Голштинская порода обладает высоким потенциалом молочной продуктивности и комплексом качеств, обеспечивающих ей лучшую пригодность к эксплуатации в условиях промышленных технологий [1, 7]. В Рязанскую область завоз первой партии нетелей голштинской породы был из Дании в 1996 году, и сейчас десяток крупных современных хозяйств содержит этих высокопродуктивных животных, в том числе ООО «Авангард». Позже животных завезли в п. Стенькино на животноводческий комплекс, который возглавляет А.В. Абада. В настоящее время на комплексе содержится 1279 животных, в том числе 380 голов дойных коров. Содержание коров летом пастбищное, зимой – стойловое беспривязное (рисунок). Недостатком породы является требовательность к условиям содержания и кормления [3].
На животноводческом комплексе заготовка кормов производится самостоятельно. Кормовая база в хозяйстве адаптирована к природным условиям Рязанской области с учетом степени интенсификации животноводства. Работники вкладывают в производство кормов свой интеллектуальный потенциал и труд. Структура полеводства – кормовая. В хозяйстве принят зеленый конвейер – это бесперебойное в размере полной потребности обеспечение поголовья животных зелеными кормами с ранней весны до поздней осени, которые в летний период введены в рационы коров.
Содержание коров на комплексе
В то же время, по мнению [6], в заготовленных на зиму кормах отмечается недостаток некоторых аминокислот, которые, на наш взгляд, могут быть восполнены глютеном кукурузным, содержащим важные аминокислоты и другие полезные ингредиенты. Питательные вещества кормов воздействуют на организм животных не изолированно друг от друга, а в комплексе [2], что было учтено при составлении кормового рациона.
Материалы и методы исследований
Объект исследования – голштинские коровы. Цель исследований – изучение влияния введения в рацион кормления голштинских коров глютена кукурузного в составе комбикорма на физиологическое состояние животных, одним из показателей которого являются макро- и микроскопические характеристики кала.
В соответствии с расчетами по основам опытного дела [4] сформированы две группы коров по 15 голов: контрольная – основной рацион, рассчитанный по нормам ВИЖ (2003 г.), и опытная – основной рацион + 4 кг глютена кукурузного в составе комбикорма от питательности рациона.
Фекалии отбирались у коров для проведения анализа ректально в дневное время, между кормлениями. Кал исследовался в Рязанской областной ветеринарной лаборатории. Анализ кала на присутствие крахмала проводился в препарате, обработанном люголевским раствором, под влиянием йода крахмальные зерна окрашиваются в фиолетовый или красно-бурый цвет. Нейтральный жир – с реактивом Саатгофа в подогретом препарате. рН определялась с помощью рН-метра. Микробиологические исследования выполнены методом разведения.
Результаты исследований и их обсуждение
Физиологические показатели характеризуют состояние здоровья животного, а, в конечном итоге, молочную продуктивность. Осмотр 30 животных контрольной и опытной группы проведен совместно с начальником животноводческого комплекса А.В. Абадой и ветеринарным врачом О. Киселевым. Внешний вид животных свидетельствует об упитанности коров. Поза животных добровольная, естественная стоячая. Темперамент – живой, животные не агрессивные, спокойные. Животные чистые (в каудальной части загрязнено фекалиями) с блестящей короткой шерстью, направление роста шерсти в одну сторону на симметричных участках. На непигментированных участках кожи цвет бледно-розовый. Кожа эластичная, при закручивании кожная складка быстро расправляется. Влажность кожи умеренная, запах от кожи умеренно специфический. Отечности кожи нет.
Конъюнктива глаз матово-красная, влажная, блестящая, склера бледно-розовая. Повреждений конъюнктивы, наложений, припухлостей и истечений не обнаружено. Слизистая оболочка носовой полости – влажная, гиперемирована, целостность не нарушена. Сыпей, наложений, инородных тел не обнаружено. Слизистая оболочка ротовой полости – бледно-розовая, влажная, блестящая. Травм, припухлостей и истечений не обнаружено. Слизистая оболочка преддверия влагалища бледно-розовая, блестящая, влажность умеренная. Наложений, инородных тел, сыпей и повреждений нет. На всех конечностях целостность копытного рога не нарушена, болезненности не отмечено. Температура тела составляла 38,3 °С, что соответствовало норме.
Вымя ваннообразной формы; большое; волосяной покров короткий, редкий; при пальпации безболезненное; умеренно теплое; умеренно-плотной консистенции; кожа бледно-розовая, эластичная, целостность не нарушена, наложений, припухлостей не отмечено. Соски конической формы, длинные; кожа чистая, выделений не отмечено; безболезненны, эластичные; тонус сфинктера умеренный; нарушения проходимости канала не выявлено; струя выдаиваемого молока – сплошная, прямая. Данная характеристика вымени соответствует требованию к корове молочного типа.
Аппетит у животных хороший, жажды нет, расстройств приема корма и воды не наблюдалось. Обоняние сохранено, животные реагируют на запах корма. Жевание энергичное, без посторонних шумов, глотание – свободное. Жвачка начиналась через 20–30 минут после приёма корма, продолжалась в среднем 30 минут.
Клинические исследования мочи и крови были в норме. Содержание гемоглобина было выше у коров опытной группы на 5,7 %, общего белка на 21 %, эритроцитов на 26 % по сравнению с аналогичными показателями коров контрольной группы.
Физические свойства кала напрямую зависят от количества и качества состава корма, поэтому при введении в рацион кормления глютена кукурузного эти исследования актуальны.
Фекалии состояли из непереваренных остатков корма, пищеварительных соков, эпителия, минеральных веществ и микробов. Макроскопические исследования проводились с целью определения количества кала, свойства и наличия посторонних примесей. Микроскопические исследования кала – для оценки переваривающей способности желудочно-кишечного тракта. При этом большое значение имеет определение кормовых остатков в кале, количество и характер которых зависят от корма и функционального состояния органов пищеварения. В нормальном кале больше всего детрита, не поддающихся распознаванию кормовых составляющих распавшихся клеток и микробов. Чем полнее переваривание, тем больше детрита в кале [5].
Частота акта дефекации в естественной позе, в среднем у коров обеих групп 2–3 раза за 3 часа. Макроскопическая характеристика кала исследуемых коров соответствовала норме (таблица).
Морфологические и биохимические свойства кала голштинских коров контрольной и опытной групп (средние данные)
источник
Гельминтокопроскопия (от греческого слова helmins – червь, kopros – кал, навоз, skopeo – смотрю) – совокупность методов взятия, обработки и исследования проб фекалий животных и человека с целью обнаружения в них яиц, личинок гельминтов или же самих паразитов, их фрагментов (членики, отрезки) и постановки диагноза.
Методы исследования направленные на отыскание самих паразитов и их отдельных фрагментов называется гельминтоскопией. Яйца гельминтов обнаруживают гельминтоовоскопическими, а личинок гельминтоларвосколическими методами
1. Порядок взятия и доставки материала для исследований
Фекалии у животных берут либо из прямой кишки, либо с земли (или пола) в зависимости от вида гельминта в количестве 4-10 г. При взятии их из прямой кишки на руки надевают тонкие резиновые перчатки или напальчники. При исследовании на кишечные стронгилятозы и легочные гельминты (особенно при диктиокаулезе) фекалии нужно брать только из прямой кишки во избежание загрязнения исследуемого материала личинками свободно живущих гельминтов. Допустимо отбирать пробы с пола, когда исследования проводят на заболевания, при которых го яиц не выходят личинки (фасциолез, дикроцелиоз, мониезиозы, аскаридиозы и т.д.).
У крупного рогатого скота, лошадей, собак фекалии берут индивидуально, указывая кличку и номер животного. У свиней, овец, оленей, кроликов и пушных зверей не всегда удается индивидуальное взятие проб, у этих животных фекалии чаще берут групповым методом, при этом указывают группу, отару, № станка и клетки.
Исследуют не менее 10% животных отары, фермы, хозяйства. Доставляют пробы фекалии в стеклянной, пластмассовой таре, целлофановых мешочках или пергаментной бумаге с обязательной описью проб в сопроводительном документе. При этом указывают, хозяйство, отделение, бригаду, участок, ферму, вид животного, их возраст, на какие гельминты исследовать, дату взятия и направления материала. Клички, номера животных, станка, клетки должны соответствовать номеру пробы фекалий на упаковке.
Гельминтоскопию применяют для обнаружения в исследуемом материале половозрелых и юных гельминтов или их фрагментов. Гельминты нередко отходят сами. А у цестод некоторых групп систематически отторгаются членики и фрагменты (отрезки) стробилы с яйцами и выделяются наружу. Исследуя фекалии животных невооруженным глазом можно заметить гельминтов или их фрагменты и членики, а иногда приходится использовать специальные методы исследования.
Особое значение гельминтоскопия имеет при цестодозах, а также при диагностической дегельминтизации.
С целью обнаружения члеников имагинальных цестод осматривают свежие фекалии. У овец, северных оленей, телят, лошадей члеников цестод нетрудно заметить при обычном осмотре. В фекалиях ягнят и овец рано утром или после дневного отдыха находят членики мониезий, тизакиезий, аветеллин и стилезий. У плотоядных животных членики цестод из отряда тениата способны активно передвигаться во внешней среде. Поэтому необходимо осматривать свежие фекалии.
Весьма характерны по форме членики огуречного цепня ( Dipylidium caninum ) паразитирующий у собак, лисиц, песцов, енотовидных собак, кошек и других плотоядных, а также у человека. Членики этого паразита внешне напоминают огуречные семена, их легко заметить в фекалиях, выделенных инвазированными животными.
Из специальных методов гельминтоскопии практически прост и приемлем метод последовательного промывания.
2.1. Метод последовательного промывания
При проведения этого метода собирают свежие порции фекалий от животных, их кладут в сосуд, заливают водой в соотношении 1:5 и 1:10, тщательно перемешивают. Взвесь оставляют на 5 мин. для осаждения. Затем верхний слой сливают до осадка, после чего снова заливают водой и повторяют эти операции до тех пор, пока жидкость над осадком не будет прозрачной. После надосадочную жидкость сливают последний раз, а осадок помещают в кювет или чашку Петри для исследования под лупой. Так как одни гельминты хорошо видны на белом фоне, а другие на черном, то для более полной выборки гельминтов чашку Петри ставят то на белую, то на черную бумагу. Гельминты выбирают препаровальной иглой или кисточкой, а затем микроскопируют для установления вида, при этом пользуются ручной, а также штативной лупой или стереоскопическим микроскопом.
При этом методе используют набор из 2 – 4 металлических сит с отверстиями убывающего диаметра. Струей воды промывают фекалии, при этом частицы фекалий уносятся водой, а гельминты в зависимости 6 v величины задерживаются на разных ситах. Затем гельминтов выбирают и исследуют. Этим методом можно собрать гельминтов разной величины
3. Методы гельминтоовоскопии
Гельминтоовоскопия (от латинского ovum – яйцо, греческого skopeo – смотрю) объединяет группу методов исследования, с помощью которых выявляют яйца возбудителей гельминтозов.
Предложено много методов овоскопии. Но не все они заслуживают практического внимания: одни сложны по технике выполнения, при исследовании другими требуется значительное время, третьи малоэффективны. В данной работе мы приведем только те методы, которые заслуживают практического внимания.
Удельный вес яиц тяжелее обычной воды, вследствие этого яйца гельминтов, как более тяжелые частички вымываются из фекалий водой и оседают на дно сосуда с различной скоростью, в зависимости от удельного веса, Быстрее всего оседают яйца более крупного размера.
В растворах же солей высокого удельного веса яйца гельминтов наоборот всплывают (явление флотации) в верхний слой и концентрируются в нем.
На использовании этих физических закономерностей основала технология всех современных методов гельминтоовоскопии, которые подразделяются на три группы:
а) Методы осаждения (седиментации) яиц гельминтов;
б) Методы флотации яиц гельминтов;
в) Комбинированные методы (осаждения и флотации) яиц гельминтов.
3.1. Методы осаждения (седиментации)
Основаны на принципе осаждения взвешенных в жидкости яиц гельминтов, промывки осадка и исследования его. Эти методы применяются в основном для диагностики тех гельминтозов, возбудители которых выделяют яйца с высоким удельным весом (фасциолез, дикроцелиоз, парамфистоматоз, описторхоз и др.). Методики осаждения менее эффективны и более трудоемки, чем флотации. Это связано со сложностью отыскания яиц гельминтов в осадке взвеси.
3.1.1 . Метод последовательных смывов
Пробу фекалий весом 3-5 г кладут в стакан, вливают небольшое количество воды и размешивают палочкой или пинцетом до получения жидкой кашицеобразной массы, затем добавляют воду порциями до объема 50 мл при постоянном размешивании; После взвесь процеживают через металлическое сито или марлю в другой стакан, в нем отстаивают в течение 5-10 мин. Затем верхний слой жидкости над осадком сливают, а к осадку добавляют новую порцию воды и вновь отстаивают в течение 5 – 10 мин. Описанная процедура повторяется до тех-пор, пока вода не станет прозрачной. Ее в последний раз сливают, а осадок (около 5 мл) разливают на предметные стекла или стекла большего размера (12×19) и микроскопирутот.
Эта методика широко применяется в ветеринарных лабораториях для диагностики фасциолеза, дикроцелиоза, парамфистоматоза, эуриггрематоза и других гельминтозов жвачных. Вместе с тем, она трудоемка и по диагностической эффективности значительно уступает специальным флотационным и комбинированным методам гельминтоовоскопии.
Этот метод предложен ял я диагностики драйшеоза и габромематоза лошадей. Основан на принципе осаждения и концентрации яиц 150-30° г фекалий помещают на металлическом сите или марле в большую воронку с верхним диаметром 15-20 см. Предварительно на нижний конец воронки надевают резиновую трубку длиной 10-15 см с зажимом на конце. Воронку укрепляют в штативе. Фекалии разрыхляют, заливают доверху теплой водой (38 – 39°С) и выдерживают 4-24 часа. Затем зажим осторожно открывают, и жидкость выпускают в центрифужную пробирку и центрифугируют при 1500 об/мин, в течение 3-х мин. Верхний слой жидкости сливают, а осадок наносят на предметное стекло и микроскопируют.
3.1.3. Метод соскоба с перианальных складок
Эту методику применяют для диагностики оксиуроза лошадей и пассалуроза кроликов. Из деревянной палочки или щепочки делают лопаточки (можно и спички), смачивают смесью глицерина с водой (1:1) и делают соскоб с перианальных складок с внутренней стороны хвоста в области промежности. Соскоб переносят на предметное стекло с указанной смесью, накрывают покровным стеклом и исследуют под микроскопом.
Все методы флотации (от англ. Flotation — всплывание) основаны на единой физической закономерности, обеспечивающей всплытие яиц гельминтов в насыщенных, растворах солей. Для этого рекомендуются растворы различных солей, но предпочтительнее дешевых и повсеместно доступных.
Отдельные методы флотации называются по именам авторов, впервые предложивших ту или иную соль для приготовления флотационной жидкости.
Для этой методики нужен насыщенный раствор поваренной соли, который готовят путем кипячения 400-420 г соли на 1 л воды.
Пробу фекалий весом 3 – 5 г помещают в стакан, заливают небольшим количеством флотационной жидкости, тщательно размешивают, затем добавляют 50-100 мл этого раствора и процеживают через металлическое сито или марлю в один спой в сухой, чистый стакан. Взвесь отстаивают 40-60 мин., затем прикосновением петли снимают поверхностную пленку, переносят ее на предметное стекло для микроскопирования.
Этот метод в отечественной лабораторной практике может применяться для диагностики аскаридоза, стронгилятозов и стронгилоидоза свиней, неоаскаридоза, стронгилятозов стронгилоидозов, мониезиоза,. тизанизиоза, жвачных, параскаридоза, стронгилятозов кишечника лошадей
Плотность насыщенного раствора поваренной соли невысокая — 1,18-1,20. Тогда как удельный вес яиц аскариса равен 1,10-1,14 : а у неоплодотворенных яиц — 1,26, а трихоцефалюса — 1,16-1,22. Поэтому насыщенный раствор поваренной соли способен флотировать только масть яиц аскарид и трихоцефалюсов, по этой причине диагностическая эффективность данной методики невысокая. Кроме того, раствор на предметном стекле быстро кристаллизуется.
3.2.2. Метод Котельникона-Хренова с аммиачной селитрой
Технология этого метода такая же, как и метода Фюллёборна, но в качестве флотационной жидкости применяется нитрат аммония (техническая гранулированная аммиачная селитра) используемый для удобрений. При приготовлении флотационной жидкости на 1 л кипящей воды растворяют 1,5 кг селитры. Плотность раствора — 1,32. Поверхностную пленку можно микроскопировать через 10 мин.
Данная методика обладает высокой диагностической эффективностью. Кроме того, гранулированная аммиачная селитра, применяемая для флотационного раствора — общедоступная дешевая соль и производится в огромном количестве как минеральное удобрение.
В лабораторной практике эта методика широко применяется для выявления яиц аскаридоза, трихоцефалеза, эзофагостомоза и метастронгилеза свиней, неоаскарндоза, стронгилятозов пищеварительного тракта, трихоцефалеза, авителлиноза жвачных, параскаридоза и стронгилятозов лошадей, токсокароза и токсаскаридоза собак, кошек, песцов, лисиц и других плотоядных, стронгилоидоза животных разных видов, аскаридиоза и гетеракидоза кур.
Недостатком этого метода является то, что флотационная жидкость из аммиачной селитры не способна поднять тяжелые яйца трематод (фасциол, парамфистом, описторхисов и др.), т.к. удельный вес этих яиц больше чем 1,3 и раствор быстро кристаллизуется.
3.2.3. Метод Котельникова-Хренова с нитратом свинца
Техника проведения этого метода аналогична методу Фюллёборна. В качестве флотационной жидкости при этом используется насыщенный раствор нитрата свинца из расчета 0,65 кг на 1 л воды. Плотность этой жидкости достигает 1,5. Применение такого флотационного раствора дает возможность диагностировать широкий круг возбудителей гельминтозов и
с его помощью легко выявляются и тяжелые яйла фасциол (удельный вес 1,31-1,35), парамфистоматат (1,33-1,38), дикроцелиумов (1,3) и еще быстрее яйца с меньшим удельным весом, аскаридат, стронгилят, метастронгилюсов, трихоцефалят, стронгилоидесов, аноплоцефаяят (мониезий), тениат, скребней (макраканторинхусов), а также капсулы тизаниезий.
Недостатком данной методики является дороговизна нитрата свинца. Вместе с тем, при работе данным препаратом петли покрываются белым налетом, (нитрат свинца входит в химическую реакцию с металлами), яйца трематод сильно деформируются, что создает определенные трудности при исследовании. Кроме того, используемый препарат соль тяжелого металла — свинца, который является высокоядовитым веществом, что создает опасность для здоровья исследователей и окружающих, отработанные растворы данного препарата запрещено сливать в канализационные стоки. По совокупности этих причин, указанная методика не нашла широкого применения в практике.
Кроме того, в качестве флотационных жидкостей авторами были предложены насыщенные растворы из следующих солей: нитрата натрия — 1 кг препарата на 1 л воды, р — 1,38 (метод Калантаряна), тиосульфата натрия — 1,75 кг препарата на 1 л воды, р — 1,40 (метод Болховитинова), карбоната калия — 0,6 кг на 1 л воды, р — 1,41 (метод Вольфа). Однако все эти методы по тем или иным причинам также не нашли широкого применения в практике.
источник
Исследование дефекации. Акт дефекации характеризуют по частоте, продолжительности, позе, которую принимает животное, а также обращают внимание на то, свободный он или затрудненный, тужится ли животное, проявляет ли болезненную реакцию при этом.
Частота дефекации зависит от свойств корма и его объема, особенностей эксплуатации и от вида животного. У лошадей, например, среднее число актов дефекации за сутки 10, у крупного рогатого скота —45, у собак при мясном рационе — 1.
Продолжительность акта дефекации у здоровых животных исчисляется секундами. Наиболее продолжителен акт у старых собак.
Каждый вид животных имеет специфическую (характерную) позу при акте дефекации.
Нарушения акта дефекации проявляются в виде поноса (диареи), который характеризуется частыми дефекациями и выделением при этом жидкого кала; запора, при котором длительно отсутствует акт дефекации, что может быть связано с нарушением функций кишечника. Функциональные расстройства подразделяют на атонические (ослаблена моторная функция кишечника), спастические (резко усилена моторная функция, что ведет к судорожным сокращениям отдельных участков кишечника), прокто-генные (обусловлены нарушением рефлекса прямого отдела при пониженной чувствительности слизистой оболочки). При непроходимости кишечника акт дефекации прекращается.
Непроизвольная дефекация — дефекация без приема специфической позы, без подготовки и характерных действий (движений) со стороны животного. Непроизвольную дефекацию наблюдают после продолжительного профузного поноса, при тяжелых болезнях, вызывающих истощение и вынужденное положение, а также при параличе и расслаблении анального сфинктера, что часто связано с поражением крестцового отдела спинного мозга.
Болезненная дефекация — сопровождается беспокойством, стонами, испугом животного. Причиной боли служат: патология анального сфинктера, гастроэнтериты, перитонит, миозит поясничных мышц и т. д. После болезненной дефекации может развиться стойкий запор со скоплением каловых масс в прямом отделе.
Напряженная дефекация (тенезмы) характеризуется болезненными позывами к акту дефекации, животное тужится, но кал часто совсем не выделяется или выделяется в небольшом количестве.
Тенезмы отмечают как при запоре, так и при поносе, в случае непроходимости они могут быть непрерывными, что может привести к выпадению прямого отдела кишки.
По завершении исследования акта дефекации приступают к анализу кала.
Анализ кала. Исследование кала — одна из важных составляющих в распознавании болезней органов пищеварения.
Взятие проб. Кал без примесей выделений из мочеполовых органов собирают сразу после акта дефекации. Пробы помещают в целлофановые мешочки или чистые стеклянные баночки, которые маркируют. Описывают внешний вид кала и указывают его количество.
Кал можно извлекать непосредственно из прямого отдела кишечника, а для бактериологических исследований жидкий кал берут специальным резиновым катетером (диаметром 0,4. 0,5 см). Кал желательно исследовать сразу после взятия, а если такой возможности нет, его хранят при температуре 2. 4°С, но не более 12 ч. В теплое время года бактериологическому исследованию кал подвергают в течение 1 ч после получения пробы лабораторией.
Анализ кала включает в себя макроскопическое, микроскопическое, химическое и в некоторых случаях бактериологическое исследования.
Макроскопическое исследование. Определяют количество, консистенцию, форму, цвет, запах кала, наличие примесей.
Количество кала. Количество выделенного кала за одну дефекацию и за сутки зависит от объема и особенностей принятого корма, состояния органов пищеварения.
Количество кала увеличивается при усилении перистальтики кишечника, воспалительных процессах в нем и при иных патологиях, сопровождающихся усилением перистальтики и связанных с уменьшением всасывающей способности стенки кишечника, воспалительной экссудацией в просвет последнего и быстрым прохождением формирующейся каловой массы через кишечник.
Количество кала уменьшается при малом потреблении корма, запорах вследствие большего, чем обычно, всасывания в кишечнике.
Консистенция и форма кала. В зависимости от содержания в кале воды и функции кишечника консистенция и форма кала могут быть различными.
При гипотониях кишечника с замедленной перистальтикой и повышенной всасываемостью кал бывает сухой и мелкий. И, наоборот, при усиленной перистальтике с уменьшением всасывания воды — кал жидкий, без определенной формы. Нужно иметь в виду, что форма кала зависит и от вида животного.
В норме у взрослого крупного рогатого скота кал кашицеобразный и на земле имеет форму «волнистой лепешки».
У овец и коз он гуще, чем у крупного рогатого скота, в форме продолговатых горошин.
У новорожденного молодняка крупного и мелкого рогатого скота меконий — неоформленная кашицеобразная масса и только к 15. 20-му дню жизни кал приобретает консистенцию и форму, характерную для взрослых животных.
У лошадей кал представляет собой по консистенции плотноватые и по форме овально-продолговатые скибалы.
У свиней, собак и кошек в зависимости от типа кормления кал в форме цилиндров и консистенции от кашицеобразно-тестоватой до плотно-тестоватой.
У птиц кал кашицеобразно-тестоватой консистенции, улиткообразной формы.
У водоплавающей птицы кал более жидкий, в зависимости от типа кормления может быть различной формы и консистенции.
Цвет кала. У животных цвет кала зависит от вида корма и наличия различных примесей, а также от присутствия желчных пигментов.
У травоядных животных в пастбищный период кал зеленоватого цвета с различными оттенками. В стойловый период при даче сухих грубых кормов кал приобретает желто-бурый оттенок. Концентрированные (зерновые) корма придают калу сероватый оттенок.
У свиней кал глинисто-желтого цвета, при даче зеленого корма приобретает зеленовато-бурый оттенок.
Цвет кала плотоядных зависит от типа кормления. При мясном типе цвет от темно-коричневого до более темного. Если в рационе преобладают мучные корма, крупы, цвет ближе к серому.
У молодняка в первые дни жизни меконий желто-зеленого цвета из-за наличия в нем билирубина, а в последующем приобретает темно-желтый цвет, который обусловлен стеркобилином. Впоследствии приобретает характерный для взрослых животных цвет.
На цвет кала у животных влияют некоторые лекарственные вещества, принимаемые внутрь. Висмут, активированный уголь придают ему черный цвет, препараты железа — зеленовато-черный, каломель и осарсол — зеленый, ревень и сантонин — желтокоричневый.
При патологиях кал становится сероватого или глинистого цвета, что связано с нарушением поступления в кишечник желчи или плохой выработкой ее в печени.
Прием внутрь антибиотиков, подавляющих кишечную микрофлору, а также усиление и ускорение перистальтики кишечника приводят к тому, что кал принимает золотисто-желтую окраску, обусловленную частичным восстановлением билирубина. При выделениях крови в просвет желудка и двенадцатиперстного отдела тонкой кишки кал приобретает темно-коричневый до черного («дегтярный») цвет. При выделениях крови в просвет толстого кишечника кал становится вишнево-красным. При гнилостных воспалительных процессах в кишечнике кал сероватый (землистый).
Запах кала. У здоровых животных запах кала специфический. С диагностической точки зрения имеют значение те оттенки запаха, которые возникают при различных патологических состояниях желудочно-кишечного тракта.
Преобладание в рационе белкового составляющего придает калу сероводородный запах. При усилении перистальтики кишечника у несформировавшегося кала особенно неприятный запах. При гнилостных процессах отличают гнилостный запах, при усилении бродильных процессов — кислый. Запах кала обусловлен продуктами распада белковых веществ — индола, скатола и жирных кислот. Корма животного происхождения обусловливают более резкий запах кала, нежели растительные корма. Примеси в кале могут быть разными: слизь, гной, кровь, газы, паразиты, шерсть, песок и т. д.
Как примесь слизь в кале постоянна, показательно ее количество. У здоровых животных в кале мало слизи, он только покрыт сверху тонкой слизистой пленкой. При воспалении кишечника, особенно толстого, количество слизи в кале может резко увеличиться.
Неизменившаяся кровь в кале появляется при поражении слизистого и мышечного слоев толстого кишечника и особенно его прямого отдела и анального сфинктера. Кровь в массе кала указывает на поражение более отдаленных от анального сфинктера отделов кишечника, а кровь на поверхности — на поражение дистального отрезка прямого отдела толстой кишки или анального сфинктера. Кровь, поступившая в просвет кишечника из более отдаленных его участков, успевает претерпеть изменения и потерять характерный цвет.
В виде примесей у многих видов животных иногда обнаруживают кусочки целлофана, тряпки, пробки и т. д., которые могут быть следствием извращенного аппетита.
Наличие большого количества газов придает калу пенистый вид. Гной отмечают при язвенных поражениях толстого кишечника или при вскрытии абсцессов в просвет кишечника. Обнаружение кишечных паразитов при осмотре кала имеет большое диагностическое значение.
Микроскопическое исследование. Из кала готовят препараты по специальной методике, выбор которой зависит от целей исследования.
Первый метод’, на предметном стекле растирают комочек кала, добавляют 1. 2 капли воды стеклянной палочкой до получения равномерной эмульсии и покрывают покровным стеклом. После этого препарат исследуют под малым, потом под средним увеличением микроскопа, в некоторых случаях и под иммерсией. С помощью микроскопии дифференцируют большинство элементов кала: клетки крови, эпителий, слизь, кристаллы, простейших, яйца гельминтов, растительную клетчатку, мышечные волокна, нейтральный жир и жирные кислоты, мыла.
Второй метод: комочек кала на предметном стекле растирают с люголевским раствором двойной концентрации. Обнаруживают крахмал и йодофильную микрофлору.
Третий метод’, комочек кала на предметном стекле смешивают с реактивом Саатгофа (10 мл спирта, 90 мл ледяной уксусной кислоты, судан-Ш до получения ярко-красной окраски). Этим методом определяют жир и продукты его расщепления. Для дифференциации элементов жира также можно окрашивать препарат по Гехту (равные объемы 1%-го раствора нейтрального красного и 0,2%-го раствора бриллиантового зеленого, которые смешивают перед употреблением).
Четвертый метод’, препарат готовят из примесей в кале (слизь, пленки ит. д.)
При микроскопии выявляют следующие элементы: прежде всего — остатки корма, количество и характер которых зависят от функционального состояния органов пищеварения и от вида корма. У здоровых животных основным фоном поля зрения микроскопа служит детрит — неподцающиеся распознаванию кормовые частицы, распавшиеся клетки и микроорганизмы. На фоне детрита выделяют остатки корма, слизь, форменные элементы крови, эпителиальные клетки и т. д. При хорошем переваривании корма в кале больше детрита.
Непереваримую клетчатку легко распознать по клеткам с толстыми двухконтурными оболочками и толстым межклеточным перегородкам.
Переваримая клетчатка в кале здоровых животных отсутствует или может быть в виде клеточных структур, единичных клеток либо слабых очертаний клеток. При недостаточности пищеварения в поле зрения микроскопа можно увидеть большое количество переваримой клетчатки.
Крахмал в зависимости от стадии переваривания в результате реакции с раствором Люголя приобретает фиолетовый или красноватый цвет. Его обнаруживают как внутри клеток переваримой клетчатки, так и внеклеточно в виде отдельных зерен или осколков. Крахмал появляется при недостаточности пищеварения и преимущественно при заболеваниях тонкого кишечника и недостаточности секреции поджелудочной железы.
В кале плотоядных и всеядных животных из остатков мясного корма встречаются мышечные и соединительнотканные волокна. У мышечных волокон поперечная исчерченность, и по мере переваривания они теряют структуру. При недостаточности желудочного или панкреатического пищеварения появляется большое количество мышечных волокон с сохранившейся поперечной ис-черченностью и соединительнотканные волокна в виде полупрозрачных волокнистых тяжей без ясных контуров.
Жировые элементы определяют в препаратах кала с реактивом Саатгофа.
Нейтральный жир в препарате под микроскопом обнаруживают в виде оранжево-красных капель разного размера с гладкими краями. После этого препарат нагревают до кипения и, сняв покровное стекло, собирают расплющенные капли на середину, опять накрывают покровным стеклом и исследуют препарат под микроскопом нагретым и после остывания.
В нагретом состоянии в препарате жировые капли красного цвета. Количественную оценку ведут при малом увеличении микроскопа (в теплом препарате) по пятибалльной системе: большое количество жировых капель во всех полях зрения оценивают пятью крестами (+++++). В теплом препарате определяют общее количество жировых элементов.
Отдельные виды жировых элементов определяют в том же препарате после его остывания. Капли, не изменившие свою форму после остывания, относят к нейтральнкм жирам (капли округлой формы, «лужицы» с гладкими краями, оранжево-красного цвета); сморщившиеся, бугристые, остроконечные бесцветные кристаллы — к жирным кислотам и мылам.
Жирные кислоты обнаруживают в форме тонкоигольчатых кристаллов, заостренных с обоих концов, группирующихся часто в пучки по 2, 3, 4. Они могут располагаться радиально, образуя венчик, и окружать капли жира или жирных кислот.
Мыла в поле зрения микроскопа встречаются в виде маленьких вытянутых ромбовидных кристаллов и глыбок желто-коричневого цвета, не окрашивающихся суданом-Ш до нагревания препарата.
При окрашивании препаратов кала реактивом Гехта удается достаточно точно дифференцировать виды жиров: нейтральный жир и жирные кислоты приобретают коричнево-красный, а мыла — зеленый цвет.
В первые десять дней у здоровых телят в теплом препарате кала (с реактивом Саатгофа) жировые элементы представлены единичными жировыми каплями, до 10 в поле зрения, нейтральный жир отсутствует или содержится в малом количестве, жирные кислоты и мыла встречаются в небольших и средних количествах (А. М. Смирнов, И. В. Никишина).
У здоровых поросят до 10-дневного возраста в теплом препарате (с реактивом Саатгофа) жировые элементы обнаруживают по 1. 2. 4 капли не в каждом поле зрения микроскопа, нейтральный жир отсутствует или встречается в небольшом количестве (В. П. Ла-укин).
Жаровых элементов в кале телят и поросят старшего возраста становится меньше. При диспепсии и гастроэнтероколитё, и особенно при их тяжелом течении, количество жировых элементов в кале значительно возрастает и сопровождается повышением содержания нейтрального жира, жирных кислот и мыл.
Слизь, клетки крови, эпителиоциты и другие элементы, отделяемые кишечной стенкой, определяют под микроскопом, при этом лучше они обнаруживаются в слизи. Чтобы выявить клеточные элементы, слизь ополаскивают в изотоническом растворе NaCl и готовят из нее препараты.
Слизь микроскопически представлена в виде гомогенной массы или тяжей, в которых и обнаруживают клетки (эпителиальные, кровяные и др.). Большое количество слизи в кале указывает на наличие воспалительного процесса слизистой кишечника. Характерным признаком воспаления служит большое количество клеток кишечного эпителия в слизи.
Единичное количество лейкоцитов можно обнаружить в кале здоровых животных. При воспалительных процессах кишечника их количество в слизи резко увеличивается. Эритроциты в кале здоровых животных не встречаются. Их выявляют при воспалительных процессах, язвах и кровотечениях в кишечнике. Тканевые клетки или же обрывки ткани могут быть обнаружены в кале при хронической инвагинации кишечника, при дифтеритическом и крупозном воспалении кишечной стенки и др.
При усилении гнилостных процессов в кишечнике в кале встречаются кристаллы трипельфосфатов, напоминающие по форме «крышки гроба». При пониженной кислотности желудочного сока выявляют оксалат кальция: кристаллы по форме похожи на почтовые конверты.
В виде ромбовидных и игольчатых кристаллов или зерен оранжевого цвета кристаллы билирубина обнаруживают у взрослых животных при быстром прохождении химуса и фекалий по кишечнику. В норме билирубин присутствует в меконии молодняка в первые годы жизни. Кристаллы гематоидина ромбовидной или игольчатой формы красновато-коричневого цвета находят в кале после кровотечений.
Химическое исследование. Устанавливают реакцию кала (pH), наличие в нем «скрытой» крови, желчных пигментов, белковую экссудацию, активность энтерокиназы и щелочной фосфатазы.
Определение реакции кала. Используют рН-метр, универсальную индикаторную и лакмусовую бумагу (красную и синюю). Полоски лакмусовой бумаги предварительно смачивают дистиллированной водой нейтральной реакции и прикладывают к калу: бумажка краснеет при кислой реакции, синеет при щелочной, при нейтральной реакции кала обе бумажки не меняют цвет.
При использовании универсальной индикаторной бумаги реакцию определяют по цветной шкале, которая снабжена цифровыми обозначениями pH.
Чтобы определить реакцию pH-метром, кал предварительно разводят дистиллированной водой нейтральной реакции (в соотношении 1 : 10).
Реакция кала обусловлена жизнедеятельностью кишечной микрофлоры. У травоядных животных в норме нейтральная или слабокислая реакция кала, а у плотоядных — нейтральная или слабощелочная. Изменение реакции кала связано с изменением соотношения между бродильными и гнилостными процессами в кишечнике. Если преобладают бродильные процессы (активизация бродильной, или йодофильной, микрофлоры, которая выделяет диоксид углерода и органические кислоты), реакция кала кислая. Активизация гнилостной микрофлоры придает калу щелочную реакцию за счет повышенного образования аммиака.
Чтобы более точно определить соотношение бродильных и гнилостных процессов в кишечнике, можно исследовать кал по методике Гуаффона и Ру, с помощью которой определяют органические кислоты и аммиак (методика исследования описана в руководствах по клиническим лабораторным исследованиям).
При усилении бродильных процессов в кишечнике содержание органических кислот в кале увеличивается, а при усилении гнилостных процессов — уменьшается. При усиленном гниении белка в кишечнике возрастает содержание аммиака в кале.
Определение крови и билирубина. Этот тест особенно важен в тех случаях, когда подозревают наличие крови в кале, но ее не удается выявить при макроскопическом и микроскопическом исследованиях (скрытая кровь). Применяют следующие пробы.
Бензидиновая проба: к толстому слою кала на предметном стекле добавляют 2. 3 капли свежего раствора бензидина в уксусной кислоте (на кончике ножа берут бензидин и растворяют в 5 мл ледяной уксусной кислоты) и столько же 3%-го раствора пероксида водорода, перемешивают стеклянной палочкой. При наличии крови в кале в течение первых 2 мин появляется сине-зеленое окрашивание. Окрашивание учитывается только за первые 2 мин. С помощью данной пробы выявляют содержание 0,2 % крови в кале.
Проба на стеркобилин с ацетатом цинка (по Шлезингеру)-, кусочек кала помещают в дистиллированную воду в пропорции 1 : 10 и добавляют равное количество реактива Шлезингера (Юг ацетата цинка, растворенного в 90 мл 96%-го этилового спирта) и несколько капель раствора Люголя. Полученную смесь фильтруют и фильтрат просматривают на черном фоне, отмечая зеленую флюоресценцию.
Проба на билирубин (по Фуше)\ кусочек кала помещают в дистиллированную воду в соотношении 1 : 20 и добавляют по каплям реактив Фуше (в 100 мл дистиллированной воды растворяют 25 г трихлоруксусной кислоты и добавляют 10 мл 10%-го раствора хлорного или полуторахлорного железа) в равном к полученной эмульсии количестве. Пробу считают положительной, если после добавления реактива Фуше смесь приобретает зеленое или синее окрашивание.
В норме билирубин в кале молодняка выявляют только в первые дни жизни, у животных более старшего возраста его не обнаруживают. Билирубин появляется в кале при энтерите и дисбактериозе (после применения антибиотиков).
Определение белковой экссудации. Зг кала растирают в 100 мл дистиллированной воды в ступке. Полученную суспензию по 15 мл разливают в 3 пробирки. В первую пробирку добавляют 2 мл раствора сулемы (7 г сулемы растворяют в 100 мл дистиллированной воды при нагревании, соблюдая правила техники безопасности, так как сулема ядовита) или 20%-го раствора три-хлоруксусной кислоты, во вторую пробирку вносят 2 мл 20%-го раствора уксусной кислоты, в третью, контрольную, добавляют 2 мл дистиллированной воды. Пробирки встряхивают и оставляют при комнатной температуре на 24 ч. По истечении этого времени учитывают степень просветления жидкости над осадком в пробирках: полное просветление (+++++) — реакция резко положительная; значительное просветление (+++) — реакция положительная; незначительное просветление (+) — реакция слабоположительная, если не произошло просветление и жидкость над осадком такая же мутная, как над контролем, — реакция отрицательная.
На воспалительный процесс слизистой оболочки кишечника указывает просветление в первой пробирке, обусловленное наличием сывороточного белка (растворимого белка).
В пробирке с раствором сулемы можно определить и наличие стеркобилина и билирубина. При положительной реакции на стеркобилин появится розовое окрашивание, о наличии билирубина свидетельствует зеленое окрашивание. В пробирке с трихлорук-сусной кислотой при наличии билирубина развивается такое же зеленое окрашивание. Содержание стеркобилина и билирубина в кале можно оценивать в баллах. Когда единичные частицы кала окрашены в зеленый (розовый) цвет, ставят минимальный балл (+), когда весь кал зеленого (кирпично-красного) цвета — максимальный (+++++). Отсутствие окрашивания обозначают знаком минус (—).
Определение активности энтерокиназы и щелочной фосфатазы (по Шлыгину, Фоминой и Михлину). По данным И. В. Никишиной, при диспепсии и гастроэнтероколите у телят активность энтерокиназы и щелочной фосфатазы в кале увеличивается в период выраженной болезни, что важно учитывать для диагностики данных болезней.
Бактериологическое исследование. Бактериологический метод (исследование мазков кала, окрашенных по Граму) имеет относительное значение, так как с его помощью можно определить лишь процентное соотношение грамположительной, грамотрицатель-ной, йодофильной и кислотоустойчивой микрофлоры.
У здоровых телят и поросят раннего возраста грамположительной микрофлоры — 60, 70, 90 %, грамотрицательной — 40, 30, 10 %. При диспепсии количество грамотрицательной микрофлоры резко повышается: при простой до 50. 80 %, при токсической до 80. 90 %, а количество грамположительной соответственно уменьшается.
В мазках кала, окрашенных раствором Люголя, йодофильная микрофлора приобретает синий, фиолетовый или черный цвет, дрожжевые грибы — желтый или желто-коричневый. При усилении бродильных процессов в кишечнике и недостаточном усвоении углеводов обнаруживают большое количество йодофильной микрофлоры. При кандидомикозе и дисбактериозе — много дрожжевых клеток.
Синдромы, характерные для патологий пищеварительной системы. При язвенной болезни желудка отмечают: понижение аппетита, бледность слизистых оболочек, отрыжку и рвоту (особенно у собак и свиней), появляющиеся вскоре после приема корма, болезненность при пальпации области желудка, понос или запор, скрытую кровь в кале. У крупного и мелкого рогатого скота язва сычуга сопровождается гипотонией и атонией преджелудков, болезненностью сычуга при пальпации.
Для энтеритов характерны изменения в формировании кала: при поражении тонкого кишечника кал в виде мелких плотных скибал, у крупного рогатого скота — колец, покрытых тонкой слизистой пленкой. Перистальтика кишечника усиленная и громкая, у лошадей могут появляться колики; при поражении толстого кишечника отмечают понос. Дефекация частая, животное тужится, кал со слизью. При длительном течении болезни отмечают уменьшение аппетита, признаки обезвоживания, анемичность слизистых оболочек, понижение упитанности.
источник
Фекалии состоят из непереваренных остатков корма, пищеварительных соков, эпителия, минеральных веществ и микробов.
Макроскопические исследования.Определяют разовое и суточное количество кала, свойства и наличие посторонних примесей в нем.
Количество выделенного кала колеблется в больших пределах и зависит от объема и качества съеденного корма. При обычном кормовом режиме у крупного рогатого скота в течение суток выделяется 15—35кг кала, у лошадей— 15—20, у овец, коз и свиней — 1—3 кг и у собак 200—500 г. При патологических состояниях количество выделенного кала зависит также от функционального состояния пищеварительной системы. Оно увеличивается при быстром прохождении кормовой массы через кишечник из-за ускорения перистальтики, что препятствует достаточному перевариванию и всасыванию, при пониженной всасывающей способности кишечной стенки; при экссудации в кишечник. В случаях длительного запора и копростаза выделение кала может быть незначительным вследствие более усиленного, чем в норме, процесса всасывания в кишечнике. Поэтому для правильного суждения о количестве вьщеленных плотных веществ иногда учитывают массу сухого остатка кала.
Консистенция и форма кала зависят от вида и возраста животных, рациона, содержания воды, клетчатки, а у больных животных от примеси продуктов воспаления, газов.
У крупного рогатого скота, если в рационе количество грубых кормов оптимально, кал содержит около 85 % воды, при дефекации принимает вид «волнистой лепешки». У новорожденных телят меконий представляет собой неоформленную, густую, вязкую массу, а у телят в возрасте 2—15 дней кал не оформленный, гомогенный, мазевидной или кашицеобразной консистенции. Кал мелкого рогатого скота содержит около 55 % воды, продолговато-овальной формы; у новорожденного молодняка меконий имеет вид густой массы, а в последующие дни кал приобретает мазевид-ную или кашицеобразную консистенцию и к 15—20-му дню жизни — форму, свойственную калу взрослых животных. У лошадей кал содержит около 75 % воды и представляет собой плотноватые продолговато-овальные скибалы. У свиней и собак он цилиндрической формы.
При болезнях органов пищеварения кал может быть плотным, жидким, водянистым, при брожении в кишечнике — пенистым.
Цвет кала зависит от содержания стеркобилина в нем и вида корма. У травоядных в случае пастбищного содержания кал зеленоватого цвета, при кормлении грубыми кормами — желтовато-бурый. Зерновые корма, особенно кукуруза, придают калу сероватый оттенок. У свиней фекалии глинисто-желтого цвета, после дачи зеленого корма — буровато-зеленые. У плотоядных при мясном кормлении — темно-коричневые. Желтовато-зеленый цвет мекония у молодняка первых дней жизни обусловлен наличием билирубина, в последующие дни фекалии приобретают темно-желтый цвет, а затем цвет их определяется характером корма. Висмут, уголь придают калу черный цвет, препараты железа — зеленовато-черный, каломель и осарсол — зеленый, ревень и сантонин —желто-коричневый.
При патологии кал приобретает глинистый цвет вследствие угнетения секреторной функции печени, особенно при обтурации желчных путей. Ахоличный кал характерен для молодняка раннего возраста. При ускоренной перистальтике, приеме внутрь антибиотиков и других средств, подавляющих кишечную микрофлору, билирубин восстанавливается лишь частично, в результате кал приобретает золотисто-желтую окраску, которая хорошо заметна у молодняка раннего возраста.
Кровотечения в заднем отделе кишечника придают каловым массам вишнево-красный цвет; кровотечения в переднем отделе — темно-коричневый, а кровотечения в желудке и двенадцатиперстной кишке — почти черный (дегтярный) цвет. Небольшие кровотечения могут быть обнаружены химически. При тяжелых воспалениях кишечника в кале землистого цвета можно обнаружить желтоватые комочки или сероватые прожилки. Гной с калом выделяется при язвенных поражениях толстой кишки, вскрытии абсцессов. Макроскопически видимая кровь встречается в кале в виде сгустков различной величины или смешанной со слизью или гноем. Кишечные паразиты, обнаруженные макроскопически, имеют непосредственное диагностическое значение.
Запах кала у травоядных своеобразный кисловатый; у свиней и плотоядных при кормлении мясом — зловонный. У новорожденных меконий запаха не имеет; в молозивный период запах слабокислый, в последующие дни становится слегка кислым или гнилостным, особенно у поросят, щенят и котят. При превалировании в кишечнике гнилостных процессов (гнилостная диспепсия, щелочной катар, распад опухоли) кал приобретает гнилостный запах вследствие содержания в нем сероводорода и метилмеркаптана. В случаях преобладания бродильных процессов (бродильная диспепсия, «кислый» катар кишечника) кал имеет кислый запах, что обусловлено присутствием летучих жирных кислот — масляной, уксусной, валериановой. При запорах кал обладает относительно слабым запахом, так как при длительном пребывании его в кишечнике часть ароматических вещество всасывается.
Остатки непереваренного корма можно найти в кале любого здорового животного (шелуха зерен, неперевари-мая клетчатка). Патологическим признаком служит присутствие в кале значительного количества остатков корма, который в норме переваривается, например овса, переваримой клетчатки в большом количестве у травоядных или жир, пленки соединительной ткани у плотоядных.
Примеси в кале могут иметь различное происхождение (песок, конкременты, безоары).
У животных всех видов при заболеваниях в кале находят слизь, кровь, гной, пузырьки газов, кишечных паразитов. Слизь присутствует и в нормальном кале, но в небольшом количестве в виде блестящего налета. При воспалительных процессах, илеусах ее выделяется много, иногда в виде тяжей и комков. Примесь пузырьков газов придает калу пенистый вид. Гной, когда его много, можно увидеть в кале невооруженным глазом.
Микроскопические исследованияпроводят для оценки переваривающей способности желудочно-кишечного тракта, выявления элементов патологического отделяемого кишечной стенки, а также при бактериологическом и гельминтологическом исследованиях.
При изучении переваривающей способности желудочно-кишечного тракта большое значение имеет определение кормовых остатков в кале, количество и характер которых зависят от корма и функционального состояния органов пищеварения. В нормальном кале больше всего детрита, не поддающихся распознаванию кормовых составляющих распавшихся клеток и микробов. При микроскопии кала основной фон составляет детрит, на котором распределяются разнообразные включения (остатки корма, слизь, клетки эпителия, крови). Чем полнее переваривание, тем больше детрита в кале.
В кале можно выявить клетчатку и крахмал. Различают два вида клетчатки — переваримую и непереваримую. Первая содержится в растительном корме, состоит из клеток нежного строения с тонкой оболочкой, а после переваривания крахмала от таких клеток остаются только слабые очертания (табл. III, А). В кале здоровых животных переваримая клетчатка отсутствует или содержится в виде единичных клеточных групп. Наличие большого количества переваримой клетчатки свидетельствует о недостатке пищеварения. Непереваримая клетчатка под микроскопом распознается по резким очертаниям, толстым двухконтурным оболочкам и межклеточным перегородкам клеток (табл. III, Б).
Анализ кала на присутствие крахмала (табл. IV, А) проводят в препарате, обработанном люголевским раствором. Он может находиться внутри и вне клеток клетчатки. Под влиянием йода крахмальные зерна окрашиваются по-разному: неизмененный крахмал приобретает сине-черный цвет, амилодекстрин — фиолетовый, эритродекстрин — красно-бурый. В дальнейших стадиях расщепления, начиная с ахродекстрина, крахмал не окрашивается. При нормальном пищеварении он в кале отсутствует; его наличие указывает на плохое пищеварение.
У плотоядных и всеядных обнаруживают остатки мясного корма: мышечные волокна и соединительную ткань (табл. IV, Б и V, А). Мышечные волокна с поперечной исчерченностью по мере переваривания теряют эту структуру. Большое количество в кале мышечных волокон, как и наличие соединительной ткани в виде полупрозрачных волокнистых тяжей с нечеткими контурами свидетельствует о недостаточности желудочного или панкреатического переваривания.
Нейтральный жир и продукты его расщепления находят как в нативных препаратах, так и в обработанных реактивами Саатгофа или Гехта. При нормальном пищеварении нейтральный жир (табл. V, Б) усваивается почти полностью, неусвоенные остатки выделяются преимущественно в виде мыл (табл. VI, А). Содержание в кале большого количества нейтрального жира (стеаторея) возможно при недостатке липазы (заболевания поджелудочной железы), малом поступлении желчи в кишечник, которая активирует липазу и переводит жир в состояние тонкой эмульсии. Большое содержание кристаллов жирных кислот в кале бывает при недостатке желчи, когда жиры расщепляются, но их всасывание уменьшается. Выявление большого количества кристаллов жирных кислот и их мыл указывает на то, что процесс эмульги-рштния и переваривания жиров не нарушен, но всасывание их уменьшено.
Общую количественную оценку содержания жиров в кале проводят с реактивом Саатгофа в подогретом препарате, а отдельные виды жировых элементов определяют после остывания препарата. Капли жира, которые в остывшем препарате не изменяют форму, относят к нейтральным жирам. Они округлой формы, с гладкими очертаниями, оранжево-красного цвета. А капли, которые после охлаждения сморщиваются, а также бесцветные кристаллы в виде игл, заостренных с обоих концов, представляют собой жирные ислоты (табл. VI, Б и VII, А). Мыла образуют мелкие ромбические кристаллы и желто-коричневые глыбки, не окрашивающиеся уданом до нагревания препарата. У 2—10-дневных здоровых телят и поросят жировые элементы в подогретом (с реактивом Са-тгофа) препарате представлены единичными не в каждом поле рения микроскопа каплями. В остывшем препарате нейтральней жир отсутствует или содержится в небольшом количестве. Мирные кислоты и мыла также присутствуют в небольшом количестве. У более старших телят и поросят жировых элементов леныие. При диспепсии и гастроэнтероколите у этих животных соцержание жировых элементов в кале возрастает, появляется нейтральный жир, увеличивается содержание жирных кислот и мыл.
К элементам, отделяемым кишечной стенкой, относятся слизь, нейкоциты, эритроциты, клетки эпителия. Слизь микроскопически и представлена гомогенной прозрачной массой или тяжами с икпюченными в нее различными элементами (лейкоцитами, эпителием). Большое количество слизи в кале — признак энтерита. В юрме в кале встречаются единичные клетки эпителия. Если их люто, это служит признаком воспаления слизистой оболочки, большие скопления лейкоцитов также свидетельствуют о воспалительном процессе. Эритроцитов в кале не должно быть, их обнаруживают лишь при язвах, кровотечениях, воспалениях. Клетки ткаей выявляют при дифтеритическом и крупозном воспалении кишечника.
Химические исследования.Устанавливают рН, наличие «скрытой » крови, желчных пигментов, белковую экссудацию, а также сгивность ферментов в кале.
Определение рН проводят с помощью индикаторной бумаги, рН-метра. Реакция кала здоровых травоядных нейтральная или шбокислая, плотоядных — нейтральная или слабощелочная. Она обусловлена жизнедеятельностью кишечной флоры. При недостаточном усвоении углеводов активируется бродильная флора, проектами жизнедеятельности которой являются двуоксид углерода органические кислоты. Реакция кала становится кислой. При плохом усвоении белков, воспалительных изменениях с экссудацией белка повышается активность гнилостной микрофлоры. Вследствие образования аммиака при этом кал становится щелочным.
Более точные сведения о соотношении бродильных и гнилостных процессов в кишечнике получают определением в кале органических кислот и аммиака по Гуаффону и Ру. В норме содержание органических кислот у лошадей составляет 12 мл; у телят однодневного возраста — 2,7 (1,2—6,4), в возрасте 2—15 дней — 7,8 (2,4-22), 15-30 дней-8,1 (2,0-15,6), старше 30 дней-9,9 (4,0—19,0); у собак — 7,9—18,8 мл. Содержание аммиака у лошади—2—Змл, у телят однодневного возраста —2,4 (1,0—3,6), в возрасте 2—15 дней —6,4 (1,6—12,0), 15—30 дней —5,6 (2,8— 10,8), старше 30 дней —2,3 (0,6—6,0); у собак —3,2—8,0мл. Увеличение содержания органических кислот свидетельствует об усилении брожения, аммиака — гнилостного распада.
Поступление желчи в кишечник можно установить реакцией на стеркобилин и другие желчные пигменты. Проба на билирубин может быть положительной у здорового молодняка в первые дни жизни; у молодняка старшего возраста и у взрослых животных билирубин появляется при энтерите, дисбактериозе (после лечения антибиотиками).
Кровь в кале обнаруживают при тромбоэмболических коликах, травматическом ретикулите, кокцидиозе. Скрытые примеси определяют бензидиновой пробой.
Реакцию на белковую экссудацию проводят по методу Трибуле—Вишнякова. Появление в кале растворимого белка свидетельствует об усиленном выделении его кишечной стенкой при воспалениях.
Для установления функционального состояния кишечника при диспепсии и гастроэнтероколите у телят определяют активность энтерокиназы и щелочной фосфатазы в кале. В продромальный период, особенно во время выраженной болезни, активность ферментов увеличивается.
Бактериологические исследования.Они имеют относительное значение, так как большинство микробов не поддается дифференциации. С помощью дифференциальной окраски можно только отличить грамположительную, грамотрицательную, йодофильную, кислотоустойчивую флору.
В окрашенных по Граму мазках у здоровых телят и поросят грамположительная микрофлора составляет 60—90 %, грамотрицательная — соответственно 40—10%. При простой диспепсии количество грамотрицательной микрофлоры увеличивается до 50—80 %, при токсической до 80—90 %, а грамположительной уменьшается.
В окрашенных раствором Люголя мазках йодофильная микрофлора окрашена в синий, фиолетовый или черный цвет, дрожжевые грибы — в желтый или желто-коричневый. Большое количество йодофильной флоры в кале обнаруживают при недостаточном усвоении углеводов и усилении брожения. Значительное количество дрожжевых клеток находят при кандидомикозе и дисбактериозе.
Большое значение имеет определение чувствительности микрофлоры кала к антибиотикам и другим антибактериальным средствам («подтитровка» антибиотиков с целью выбора наиболее эффективных противомикробных средств).
источник
Методические указания./Составила доцент кафедры внутренних незаразных болезней, канд. вет. наук В.МУсевич — Екатеринбург, Уральская ГСХА, 2007, 32
Утверждено методической комиссией факультета ветеринарной медицины
Издание второе исправленное и дополненное
В методических указаниях показано значение исследований фекалий для диагностики различных заболеваний животных. Подробно описана методика исследования и показатели кала. В сводных таблицах даны нормативные показатели лабораторных исследований и приведено клиническое значение изменений всех показателей кала.
Методические указания предназначены для студентов факультета ветеринарной медицины, а также могут быть полезны молодым специалистам ветеринарных и научно-исследовательских лабораторий.
ЛР № 020769 © Уральская государственная
сельскохозяйственная академия, 2007
При проведении диспансеризации и клинических исследовании животных большое диагностическое значение приобретают лабораторные методы исследования. К ним относится и исследование фекалии, которое позволяет в комплексе с гематологическими, исследованиями мочи и другими общими, специальными и дополнительными исследованиями диагностировать болезни органов пищеварительной системы, выявить нарушения обмена веществ в организме, ферментативную недостаточность, нарушения моторной, секреторной, всасывательной и других функций органов пищеварения, печени и поджелудочной железы, определить возникшие осложнения, дифференцировать сходные заболевания, судить о тяжести болезни, о функциональном состоянии органов, следить за эффективностью лечения, прогнозировать заболевание Особенно большое значение исследование фекалий имеет для диагностики заболеваний печени, поджелудочной железы и функционального состояния различных отделов пищеварительной трубки. А также проведение гельминтокопроскопии имеет первостепенное значение в постановке диагноза при инвазионных болезнях человека и животных
Кал (kopros, faeces) — конечный продукт пищеварения, состоящий из остатков непереваренного корма, воды, служенного эпителия, минеральных веществ, ферментов, микроорганизмов. Анализ его — важнейшая составная часть общего обследования пациента. По данным исследования представляется возможным сделать существенные выводы о моторной, секреторной и всасывательной функциях желудочно-кишечного тракта. Эти данные небезразличны также при постановке диагноза на некоторые другие болезни (паратиф, туберкулез, дизентерия, сальмонелле, паратуберкулез, чума, кокцидиоз и др), выработке прогноза и обосновании терапии.
Следует помнить, • что функциональные расстройства пищеварительной системы наблюдаются при всех вообще тяжелых заболеваниях. Нарушая питание, ослабляя самозащиту и борьбе с обусловившей заболевание причиной, они, вместе с тем. вызывают общий упадок сил больного, что очень неблагоприятно отражается на течении основной болезни. Кроме того, заболевания пищеварительного аппарата очень часто развиваются в качестве осложнений при поражении других органов, например, сердца, печени, почек.
Кроме того, успех оздоровительной работы в хозяйствах зависит от своевременного распознавания инвазировнных животных осуществления лечебно-профилактических мероприятий в комплексе с исследованиями и дезинвазией объектов окружающей среды. Этим определяется и необходимость знания и применения специальных методов копроскопии.
Диагностические обследования животных с этой целью проводят в порядке плановых мероприятий в рациональные сроки, чтобы решить вопрос о благополучии стада, фермы, комплекса, а также с целью контроля и проведения оздоровительной работы.
Чтобы определить патологические изменения, необходимо
составить себе ясно представление о свойствах кала здоровых
животных. Анализ кала включает, макроскопическое,
микроскопическое, химическое, а при подозрении на инфекционные кишечные заболевания также бактериологическое, а на инвазионные -гельминтокопроскопические исследования.
ИССЛЕДОВАНИЯ ФЕКАЛИЙ И ИХ КЛИНИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ
Получение и хранениефекалии. Для исследования их собирают тотчас же после дефекации Они должны быть без примеси мочи, влагалищных выделений и т. д. Отобранные пробы помещают в стеклянные банки с притертой пробкой или полиэтиленовые мешочки. При отборе проб учитывают количество выделившихся за всю дефекацию фекалий и описывают их внешний вид. При необходимости ‘ их извлекают из прямой кишки. Для бактериологического исследования рекомендуют брать фекалии стерильным резиновым катетером (диаметр 0,4—0,5 см) из прямой кишки. Исследуют фекалии свежими, если это не удается, то их хранят на холоде (2 — 4 С) и не
дольше 12 ч. Летом из полученной пробы фекалий берут материал для бактериологического исследования в течение часа.
С диагностическими целями фекалии подвергают макроскопическому, микроскопическому, химическому и бактериологическому исследованию.
Физические свойства
Макроскопическое исследование. Определяют количество выделенных фекалий за одну дефекацию и за сутки, консистенцию и форму, цвет, запах, наличие в них примеси.
Количество фекалий. Выделяемое за одну дефекацию и за сутки количество их зависит от состава и объема принятого корма и состояния пищеварительный системы. Количество фекалий увеличивается при понижении всасывающей способности кишечной стенки и при воспалительной экссудации в просвет кишечника. При длительных запорах объем фекалий может быть незначительным вследствие большего, чем в норме, всасывания в кишечнике.
Консистенция и форма. У взрослого крупного рогатого скота фекалии кашицеобразной консистенции, при падении на землю принимают вид «волнистой лепешки». У новорожденных телят меконий представляет неоформленную, густую, клейкую и вязкую массу, а в возрасте 2-15 дн. он неоформленной, гомогенный, мазевидной или кашицеобразной консинстенции. У мелкого рогатого скота фекалии имеют продолговато-овальную форму, у новорожденного молодняка они в первые дни в виде однородной густой массы, а в последующие дни имеют мазевидную или кашицеобразную консистенцию. К 15 -20-му дню фекалии новорожденных приобретают внешние свойства, присущие для данного вида животных. У лошадей они представляют собой плотноватые, обычно продолговато-овальные скибалы. У свиней и собак чаще имеют цилиндрическую форму.
У больных животных фекалии могут быть плотными, порой твердыми или кашицеобразными, полужидкими, жидкими, даже водянистыми, а при усиленном процессе брожения в кишечнике приобретают пенистую консистенцию.
Цвет фекалий. У здоровых животных цвет их зависит от желчных пигментов и от свойств корма. У травоядных животных при пастбищном содержании фекалии зеленоватого цвета с различными оттенками, при кормлении грубыми кормами — желто-бурого; зерновые корма, особенно кукуруза, придают им сероватый оттенок. У свиней фекалии глинисто-желтого цвета, после дачи зеленого корма — буровато-зеленого. У плотоядных после кормления мясом они приобретают темно-коричневый цвет. У молодняка в первые дни жизни желто-зеленый цвет мекония бывает от наличия в нем билирубина, в последующие дни темно-желтый цвет его зависит от стеркобилина, а затем цвет зависит от состава кормов.
При патологии фекалии приобретают сероватый или глинистый цвет вследствие угнетения секреторной функции печени, особенно при обтурации желчных путей, ахоличные фекалии хорошо определяют у молодняка раннего возраста. При ускоренной перистальтике кишечника, при приеме внутрь антибиотиков и других средств, подавляющих жизнедеятельность кишечной микрофлоры, восстановление билирубина может осуществляться лишь частично, в таких случаях фекалии имеют золотисто-желтую окраску, которую особенно хорошо определяют у молодняка раннего возраста. При кровотечениях в отделе толстых кишок несвернувшаяся кровь придает фекалиям вишнево-красный цвет; при кровотечениях в тонких кишках — темно-коричневый. Небольшие кровотечения могут быть обнаружены только химическим исследованием. При гнилостных воспалительных процессах в кишечнике фекалии приобретают землистую окраску.
Запах фекалий. У травоядных животных он своеобразно кисловатый; у свиней и особенно собак, пушных зверей и кошек при кормлении их мясом — зловонный.
При превалировании в кишечнике гнилостных процессов (гнилостная диспепсия, «щелочной» катар кишечника, распад опухоли) запах становится гнилостным, а при преобладании бродильных процессов (бродильная диспепсия, «кислый» катар кишечника) — кислым.
Остатки непереваренного корма можно найти в фекалиях любого животного, патологическим является нахождение значительного количества остатков такого корма, который в норме почти полностью переваривается, например, зерна овса, кукурузы.
Примеси. В качестве примесей о фекалиях иногда удается обнаружить песок, конкременты, безоары, металлические предметы, кровь, гной, пузырьки газов, кишечных паразитов и др.
Постоянной примесью фекалий является слизь. В норме она имеется в небольшом количестве, в виде малозаметного блестящего налета. При воспалительных процессах, илеусах слизь выделяется обильно, иногда о виде тяжей и комков. Количество слизи можно учитывать о пятибалльных плюсовых единицах (см. табл. 1,2).
источник