Оптимизированный полимер для проведения капиллярного электрофореза

Капиллярный электрофорез (КЭ) — интенсивно развивающийся метод разделения сложных смесей, позволяющий анализировать ионные и нейтральные компоненты различной природы с высокой экспрессностью и уникальной эффективностью.

В основе капиллярного электрофореза лежат электрокинетические явления — электромиграция заряженных частиц и электроосмос. Эти явления возникают в растворах при помещении их в электрическое поле, преимущественно, высокого напряжения. Если раствор находится в тонком капилляре, например, в кварцевом, то электрическое поле, наложенное вдоль капилляра, вызывает в нем движение заряженных частиц и пассивный поток жидкости, в результате чего проба разделяется на индивидуальные компоненты, так как параметры электромиграции специфичны для каждого сорта заряженных частиц. В то же время, такие возмущающие факторы, как диффузионные, сорбционные, конвекционные, гравитационные и т. п., в капилляре существенно ослаблены, благодаря чему достигаются рекордные эффективности разделений. Скачать книгу (1,7 Mb pdf).

ДОСТОИНСТВА МЕТОДА

Метод капиллярного электрофореза обладает рядом преимуществ по сравнению с другими методами разделения:

• в кварцевом капилляре достигается высокая эффективность разделения компонентов смесей – сотни тысяч теоретических тарелок;
• благодаря многообразию вариантов метода КЭ разделяются ионные, нейтральные, гидрофильные, гидрофобные, хиральные компоненты, от наночастиц до макромолекул;
• быстрота проведения анализа;
• крайне низкий расход реактивов и растворителей (микролитры);
• дозируется минимальный объеманализируемого образца;
• для большинства объектов используется простая подготовка пробы – в основном лишь фильтрование, дегазирование и разбавление;
• отсутствие дорогостоящих колонок с сорбентами и проблем с их старением и заменой;
• низкая стоимость единичного анализа.

• Анализ объектов окружающей среды:
  • природные, питьевые, сточные воды (неорганические катионы и анионы, гербициды);
  • почвы, грунты, донные отложения (водорастворимые формы неорганических катионов и анионов).
• Контроль качества, подлинности и безопасности напитков (органические кислоты (в том числе индивидуальные формы D- и L- изомеров), сахара, неорганические катионы и анионы, консерванты, подсластители, синтетические красители, витамины, аминокислоты, фурфуролы, ароматические альдегиды, амины, флавоноиды, антоцианы, пестициды, фунгициды);
• Контроль качества и безопасности пищевой продукции, продовольственного сырья и БАД (консерванты, подсластители, кофеин, теобромин, органические кислоты, аминокислоты, амины, белки);
• Ветеринария и контроль качества кормов и комбикормового сырья (аминокислоты, витамины, органические кислоты, неорганические катионы и анионы, антибиотики, кокцидиостатики);
• Фарминдустрия (контроль безопасности и качества синтетических субстанций, природного сырья, активных фармацевтических ингредиентов, вспомогательных веществ и готовых лекарственных средств);
• Криминалистическая экспертиза (наркотические средства, взрывчатые вещества, оптические отбеливатели);
• Клиническая биохимия (ионы, аминокислоты, амины, пептиды в биожидкостях);
• Химическая промышленность (определение основного компонента на фоне примесей, контроль сырья и побочных продуктов).

С 1998 Системы капиллярного электрофореза «КАПЕЛЬ®» являются первым и единственным в России серийно выпускаемым семейством приборов, предназначенных для реализации метода КЭ.

Пройдя долгий путь от создания прибора «КАПЕЛЬ®-103Р» (наиболее простой системы в семействе с полностью ручным управлением и одной рабочей длинной волны) до прибора «КАПЕЛЬ®-105М» (с полным управлением от компьютера и возможностью работы в среднем и ближнем УФ-диапазоне), группа компаний «Люмэкс» продолжает расширять аппаратурные возможности метода с помощью нового прибора «КАПЕЛЬ®-205» (со значительно увеличенным автосемплером и автоматической сменой полярности).

источник

Полное наименование аукциона (предмет контракта): 1 Оптимизированный полимер (полиакриламидный гель, мочевина) для проведения фрагментного анализа методом капиллярного электрофореза на генетических анализаторах серии 3500. 2 Пластиковый колпачок для емкости с полимером. Предназначен для закрывания емкости с полимером при извлечении его из генетических анализаторов серии 3500. 3 Деионизованный формамид для резуспензирования образцов перед электрокинетической инжекцией при проведении капиллярного электрофореза. 4 Набор реагентов для идентификации личности, криминалистики и судебной медицины по 15 полиморфным STR-локусам и маркеру пола человека. 5 Набор реагентов для идентификации личности, криминалистики и судебной медицины по 22 полиморфным STR-локусам, инсерционно-делеционному полиморфизму локуса, расположенного на Y-хромосоме, и маркеру пола человека. Набор рассчитан на проведение не менее 200 реакций. 6 Набор реагентов для идентификации личности, криминалистики и судебной медицины по 22 полиморфным STR-локусам, инсерционно-делеционному полиморфизму локуса, расположенного на Y- хромосоме, и маркеру пола человека. Набор рассчитан на проведение не менее 1000 реакций. 7 Матричный стандарт для калибровки генетических анализаторов серии 3500 под использование 6-ти красочных наборов реагентов. 8 Оптические адгезивные покрытия для заклеивание всех лунок 96-луночного планшета. 9 Оптимизированный полимер для проведения фрагментного анализа методом капиллярного электрофореза на генетических анализаторах серии 3130. 10 10-ти кратный буфер с ЭДТА для проведения капиллярного электрофореза на генетических анализаторах серии 3130 11 Размерный стандарт ДНК для генетических анализаторов серии 3500. Используется для 5-ти и 6-ти красочных наборов реагентов 12 Капиллярный блок для проведения фрагментного анализа методом электрофореза на генетических анализаторах модель 3130 и 3100-Avant. 13 Набор реагентов для выделения ДНК человека из различных криминалистических объектов и объектов судебно-медицинской экспертизы для роботизированной станции. 14 Набор реагентов для выделения ДНК человека из сложных криминалистических объектов и объектов судебно-медицинской экспертизы для роботизированной станции. 15 Пластиковые наконечники (0.1 — 20 мкл) к автоматической пипетке Eppendorf 16 Пластиковые пробирки объемом 1.5 мл, типа эппендорф, градуированные, бесцветные 17 Натрия додецилсульфат 18 Трис (гидроксиметил) аминометан 19 Na2EDTA×2H20 (ЭДТА динатриевая соль) 20 Натрий хлорид 21 Иммунохроматографический экпресс-тест для выявления следов крови человека

Наименование товара, работы, услуги: 1 Оптимизированный полимер (полиакриламидный гель, мочевина) для проведения фрагментного анализа методом капиллярного электрофореза на генетических анализаторах серии 3500.
2 Пластиковый колпачок для емкости с полимером. Предназначен для закрывания емкости с полимером при извлечении его из генетических анализаторов серии 3500.
3 Деионизованный формамид для резуспензирования образцов перед электрокинетической инжекцией при проведении капиллярного электрофореза.
4 Набор реагентов для идентификации личности, криминалистики и судебной медицины по 15 полиморфным STR-локусам и маркеру пола человека.
5 Набор реагентов для идентификации личности, криминалистики и судебной медицины по 22 полиморфным STR-локусам, инсерционно-делеционному полиморфизму локуса, расположенного на Y-хромосоме, и маркеру пола человека. Набор рассчитан на проведение не менее 200 реакций.
6 Набор реагентов для идентификации личности, криминалистики и судебной медицины по 22 полиморфным STR-локусам, инсерционно-делеционному полиморфизму локуса, расположенного на Y- хромосоме, и маркеру пола человека. Набор рассчитан на проведение не менее 1000 реакций.
7 Матричный стандарт для калибровки генетических анализаторов серии 3500 под использование 6-ти красочных наборов реагентов.
8 Оптические адгезивные покрытия для заклеивание всех лунок 96-луночного планшета.
9 Оптимизированный полимер для проведения фрагментного анализа методом капиллярного электрофореза на генетических анализаторах серии 3130.
10 10-ти кратный буфер с ЭДТА для проведения капиллярного электрофореза на генетических анализаторах серии 3130
11 Размерный стандарт ДНК для генетических анализаторов серии 3500. Используется для 5-ти и 6-ти красочных наборов реагентов
12 Капиллярный блок для проведения фрагментного анализа методом электрофореза на генетических анализаторах модель 3130 и 3100-Avant.
13 Набор реагентов для выделения ДНК человека из различных криминалистических объектов и объектов судебно-медицинской экспертизы для роботизированной станции.
14 Набор реагентов для выделения ДНК человека из сложных криминалистических объектов и объектов судебно-медицинской экспертизы для роботизированной станции.
15 Пластиковые наконечники (0.1 — 20 мкл) к автоматической пипетке Eppendorf
16 Пластиковые пробирки объемом 1.5 мл, типа эппендорф, градуированные, бесцветные
17 Натрия додецилсульфат
18 Трис (гидроксиметил) аминометан
19 Na2EDTA×2H20 (ЭДТА динатриевая соль)
20 Натрий хлорид
21 Иммунохроматографический экпресс-тест для выявления следов крови человека

Классификация товаров, работ, услуг:

Количество поставляемого товара, объем выполняемых работ, оказываемых услуг: —

источник

Что такое клинические исследования и зачем они нужны? Это исследования, в которых принимают участие люди (добровольцы) и в ходе которых учёные выясняют, является ли новый препарат, способ лечения или медицинский прибор более эффективным и безопасным для здоровья человека, чем уже существующие.

Главная цель клинического исследования — найти лучший способ профилактики, диагностики и лечения того или иного заболевания. Проводить клинические исследования необходимо, чтобы развивать медицину, повышать качество жизни людей и чтобы новое лечение стало доступным для каждого человека.

У каждого исследования бывает четыре этапа (фазы):

I фаза — исследователи впервые тестируют препарат или метод лечения с участием небольшой группы людей (20—80 человек). Цель этого этапа — узнать, насколько препарат или способ лечения безопасен, и выявить побочные эффекты. На этом этапе могут участвуют как здоровые люди, так и люди с подходящим заболеванием. Чтобы приступить к I фазе клинического исследования, учёные несколько лет проводили сотни других тестов, в том числе на безопасность, с участием лабораторных животных, чей обмен веществ максимально приближен к человеческому;

II фаза — исследователи назначают препарат или метод лечения большей группе людей (100—300 человек), чтобы определить его эффективность и продолжать изучать безопасность. На этом этапе участвуют люди с подходящим заболеванием;

III фаза — исследователи предоставляют препарат или метод лечения значительным группам людей (1000—3000 человек), чтобы подтвердить его эффективность, сравнить с золотым стандартом (или плацебо) и собрать дополнительную информацию, которая позволит его безопасно использовать. Иногда на этом этапе выявляют другие, редко возникающие побочные эффекты. Здесь также участвуют люди с подходящим заболеванием. Если III фаза проходит успешно, препарат регистрируют в Минздраве и врачи получают возможность назначать его;

IV фаза — исследователи продолжают отслеживать информацию о безопасности, эффективности, побочных эффектах и оптимальном использовании препарата после того, как его зарегистрировали и он стал доступен всем пациентам.

Считается, что наиболее точные результаты дает метод исследования, когда ни врач, ни участник не знают, какой препарат — новый или существующий — принимает пациент. Такое исследование называют «двойным слепым». Так делают, чтобы врачи интуитивно не влияли на распределение пациентов. Если о препарате не знает только участник, исследование называется «простым слепым».

Чтобы провести клиническое исследование (особенно это касается «слепого» исследования), врачи могут использовать такой приём, как рандомизация — случайное распределение участников исследования по группам (новый препарат и существующий или плацебо). Такой метод необходим, что минимизировать субъективность при распределении пациентов. Поэтому обычно эту процедуру проводят с помощью специальной компьютерной программы.

• бесплатный доступ к новым методам лечения прежде, чем они начнут широко применяться;
• качественный уход, который, как правило, значительно превосходит тот, что доступен в рутинной практике;
• участие в развитии медицины и поиске новых эффективных методов лечения, что может оказаться полезным не только для вас, но и для других пациентов, среди которых могут оказаться члены семьи;
• иногда врачи продолжают наблюдать и оказывать помощь и после окончания исследования.

• новый препарат или метод лечения не всегда лучше, чем уже существующий;
• даже если новый препарат или метод лечения эффективен для других участников, он может не подойти лично вам;
• новый препарат или метод лечения может иметь неожиданные побочные эффекты.

Главные отличия клинических исследований от некоторых других научных методов: добровольность и безопасность. Люди самостоятельно (в отличие от кроликов) решают вопрос об участии. Каждый потенциальный участник узнаёт о процессе клинического исследования во всех подробностях из информационного листка — документа, который описывает задачи, методологию, процедуры и другие детали исследования. Более того, в любой момент можно отказаться от участия в исследовании, вне зависимости от причин.

Обычно участники клинических исследований защищены лучше, чем обычные пациенты. Побочные эффекты могут проявиться и во время исследования, и во время стандартного лечения. Но в первом случае человек получает дополнительную страховку и, как правило, более качественные процедуры, чем в обычной практике.

Клинические исследования — это далеко не первые тестирования нового препарата или метода лечения. Перед ними идёт этап серьёзных доклинических, лабораторных испытаний. Средства, которые успешно его прошли, то есть показали высокую эффективность и безопасность, идут дальше — на проверку к людям. Но и это не всё.

Сначала компания должна пройти этическую экспертизу и получить разрешение Минздрава РФ на проведение клинических исследований. Комитет по этике — куда входят независимые эксперты — проверяет, соответствует ли протокол исследования этическим нормам, выясняет, достаточно ли защищены участники исследования, оценивает квалификацию врачей, которые будут его проводить. Во время самого исследования состояние здоровья пациентов тщательно контролируют врачи, и если оно ухудшится, человек прекратит своё участие, и ему окажут медицинскую помощь. Несмотря на важность исследований для развития медицины и поиска эффективных средств для лечения заболеваний, для врачей и организаторов состояние и безопасность пациентов — самое важное.

Потому что проверить его эффективность и безопасность по-другому, увы, нельзя. Моделирование и исследования на животных не дают полную информацию: например, препарат может влиять на животное и человека по-разному. Все использующиеся научные методы, доклинические испытания и клинические исследования направлены на то, чтобы выявить самый эффективный и самый безопасный препарат или метод. И почти все лекарства, которыми люди пользуются, особенно в течение последних 20 лет, прошли точно такие же клинические исследования.

Если человек страдает серьёзным, например, онкологическим, заболеванием, он может попасть в группу плацебо только если на момент исследования нет других, уже доказавших свою эффективность препаратов или методов лечения. При этом нет уверенности в том, что новый препарат окажется лучше и безопаснее плацебо.

Согласно Хельсинской декларации, организаторы исследований должны предпринять максимум усилий, чтобы избежать использования плацебо. Несмотря на то что сравнение нового препарата с плацебо считается одним из самых действенных и самых быстрых способов доказать эффективность первого, учёные прибегают к плацебо только в двух случаях, когда: нет другого стандартного препарата или метода лечения с уже доказанной эффективностью; есть научно обоснованные причины применения плацебо. При этом здоровье человека в обеих ситуациях не должно подвергаться риску. И перед стартом клинического исследования каждого участника проинформируют об использовании плацебо.

Обычно оплачивают участие в I фазе исследований — и только здоровым людям. Очевидно, что они не заинтересованы в новом препарате с точки зрения улучшения своего здоровья, поэтому деньги становятся для них неплохой мотивацией. Участие во II и III фазах клинического исследования не оплачивают — так делают, чтобы в этом случае деньги как раз не были мотивацией, чтобы человек смог трезво оценить всю возможную пользу и риски, связанные с участием в клиническом исследовании. Но иногда организаторы клинических исследований покрывают расходы на дорогу.

Если вы решили принять участие в исследовании, обсудите это со своим лечащим врачом. Он может рассказать, как правильно выбрать исследование и на что обратить внимание, или даже подскажет конкретное исследование.

Клинические исследования, одобренные на проведение, можно найти в реестре Минздрава РФ и на международном информационном ресурсе www.clinicaltrials.gov.

Обращайте внимание на международные многоцентровые исследования — это исследования, в ходе которых препарат тестируют не только в России, но и в других странах. Они проводятся в соответствии с международными стандартами и единым для всех протоколом.

После того как вы нашли подходящее клиническое исследование и связались с его организатором, прочитайте информационный листок и не стесняйтесь задавать вопросы. Например, вы можете спросить, какая цель у исследования, кто является спонсором исследования, какие лекарства или приборы будут задействованы, являются ли какие-либо процедуры болезненными, какие есть возможные риски и побочные эффекты, как это испытание повлияет на вашу повседневную жизнь, как долго будет длиться исследование, кто будет следить за вашим состоянием. По ходу общения вы поймёте, сможете ли довериться этим людям.

Если остались вопросы — спрашивайте в комментариях.

источник

Содержимое (Table of Contents)

Капиллярный электрофорез – это физический метод анализа, основанный на миграции внутри капилляра заряженных частиц в растворе электролита под влиянием приложенного электрического поля.

МИНИСТЕРСТВО ЗДРАВООХРАНЕНИЯ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

ОБЩАЯ ФАРМАКОПЕЙНАЯ СТАТЬЯ

Капиллярный ОФС.1.2.1.0022.15

электрофорез Вводится впервые

Капиллярный электрофорез – это физический метод анализа, основанный на миграции внутри капилляра заряженных частиц в растворе электролита под влиянием приложенного электрического поля.

Скорость миграции частиц определяется их электрофоретической подвижностью и электроосмотической подвижностью буферного раствора.

Электрофоретическая подвижность вещества (μ_эф) зависит от его характеристик (электрического заряда, размеров и формы) и от характеристик буферной среды, в которой происходит разделение (типа и ионной силы электролита, рН, вязкости и добавок):

где q – эффективный заряд частицы;

η – вязкость раствора электролита;

r – стоксовский радиус частицы.

Электрофоретическую скорость (ν_эф) для вещества сферической формы определяют по формуле:

где E – сила электрического поля;

V – приложенное напряжение;

Когда к капилляру, заполненному буферным раствором, приложено электрическое поле, внутри капилляра образуется поток растворителя, называемый электроосмотическим потоком. Скорость и направление электроосмотического потока зависят от электроосмотической подвижности (μ_эо), определяемой знаком и плотностью заряда на внутренней стенке капилляра, а также характеристиками буфера:

где ε – диэлектрическая константа буфера;

ζ – дзета-потенциал поверхности капилляра.

Электроосмотическую скорость (ν_эо) рассчитывают по формуле:

Электрофоретическая и электроосмотическая подвижность ионов могут быть направлены в одну и ту же или в противоположные стороны в зависимости от заряда частиц; таким образом, скорость движения растворенного вещества будет определяться уравнением:

Если электроосмотическая скорость выше электрофоретической, можно одновременно разделить как положительно, так и отрицательно заряженные ионы. Время, затраченное ионом для миграции от конца, в котором вводится образец, до места детекции (l – эффективная длина капилляра), определяют по формуле:

Как правило, капилляры из плавленого кварца без покрытия при pH выше 3 несут на внутренней поверхности отрицательный заряд из-за диссоциации силанольных групп. При этом электроосмотический поток направлен от анода к катоду.

В некоторых случаях необходимо уменьшить или изменить направление электроосмотического потока. Для этого различным образом модифицируют внутреннюю стенку капилляра или изменяют рН буферного раствора.

После введения образца в капилляр каждый анализируемый ион движется внутри фонового электролита в виде отдельной зоны в соответствии со своей электрофоретической подвижностью. Степень размывания каждой зоны растворенного соединения определяется совокупностью различных причин. В идеальном случае единственной причиной размывания зон является продольная молекулярная диффузия растворенного вещества вдоль капилляра. В этом, идеальном, случае эффективность разделения полосы, характеризуемая числом теоретических тарелок (N), выражается формулой:

где D – молекулярный коэффициент диффузии растворенного вещества в буферном растворе.

На практике на размывание полос значительное влияние оказывают тепловое рассеяние, адсорбция образца на стенке капилляра, различная проводимость между образцом и буфером, длительность ввода пробы, размеры детектирующей ячейки и различия уровней жидкости в емкостях с буферными растворами.

Разделение между двумя полосами, называемое разрешением (R_s), определяют по формуле (8):

где μ_эфб и μ_эфа – электрофоретические подвижности каждого из двух разделенных ионов;

– их средняя электрофоретическая подвижность.

Среднюю электрофоретическую подвижность определяют по формуле:

Система для капиллярного электрофореза состоит из высоковольтного источника напряжения; двух флаконов с буферными растворами и погруженными в них электродами; капилляра, заполненного соответствующим раствором и погруженного обоими концами во флаконы с буферными растворами; системы ввода образца; детектора, способного в режиме реального времени регистрировать вещества, проходящие мимо оптического окна капилляра; системы термостатирования; регистрирующего прибора или подключенного компьютера.

Для введения пробы могут использоваться три способа: гидростатический – за счет разного уровня буферных растворов, гидродинамический – с помощью прилагаемого давления или вакуума и электрокинетический – благодаря прилагаемому напряжению. В последнем случае степень ввода в капилляр каждого компонента пробы зависит от соответствующей электрофоретической подвижности. Электрокинетическая система ввода для многокомпонентной смеси с разной электрофоретической подвижностью ведет к изменению соотношения концентраций ее составляющих и в данном случае может адекватно применяться лишь для качественного анализа. При условии определения в многокомпонентной смеси одного или двух соединений этот метод может использоваться и для количественного анализа. Кроме того, такой способ введения может позволить увеличить чувствительность анализа.

Детектирование осуществляется с помощью абсорбционной спектрофотометрии в ультрафиолетовой и видимой областях, флуориметрии, кондуктометрии, амперометрии или масс-спектрометрии.

Для обнаружения не поглощающих в ультрафиолетовой области и не флуоресцирующих соединений используется непрямое детектирование. В этом случае в ведущий электролит вводится вещество, поглощающее ультрафиолетовое излучение и образующее выраженное фоновое поглощение. При этом зона определяемого вещества визуализируется в виде обратного пика. С использованием специального программного обеспечения электрофореграмме придают стандартный вид.

Применяемый раствор электролита фильтруют для того, чтобы удалить крупные частицы (размером более 0,45 мкм), и дегазируют для предотвращения образования пузырьков воздуха, которые могут быть помехой для детектирующей системы или могут нарушить электропроводность в капилляре во время проведения анализа. Для хорошей воспроизводимости времени миграции анализируемых компонентов проб для каждого определения должна быть разработана определенная процедура промывки капилляра.

Основными формами проведения капиллярного электрофореза являются: капиллярный зонный электрофорез, мицеллярная электрокинетическая хроматография, капиллярный гель-электрофорез, капиллярное изоэлектрическое фокусирование и капиллярный изотахофорез.

Аналиты разделяются в капилляре, содержащем только буферный раствор. Разделение происходит за счет того, что различные компоненты образца движутся с разными скоростями, образуя так называемые зоны. Скорость движения каждой зоны зависит от электрофоретической подвижности растворенного вещества и от электроосмотического потока в капилляре. Для уменьшения адсорбции веществ на поверхности плавленого кварца могут использоваться капилляры с модифицированной внутренней поверхностью.

Использование капиллярного зонного электрофореза позволяет выполнить разделение как малых (молекулярная масса Мицеллярная электрокинетическая хроматография

В мицеллярной электрокинетической хроматографии разделение осуществляется в растворе электролита, содержащего поверхностно-активное вещество в концентрации выше критической концентрации мицеллообразования. Молекулы растворенного вещества распределяются между буферным раствором и псевдостационарной фазой, состоящей из мицелл. Этот метод может использоваться для разделения как заряженных, так и нейтральных молекул. В качестве анионного поверхностно-активного вещества наиболее часто используется додецилсульфат натрия, в качестве катионного – соли цетилтриметиламмония.

При нейтральных и щелочных значениях рН возникает сильный электроосмотический поток, который движет ионы разделяющего буфера в сторону катода. При использовании в качестве поверхностно-активного вещества додецилсульфата натрия электрофоретическое движение анионных мицелл направлено в противоположную сторону – к аноду. В результате суммарная скорость движения мицелл снижена по сравнению с основным потоком раствора электролита. В случае нейтральных веществ скорость движения компонента, не имеющего электрофоретической подвижности, зависит только от его коэффициента распределения между мицеллой и водной средой. На электрофореграмме сначала появляется пик маркера электроосмотического потока, затем пики аналитов, и в конце – пик маркера мицелл. Время между первым и последним пиком называется окном разделения. На движение заряженных веществ влияют как их коэффициенты распределения между мицеллой и водным буферным раствором, так и их собственная электрофоретическая подвижность.

Движение аналитов и разрешение может быть описано термином «фактор удерживания (k)», представляющим собой отношение молярных долей аналита в мицелле и в подвижной фазе. Для нейтрального вещества k вычисляют по формуле:

где t_R – время миграции аналита;

t – время миграции неудерживаемого вещества;

t_mc – время миграции мицеллы;

K – коэффициент распределения аналита;

V_S – объем мицеллярной фазы;

Разрешение для двух близко движущихся аналитов (R_S) рассчитывают по формуле:

где N – число теоретических тарелок для одного из аналитов;

α – селективность разделения;

Время разделения обратно пропорционально приложенному напряжению, однако следует учитывать, что увеличение напряжения может вызвать избыточное выделение тепла, приводящее к возникновению градиентов температуры и вязкости буферного раствора. Этот эффект вызывает уширение полос и уменьшение разрешения.

Как и в капиллярном зонном электрофорезе, при мицеллярной электрокинетической хроматографии длина и внутренний диаметр капилляра влияют на время анализа и эффективность разделения. Увеличение длины капилляра уменьшает электрическое поле, увеличивает время миграции и повышает эффективность разделения. Уменьшение внутреннего диаметра повышает рассеяние тепла и увеличивает разрешение.

Величина рН среды влияет на электроосмотический поток в немодифицированных капиллярах. Уменьшение рН снижает электроосмотический поток и вследствие этого увеличивает разрешение нейтральных веществ в мицеллярной электрокинетической хроматографии за счет увеличения времени анализа.

Для улучшения разделения гидрофобных веществ в мицеллярной электрокинетической хроматографии используют органические модификаторы (метанол, пропанол, ацетонитрил и др.). При этом необходимо учитывать, что добавление органического модификатора влияет на критическую концентрацию мицеллообразования.

Для разделения с помощью мицеллярной электрокинетической хроматографии энантиомеров в мицеллярную систему включают хиральные селекторы: ковалентно связанные с поверхностно-активным веществом (соли N-додеканоил-L-аминокислот, соли желчных кислот и др.) или вводимые в состав электролита (циклодекстрины).

Для улучшения селективности разделения в мицеллярной электрокинетической хроматографии применяют также вещества, способные изменить взаимодействие аналита с мицеллой путем адсорбции на последней. Этими добавками могут быть второе поверхностно-активное вещество (ионное или неионное), ведущее к образованию смешанных мицелл, катионы металлов, которые распределяются в мицелле и образуют координационные комплексы с аналитом, а также ион-парные соединения, которые взаимодействуют с заряженными компонентами пробы и задерживают их, например, тетрабутиламмония бромид.

В капиллярном гель-электрофорезе разделение происходит внутри капилляра, заполненного гелем, действующим в качестве молекулярного сита. При равном отношении заряда к массе более мелкие компоненты движутся в капилляре быстрее, чем более крупные. Капиллярный гель-электрофорез может быть использован для разделения биологических макромолекул по их молекулярной массе. Электроосмотический поток при этом полностью устраняется путем модификации внутренней стенки капилляра.

В капиллярном гель-электрофорезе используются два типа гелей: химически модифицированные и динамически модифицированные. Химически модифицированные гели, как, например, поперечно-сшитый полиакриламид, поливинилпирролидон, готовятся внутри капилляра посредством полимеризации мономеров. Они обычно связаны с кварцевой стенкой капилляра и не могут быть удалены без его разрушения. При использовании таких гелей для анализа белков в редуцирующих условиях буферный раствор содержит обычно додецилсульфат натрия и образцы перед вводом денатурируют нагреванием в смеси додецилсульфата натрия с 2-меркаптоэтанолом или дитиотрейтолом. При анализе в нередуцирующих условиях 2-меркаптоэтанол и дитиотрейтол не используют. Разделение в поперечно сшитых гелях оптимизируют модификацией буферного раствора (как указано в разделе «Капиллярный зонный электрофорез») и контролем пористости геля во время его приготовления. Пористость этих гелей регулируют изменением концентрации акриламида, а также его соотношения со сшивающим реагентом. Уменьшение пористости геля ведет к уменьшению подвижности аналитов. Из-за неподвижности таких гелей допустимо только электрокинетическое введение пробы.

Динамически модифицированные гели являются гидрофильными полимерами, как, например, линейный полиакриламид, производные целлюлозы, декстран и т. п., которые могут быть растворены в водных разделительных буферных растворах с образованием разделяющей среды, действующей как молекулярное сито. После приготовления они могут быть введены в капилляр под давлением. Замена геля перед каждой инжекцией улучшает воспроизводимость разделения. Пористость гелей увеличивается при использовании полимеров с большей молекулярной массой или уменьшении концентрации полимера. Для выбранного буферного раствора уменьшение пористости геля ведет к уменьшению подвижности компонентов раствора. Так как растворение этих полимеров в буферном растворе дает растворы с низкой вязкостью, может быть использован гидродинамический или электрокинетический ввод пробы.

В изоэлектрическом фокусировании заряженные молекулы движутся под воздействием электрического поля в рН-градиенте, созданном амфолитами с широким диапазоном значений рI, растворенными в буфере разделения.

Тремя основными этапами изоэлектрического фокусирования являются введение пробы, фокусирование и мобилизация.

Этап введения пробы осуществляют в один прием, когда образец смешивается с амфолитами и вводится в капилляр под давлением или под вакуумом, или в несколько приемов, когда в капилляр последовательно вводится ведущий буферный раствор, амфолиты, образец, смешанный с амфолитами, снова амфолиты и, наконец, заключающий буферный раствор. Объем образца должен быть достаточно малым, чтобы не изменять рН-градиент.

На этапе фокусирования амфолиты движутся после приложения напряжения к катоду или аноду согласно их суммарному заряду, создавая, таким образом, рН-градиент от более низкого рН (у анода) к более высокому рН (у катода). Движение каждого аналита продолжается до тех пор, пока он не достигнет рН, соответствующего его изоэлектрической точке (pI).

На этапе мобилизации полосы разделенных компонентов приводятся в движение в сторону детектора благодаря электроосмотическому потоку путем приложения давления после стадии фокусирования или с помощью добавления солей к флакону у катода или анода.

Достигнутое разделение, выражаемое как , зависит от градиента , количества амфолитов, имеющих различные значения pI, молекулярного коэффициента диффузии (D), интенсивности электрического поля (E) и вариации электрофоретической подвижности аналита в зависимости от :

Основными параметрами, которые следует учитывать при разработке разделения, являются:

– Напряжение. В капиллярном изоэлектрическом фокусировании используется очень высокое электрическое поле – от 300 до 1000 В/см на этапе фокусирования.

– Капилляр. Электроосмотический поток должен быть уменьшен или полностью подавлен. Для уменьшения электроосмотического потока используют капилляры с модифицированной внутренней поверхностью.

– Растворы. Анодный флакон заполняется буферным раствором с рН ниже, чем pI наиболее кислого амфолита, а катодный флакон заполняется раствором с рН выше, чем pI наиболее щелочного амфолита. Обычно для анода используется фосфорная кислота, а для катода – натрия гидроксид.

Добавление в раствор амфолита полимера, такого как метилцеллюлоза, ведет к подавлению конвекции и электроосмотического потока при увеличении вязкости. Широкие диапазоны рН используются для оценки изоэлектрической точки, в то время как более узкие диапазоны применяются для улучшения точности.

Осаждение белков в их изоэлектрической точке во время этапа фокусирования предотвращают в случае необходимости с помощью таких буферных добавок, как глицерин, поверхностно-активные вещества, мочевина или цвиттерионные буферные соли.

Изотахофорез – это метод разделения, который проводится в режиме поддержания постоянства тока (все разделенные зоны движутся с одной скоростью). При этом должно обеспечиваться постоянное отношение между концентрацией и подвижностью ионов в каждой зоне.

В капиллярном изотахофорезе применяются два буферных раствора, между которыми находятся зоны аналита. Например, для анализа анионов буфер должен быть выбран таким образом, чтобы ведущий электролит содержал анион с фактической подвижностью, превышающей характерную для разделяемых веществ. Аналогично ион завершающего электролита должен иметь меньшую подвижность, чем подвижность разделяемых веществ. В результате разделения ведущий анион движется первым, за ним движется анион с очередной высокой подвижностью и т. д. В капиллярном изотахофорезе индивидуальные анионы мигрируют в дискретных зонах, но все движутся с той же скоростью, что и ведущий анион. Концентрации анализируемых веществ одинаковы в каждой зоне; таким образом, длина каждой зоны пропорциональна количеству отдельного компонента. Зоны менее сконцентрированные, чем ведущий электролит, сужаются, зоны более сконцентрированные – расширяются. Принцип изотахофореза используется для предварительного концентрирования образца перед разделением его компонентов с помощью других методик капиллярного электрофореза.

Качественный анализ. К качественным результатам относится определение идентичности компонента пробы внутреннему или внешнему стандартному веществу по времени появления соответствующего пика.

Полуколичественный анализ. Полуколичественным результатом считается определение концентрации компонента пробы по площади или высоте пика при соотношении сигнал/фон от 2:1 до 3:1.

Отношение сигнал/шум (S/N) рассчитывают по формуле:

где: H – высота пика целевого компонента на электрофореграмме раствора сравнения, измеренная от максимума пика до базовой линии сигнала;

h – уровень шума на электрофореграмме, полученной после ввода холостой пробы.

Количественный анализ. Количественным результатом является определение концентрации искомого компонента пробы по площади пика при соотношении сигнал/шум больше, чем 3:1.

При количественном анализе образца для компенсации различий во временах миграции от анализа к анализу и для устранения различий в сигналах компонентов образца, обладающих различными временами миграции, площади пиков должны быть нормированы на соответствующие времена миграции. При использовании внутреннего стандарта необходимо убедиться, что ни один пик исследуемого вещества не маскируется пиком внутреннего стандарта.

Абсолютное содержание компонентов рассчитывают по отношению площадей анализируемого пика и пика стандарта. Процентное содержание одного или более компонентов анализируемого образца рассчитывают путем определения процентной доли скорректированных площадей пиков от общей площади всех пиков, за исключением пиков, вызванных растворителями или другими добавленными реактивами (процедура нормализации).

В качестве параметров пригодности системы используются: кажущееся число теоретических тарелок (N), разрешение (R_s), фактор емкости (k’) (только для мицеллярной электрокинетической хроматографии) и фактор симметричности (A_s).

Кажущееся число теоретических тарелок (N) может быть рассчитано эмпирически по формуле:

где t_r – время миграции или расстояние вдоль базовой линии от точки ввода пробы до перпендикуляра, опущенного из максимума пика соответствующего компонента;

w_0,5 – ширина пика на половине высоты.

Разрешение (R_s) между пиками схожей величины двух компонентов вычисляют по формуле:

где t_r,b и t_r,a – времена миграции или расстояния вдоль базовой линии от точки ввода пробы до перпендикуляров, опущенных из максимумов двух соседних пиков;

Фактор симметричности пика рассчитывают по формуле:

где w_0,05 – ширина пика на 1/20 от его высоты;

d – расстояние между перпендикуляром, опущенным из максимума пика, и передним краем пика на 1/20 от высоты пика.

В качестве параметров пригодности используются также испытания на воспроизводимость площади (стандартное отклонение площади или отношения площади к времени миграции) и воспроизводимость времени миграции (стандартное отклонение времени миграции).

В фармакопейной статье указывают использование определенного капилляра, буферного раствора, метода предварительной подготовки капилляра, пробоподготовки и условий миграции.

источник

+7 (499) 346-74-93
+7 (800) 200-74-93 БЕСПЛАТНО ПО РОССИИ

+7 (800) 200-74-93 Бесплатно по России

• Каталог продукции
• Инжиниринг
• Валидация
• Сервис
• Собственное производство
• Наши лаборатории
• Научно-образовательный центр
• Трансфер технологий

DEFAULT_VALUE] => ) [manufacturer] => Array ( [ID] => 7 [TIMESTAMP_X] => 2014-07-29 12:35:13 [IBLOCK_ID] => 1 [NAME] => Производитель [ACTIVE] => Y [SORT] => 500 [CODE] => manufacturer [DEFAULT_VALUE] => [PROPERTY_TYPE] => E [ROW_COUNT] => 1 [COL_COUNT] => 30 [LIST_TYPE] => L [MULTIPLE] => N [XML_ID] => [FILE_TYPE] => [MULTIPLE_CNT] => 5 [TMP_ID] => [LINK_IBLOCK_ID] => 2 [WITH_DESCRIPTION] => N [SEARCHABLE] => N [FILTRABLE] => N [IS_REQUIRED] => Y [VERSION] => 1 [USER_TYPE] => [USER_TYPE_SETTINGS] => [HINT] => [PROPERTY_VALUE_ID] => 2010 [VALUE] => 183 [DESCRIPTION] => [VALUE_ENUM] => [VALUE_XML_ID] => [VALUE_SORT] => [

DEFAULT_VALUE] => ) [paramsInText] => Array ( [ID] => 13 [TIMESTAMP_X] => 2014-08-04 12:50:00 [IBLOCK_ID] => 1 [NAME] => Параметры товара [ACTIVE] => Y [SORT] => 500 [CODE] => paramsInText [DEFAULT_VALUE] => [PROPERTY_TYPE] => S [ROW_COUNT] => 1 [COL_COUNT] => 30 [LIST_TYPE] => L [MULTIPLE] => N [XML_ID] => [FILE_TYPE] => [MULTIPLE_CNT] => 5 [TMP_ID] => [LINK_IBLOCK_ID] => 0 [WITH_DESCRIPTION] => N [SEARCHABLE] => N [FILTRABLE] => N [IS_REQUIRED] => N [VERSION] => 1 [USER_TYPE] => HTML [USER_TYPE_SETTINGS] => Array ( [height] => 200 ) [HINT] => [PROPERTY_VALUE_ID] => [VALUE] => [DESCRIPTION] => [VALUE_ENUM] => [VALUE_XML_ID] => [VALUE_SORT] => [

DEFAULT_VALUE] => ) [bestOffer] => Array ( [ID] => 70 [TIMESTAMP_X] => 2014-08-29 09:59:41 [IBLOCK_ID] => 1 [NAME] => Лучшее предложение [ACTIVE] => Y [SORT] => 500 [CODE] => bestOffer [DEFAULT_VALUE] => [PROPERTY_TYPE] => L [ROW_COUNT] => 1 [COL_COUNT] => 30 [LIST_TYPE] => L [MULTIPLE] => N [XML_ID] => [FILE_TYPE] => [MULTIPLE_CNT] => 5 [TMP_ID] => [LINK_IBLOCK_ID] => 0 [WITH_DESCRIPTION] => N [SEARCHABLE] => N [FILTRABLE] => N [IS_REQUIRED] => N [VERSION] => 1 [USER_TYPE] => [USER_TYPE_SETTINGS] => [HINT] => [PROPERTY_VALUE_ID] => [VALUE] => [DESCRIPTION] => [VALUE_ENUM] => [VALUE_XML_ID] => [VALUE_SORT] => [VALUE_ENUM_ID] => [

DEFAULT_VALUE] => ) [inStock] => Array ( [ID] => 71 [TIMESTAMP_X] => 2014-08-29 09:59:41 [IBLOCK_ID] => 1 [NAME] => Есть на складе [ACTIVE] => Y [SORT] => 500 [CODE] => inStock [DEFAULT_VALUE] => [PROPERTY_TYPE] => L [ROW_COUNT] => 1 [COL_COUNT] => 30 [LIST_TYPE] => L [MULTIPLE] => N [XML_ID] => [FILE_TYPE] => [MULTIPLE_CNT] => 5 [TMP_ID] => [LINK_IBLOCK_ID] => 0 [WITH_DESCRIPTION] => N [SEARCHABLE] => N [FILTRABLE] => N [IS_REQUIRED] => N [VERSION] => 1 [USER_TYPE] => [USER_TYPE_SETTINGS] => [HINT] => [PROPERTY_VALUE_ID] => [VALUE] => [DESCRIPTION] => [VALUE_ENUM] => [VALUE_XML_ID] => [VALUE_SORT] => [VALUE_ENUM_ID] => [

DEFAULT_VALUE] => ) [documents] => Array ( [ID] => 74 [TIMESTAMP_X] => 2015-07-16 10:58:43 [IBLOCK_ID] => 1 [NAME] => Документация [ACTIVE] => Y [SORT] => 500 [CODE] => documents [DEFAULT_VALUE] => [PROPERTY_TYPE] => F [ROW_COUNT] => 1 [COL_COUNT] => 30 [LIST_TYPE] => L [MULTIPLE] => Y [XML_ID] => [FILE_TYPE] => [MULTIPLE_CNT] => 5 [TMP_ID] => [LINK_IBLOCK_ID] => 0 [WITH_DESCRIPTION] => Y [SEARCHABLE] => N [FILTRABLE] => N [IS_REQUIRED] => N [VERSION] => 1 [USER_TYPE] => [USER_TYPE_SETTINGS] => [HINT] => [PROPERTY_VALUE_ID] => [VALUE] => [DESCRIPTION] => [VALUE_ENUM] => [VALUE_XML_ID] => [VALUE_SORT] => [

DEFAULT_VALUE] => ) [pdf] => Array ( [ID] => 81 [TIMESTAMP_X] => 2016-08-26 12:41:46 [IBLOCK_ID] => 1 [NAME] => PDF [ACTIVE] => Y [SORT] => 500 [CODE] => pdf [DEFAULT_VALUE] => [PROPERTY_TYPE] => F [ROW_COUNT] => 1 [COL_COUNT] => 30 [LIST_TYPE] => L [MULTIPLE] => N [XML_ID] => [FILE_TYPE] => [MULTIPLE_CNT] => 5 [TMP_ID] => [LINK_IBLOCK_ID] => 0 [WITH_DESCRIPTION] => Y [SEARCHABLE] => N [FILTRABLE] => N [IS_REQUIRED] => N [VERSION] => 1 [USER_TYPE] => [USER_TYPE_SETTINGS] => [HINT] => [PROPERTY_VALUE_ID] => [VALUE] => [DESCRIPTION] => [VALUE_ENUM] => [VALUE_XML_ID] => [VALUE_SORT] => [

Высокоэффективный капиллярный электрофорез P/ACE MDQ

Фирма Beckman Coulter создала свой первый прибор высокоэффективного капиллярного электрофореза в 1989 году и начала им серию P/ACE . Уже тогда было применено много эффективных инженерных решений (картридж для капилляра с водяным охлаждением, микропрепаративный коллектор фракций и т .д ), делающих прибор не только передовым словом технологии, но также надежным и удобным. Beckman Coulter является признанным лидером в области технологии капиллярного электрофореза. Фирма постоянно развивает и внедряет новые возможности в оборудование, программное обеспечение и наборы реактивов. К таким новшествам относятся лазерный флуориметрический детектор (LIF), детектор диодная матрица, независимое термостатирование буферов и образца, интерфейс для подключения внешних детекторов и др.

Система капиллярного электрофореза P/ACE MDQ применяется и конфигурируется для исследований, создания стандартных методов и контроля качества. Капиллярный электрофорез позволяет проводить качественный, количественный анализ и анализ примесного состава.

Система имеет модульную структуру и сменные детекторы. Стандартно прибор может комплектоваться УФ/Вид, диодно-матричным и LIF детекторами. С использованием стандартного внешнего интерфейса может подключаться любой дополнительный внешний детектор (например, массспектрометрический ).

Предлагаемая фирмой BECKMAN система капиллярного электрофореза P/ACE MDQ в сочетании с готовыми наборами реактивов и капилляров позволяет успешно решать самые разнообразные аналитические задачи, в том числе разделение белков, олигонуклеотидов и фрагментов ДНК, разделение энантиомеров и низкомолекулярных веществ (витаминов, аминокислот, антибиотиков и др.), определение структуры олигосахаридов и многое другое.

В этом высокопроизводительном приборе для разработки новых методик анализа лекарственных веществ и контроля качества фармацевтической продукции, образцы размещаются в 96-луночных планшетах, буферы — в кри о- или микропробирках . Все исследования полностью автоматизированы. Два сменных детектора — УФ-детектор и детектор на основе диодной матрицы.

Сравнительно новый аналитический метод. В практике с 1989 года.

Является дополнением или альтернативой Высокоэффективной жидкостной хроматографии и в значительной мере гель-электрофорезу

В области медицинской диагностики капиллярный электрофорез это прибор позволяющий контролировать уровень медикаментов в крови, моче, ЦСЖ или слюне при минимальной пробоподготовке или вообще без нее, производить анализ катехоламинов и других биогенных аминов крови и мочи .( в комплекте с лазерным флуориметром ). А также производить:

-Анализ белков крови и мочи.

-Определение гликозилированного гемоглобина при сахарном диабете.

-Аномальных гемоглобинов при талассемии и сходных заболеваниях.

-Анализ липопротеинов крови.

-Анализ биологически активных пептидов в крови и моче.

-Изоферментов креатинфосфокиназы , щелочной фосфатазы, и т.п.

Как прибор для контроля качества медикаментов и пищевых веществкапиллярный электрофорез идеален из-за минимальной пробоподготовки , крайней устойчивости к посторонним примесям в пробе и низкой себестоимости анализа.

Капиллярный электрофорез это единственный в своем роде способ разделения энантиомеров в силу крайней экономичности и большей разрешающей способности по сравнению с НР LC

Высокочувствительный лазерный флуориметр и наборы для DNA позволяют крайне эффективно производить HLA-типирование и идентификацию личности по STR участкам ДНК, другие работы с ДНК и РНК. Прекрасное дополнение ПЦР!

Стандартные интерфейсы позволяют легко подключить прибор к масс-спектрометру. Такой прибор просто незаменим в научной работе, службе СЭС, криминалистике и при допин г- контроле.

Работа на капиллярном электрофорезе имеет следующие достоинства :

— Практически не требуется специализированных реагентов.

— Основным расходным материалом являются буферные соли — бораты, фосфаты, ацетаты, SDS, NaOH 0,1моль/л и HCL 0,1моль/л, флуоресцентный маркер, если работе ведется с лазером, и капилляр.

— Капилляр многоразовый и служит дольше колонки HPLC, легче регенерируется и стоит 5 раз дешевле.

— Разрешающая способность капилляра значительно выше

— Даже при очень интенсивной работе расходуется 10-20 миллилитров буфера в день.

— Все буферные растворы легко изготавливаются в любой лаборатории,

— Рабочая чувствительность при комплектации лазерным флуориметром достигает -12М

— Специальные микропробирки позволяют работать с пробами по 5-10 мкл. На анализ забирается не более — 0,1мкл пробы.

— Стандартные пробирки, мини и микро размещаются в одной карусели.

В РЕЗУЛЬТАТЕ ПО СРАВНЕНИЮ С ВЭЖХ:

— Расходы на растворители, реагенты и пробоподготовку в 50-200 раз ниже.

— Трудоемкость в 3-5 раз меньше

— Производительность (проб/день) на 15-20% выше.

— Обслуживание проще (кроме автосамплера нет движущихся деталей)

Beckman использует жидкостное охлаждение капилляра. Охлаждающая жидкость неэлектропроводна , негорюча , нетоксична. Это позволяет использовать капилляры большого внутреннего диаметра (до 200 мкм) для препаративных разделений, большие токи и напряжения для быстрых разделений, использовать высокие (0,1-0,4 моль/л) концентрации солей там где это необходимо

Эти режимы работы невозможны при воздушном охлаждении

Воспроизводимость также выше при жидкостном охлаждении

Прибор оборудован автосамплером , по заказу может быть оборудован холодильником для образцов.

В автосамплере может производиться автоматическая дериватизация проб. В препаративном режиме он же служит коллектором фракций.

Beckman Instruments — предлагает готовые наборы капилляров и реактивов для самых разнообразных разделений.

— для разделения DNA до 100 пар оснований

— для разделения DNA до 1000 пар оснований

— для разделения DNA до 20 000 пар оснований

— для разделения белков в геле SDS-PAAG (14-200 kDa )

— для разделения энантиомеров .

— для разделения белков и пептидов

— для изоэлектрофокусирования белков рН3-10

— для разделения малых молекул (витамины, аминокислоты, антибиотики, антиконвульсанты и др.)

477170 МОДЕЛЬ P/ACE 5000, UV ДЕТЕКТОР

477172 МОДЕЛЬ P/ACE 5500, DAD ДЕТЕКТОР

267845 МОДЕЛЬ P/ACE DNA, UV + LIF ДЕТЕКТОР

267819 МОДЕЛЬ P/ACE DNA, LIF ДЕТЕКТОР

144001 P/ACE MDQ UV ДЕТЕКТОР

144000 P/ACE MDQ DAD ДЕТЕКТОР

477126 LIF488 ДЕТЕКТОР ДЛЯ P/ACE

267838 LIF635 ДЕТЕКТОР ДЛЯ P/ACE

144901 LIF488 ДЕТЕКТОР ДЛЯ MDQ

477430 НАБОР ДЛЯ АНАЛИЗА МАЛЫХ МОЛЕКУЛ Amino

477445 НАБОР ДЛЯ Э/ФОРЕЗА БЕЛКОВ Neutral

477435 НАБОР ДЛЯ Э/ФОРЕЗА БЕЛКОВ Amino

477420 НАБОР ДЛЯ АНАЛИЗА БЕЛКОВ ПО МАССЕ SDS14-200

477490 НАБОР ДЛЯ ИЗОЭЛЕКТРОФОКУСИРОВАНИЯ БЕЛКОВ

477480 НАБОР ДЛЯ АНАЛИЗА ДНК до 100 оснований

477410 НАБОР ДЛЯ АНАЛИЗА ДНК до 1000 пар оснований

477486 НАБОР ДЛЯ АНАЛИЗА ДНК до 20 000 пар оснований

501300 НАБОР ДЛЯ АНАЛИЗА ОПТИЧЕСКИХ ИЗОМЕРОВ

477600 НАБОР ДЛЯ АНАЛИЗА СТРУКТУРЫ ОЛИГОСАХАРИДОВ

Система P/ACE MDQ имеет ряд особенностей.

— Прибор работает с микроплашками , виалками 2 и 0,5 мл и пробирками для PCR. Может программироваться, как позиция виалки для отбора, так и вывода образца.

— Возможно задавать до 36 пар буферов.

Улучшенный температурный контроль. Патентованная система водяного охлаждения намного эффективнее воздушного. Такая система дополнительно позволяет:

— Использовать буферы большой ионной силы (500 ммоль/л) для улучшения разделения сложных смесей

— Использовать капилляры большого диаметра (150-200 мкм) для увеличения объема вводимой пробы и улучшения чувствительности.

— Улучшает воспроизводимость времени миграции

Опция термостатирования образца от 5 до 60°C позволяет работать с термонестабильными соединениями

Система ввода позволяет работать в трех режимах ввода пробы: вакуум, давление, электрокинетическая инжекция

Модульная система позволяет легко менять и подключать внешние детекторы

Валидация – специальное программное обеспечение, тестовые смеси и точное оборудование позволяют проводить валидации в соответствии с GLP и CGMP.

Простое и интуитивно понятное программное обеспечение 32 Carat под управлением операционной системы Windows позволяет легко управлять прибором, собирать и обрабатывать данные. Программное обеспечение специально ориентировано на капиллярный электрофорез и при обработке учитывает особенности данного аналитического метода.

Выпускается ряд стандартных систем оптимизированных под решение конкретных задач. К ним поставляются стандартные наборы реагентов.

источник

Универсальный оптимизированный полимер для проведения капиллярного электрофореза 3130 POP-7 TM Performance Optimized Polymer, 3.5 мл

Опубликованный тендер

Закон, регулирующий правовые отношения в области государственных закупок.

• Идентификационный код закупки (ИКЗ) по 44-ФЗ: определение, формирование, расшифровка и поиск закупок по ИКЗ
• Как оплатить неустойку по 44-ФЗ
• Неустойка по 44-ФЗ: разбираемся с особенностями начисления
• Предметы роскоши по 44-ФЗ: как их опознать
• Что такое госзакупки: полное определение понятия, виды закупок по 44-ФЗ
• Чем обычный договор отличается от контракта по 44-ФЗ
• Вопрос: Я продаю компьютеры. Могу ли я участвовать в закупках по 44фз, если у меня нет документов о том, что эта техника — российского происхождения?
• Переторжка по 44-ФЗ и 223-ФЗ: особенности, процедура проведения
• Что не так с 44-ФЗ, или Почему злится Артемий Лебедев
• Существенные условия контракта по 44-ФЗ: что к ним относится и можно ли их изменять?
• Расширили список запрещенных иностранных товаров по 44 ФЗ
• Что изменилось в закупках в конце мая: обзор Постановлений Правительства
• В каких случаях указывать и подтверждать страну происхождения товара по 44-ФЗ?
• Банковское сопровождение контракта по 44-ФЗ: виды, случаи и порядок осуществления
• Исключения из правил: что нельзя закупить по 44-ФЗ или 223-ФЗ
• Как проходят закупки у СМП по 223-ФЗ и 44-ФЗ
• Сравниваем 44-ФЗ и 223-ФЗ: таблица для чайников
• Способы закупок по 44-ФЗ и 223-ФЗ
• Оплата по контракту по 44-ФЗ: как получить вовремя
• Независимый регистратор по 44-ФЗ: обзор, функции, цели, плюсы и минусы использования
• Национальный режим при осуществлении закупок по 44-ФЗ и 223-ФЗ: запреты, ограничения, условия допуска

ИНН: 7736182930 / КПП: 773601001

• Как отличить убытки от неустойки
• «Зачем потеть и страдать, затачивая техзадание под своего подрядчика?» — подумал как-то заказчик и обратился к компьютерщикам.
• Заказчик не платит
• Контракт исполнен, а оплаты нет — знакомая ситуация?
• Ошибки заказчика и обжалование действий заказчика
• Может ли заказчик поменять техзадание после публикации закупки?
• Как заказчики злоупотребляли своими правами
• Права поставщика, о которых молчат заказчики
• Заказчик разместил аукцион на ремонтные работы. Сроки выполнения работ — нереальные. Стоит ли участвовать?
• Топ-5 ловушек заказчика в документации
• Топ-5 ловушек заказчика в техзадании
• Может ли поставщик увидеть заявки конкурентов?
• Об исчезновении строительства детского сада.
• Любовь заказчика к ПДФ (pdf)
• Положение о закупках по 223-ФЗ: содержание, структура, примеры
• ФАС в шоке: новое нарушение госзаказчиков
• Кто такие государственные заказчики
• Общение с заказчиками

При прокрутке вниз Вы можете получить очень полезную информацию, подобранную специально для Вас нашей программой. А также самые интересные и актуальные статьи о тендерах и закупках, которые мы подобрали для Вас на просторах интернета.

• 1
• 2
• 3
• 4
• 5
• 6
• 7
• 8
• 9
• 10
• 11
• 12
• 13
• 14
• 15
• 16
• 17
• 18
• 19
• 20
• 21
• 22
• 23
• 24
• 25
• 26
• 27
• 28
• 29
• 30
• 31
• 32
• 33
• 34
• 35
• 36
• 37
• 38
• 39
• 40
• 41
• 42
• 43
• 44
• 45
• 46
• 47
• 48
• 49
• 50
• 51
• 52
• 53
• 54
• 55
• 56
• 57
• 58
• 59
• 60
• 61
• 62
• 63
• 64
• 65
• 66
• 67
• 68
• 69
• 70
• 71
• 72
• 73
• 74
• 75
• 76
• 77
• 78
• 79
• 80
• 81
• 82
• 83
• 84
• 85
• 86
• 87
• 88
• 89
• 90
• 91
• 92
• 93
• 94
• 95
• 96
• 97
• 98
• 99
• 100
• 101
• 102
• 103
• 104
• 105
• 106
• 107
• 108
• 109
• 110
• 111
• 112
• 113
• 114
• 115
• 116
• 117
• 118
• 119
• 120
• 121
• 122
• 123
• 124
• 125
• 126
• 127
• 128
• 129
• 130
• 131
• 132
• 133
• 134
• 135
• 136
• 137
• 138
• 139
• 140
• 141
• 142
• 143