез белков сыворотки крови сразу после процедуры гемодиализа и процедур с использованием радиоконтрастных веществ. Необходимо также исключить прием пенициллина, который может привести к расщеплению полосы альбумина.

Электрофорез белков сыворотки крови является важной частью комплексного обследования пациентов в Юсуповской больнице. Данное исследование назначается при подозрении на наличие в организме той или иной из вышеперечисленных патологий.

Узнать стоимость услуг лабораторной диагностики и записаться на проведение исследования можно по телефону или онлайн на сайте Юсуповской больницы.

источник