Бактериологическое исследование посева мокроты

Мокрота – патологические выделения из дыхательных путей, появляющиеся после кашля. Отхаркивание свидетельствует о нарушении функции внутренней оболочки респираторного тракта. Анализ мокроты – исследование, широко применяемое для диагностики заболеваний легких и бронхов. Процедура позволяет дифференцировать патологии, протекающие на фоне кашля и другой типичной клинической симптоматики. Получить мокроту для анализа можно самостоятельно во время кашля или при использовании медицинской манипуляции (бронхоскопии).

Основная цель проведения описываемого исследования – уточнение диагноза. При обычных обстоятельствах мокрота не выделяется. Бокаловидные клетки реснитчатого эпителия секретируют от 10 до 100 мл жидкости, которая проглатывается человеком.

Прогрессирование патологического процесса в бронхах или легких ведет к изменению активности работы соответствующих структур с нарастанием кашля, одышки, боли в груди. Увеличивается количество жидкой фракции слизи, может присоединяться бактериальная микрофлора. Результат – выделение мокроты с кашлем.

Исходя из предполагаемого диагноза и результатов визуальной оценки секрета бронхиальных желез, врач назначает соответствующий тип исследования. Применение разных вариантов анализа мокроты позволяет оценить физико-химические свойства жидкости, цитологические изменения (присутствие раковых клеток), наличие бактериальной инвазии.

Исследование мокроты может проводиться как невооруженным глазом, так и с помощью специализируемого оборудования.

В зависимости от заболевания, которое подозревает врач, могут использоваться следующие типы диагностики:

• Общий анализ мокроты. Врач оценивает физические характеристики слизи, которая появляется после кашля;
• Цитологическое (микроскопическое) исследование. Для проведения соответствующей диагностики доктору требуется микроскоп. С помощью увеличения изображения осуществляется анализ жидкости. Методика позволяет увидеть наличие патологических клеток, которые появляются при определенных заболеваниях;
• Химическое исследование. Оцениваются изменения, происходящие в метаболизме альвеолоцитов и реснитчатого эпителия бронхов;
• Бактериологический метод или бакпосев мокроты. Суть исследования базируется на высевании бактерий, полученных из содержимого дыхательных путей на питательной среде. Рост колоний подтверждает наличие возбудителя в респираторном тракте. Важным преимуществом посева остается возможность проверки чувствительности бактерий к конкретным противомикробным препаратам в лабораторных условиях.

В тяжелых случаях для своевременной диагностики патологии респираторной системы пациента одновременно назначаются все три варианта исследования. На основе полученных результатов проводится подбор соответствующей терапии.

Факт! Общий или макроскопический анализ позволяет оценить мокроту сразу же после ее получения. Указанный вариант исследования используется врачами сотни лет. Еще до изобретения микроскопа и современных анализаторов врачи ставили диагнозы по внешнему виду отхаркиваемой жидкости.

Ниже будут описаны ключевые аспекты, на которые врач обращает внимание во время диагностики.

Суточное количество выделяемой слизи колеблется от 50-100 мл до 1,5 л в зависимости от базовой патологии, которая нарушает нормальный процесс секреции бокаловидных клеток. Респираторные заболевания по типу бронхита или пневмонии сопровождаются выделением до 200 мл жидкости (суточное количество).

Резкое возрастание указанного показателя происходит при скоплении гноя или крови с дальнейшим выходом через природные пути. Бронхоэктатическая болезнь, дренированный абсцесс, гангрена легкого протекают с выделением до 1,5 л жидкости.

В зависимости от характера жидкости, которая отхаркивается во время кашля, пульмонологи выделяют следующие типы мокроты:

• Слизистая. Благоприятный вариант развития событий. Болезни, при которых встречается – бронхиальная астма, хронический бронхит, трахеит;
• Слизисто-гнойная. Дополнительно присоединяется бактериальная инфекция. Кроме кашля и слизи, выделяется жидкость, которая является собой продукты жизнедеятельности микроорганизмов и «переваренные» иммунными клетками бактерии. Болезни – абсцесс легкого, бактериальные пневмонии, гангрена;
• Гнойная. Причины возникновения те же, что и в предыдущем случае. Отличие – больший процент гноя и продуктов распада тканей. Состояние пациента ухудшается;
• Кровянистая. При попадании отдельных эритроцитов или порций крови в жидкость, отхаркиваемой во время кашля, она приобретает характерный цвет. Симптом свидетельствует о повреждении сосудов. Возможные причины – рак, травма, инфаркт легкого, актиномикоз.

Оценка характера жидких выделений при кашле способствует пониманию патологического процесса, который развивается в дыхательной системе пациента и подбору адекватного лечения.

Цветовая палитра мокроты, выделяемой во время кашля, зависит от ее характера.

Возможные комбинации:

1. Слизистая – сероватая или прозрачная;
2. Слизисто-гнойная – серая с желтыми или гнойными вкраплениями;
3. Гнойная – жидкость может быть темно-желтой, зеленой или коричневой;
4. Кровянистая – различные оттенки красного. Важно помнить, что «ржавый» цвет указывает на наличие видоизмененных эритроцитов. При повреждении сосуда кровь алая или розовая (в зависимости от интенсивности кровопотери).

Мокрота в 75% случаев не имеет характерного запаха. Исключением остается выделение гнойного содержимого. Отмершие частички тканей обуславливают гнилостный запах. При прорыве кисты легкого, в которой развивался эхинококк (гельминт) возникает фруктовый аромат.

Слизь, выделяемая при кашле преимущественно гомогенна.

Разделение мокроты на слои характерно для следующих патологий:

• Абсцесс легкого. В указанном случае формируется 2 слоя – серозный и гнилостный;
• Гангрена легкого. В данном случае дополнительно образуется третий (верхний) пенистый слой, который обусловлен жизнедеятельностью соответствующих микроорганизмов, продуцирующих пузырьки газа.

Визуальная оценка слизи позволяет быстро установить диагноз без проведения вспомогательных анализов.

Примеси в мокроте представлены эритроцитами, гноем или серозной жидкостью. Присутствие описанных включений позволяет врачу оценить степень поражения легочной ткани и понять, какой патологический процесс является первичным для конкретного клинического случая.

Химический анализ жидкости, выделяемой во время кашля, позволяет определить выраженность патологического процесса. В зависимости от результатов исследования врач подбирает соответствующие лекарства, направленные на стабилизацию функции реснитчатого эпителия.

В норме рН мокроты составляет от 7 до 11. Прогрессирование процессов распада легочной ткани ведет к окислению соответствующей реакции (показатель ниже 6). Причина изменения значения рН базируется на нарушениях процессов обмена солей и минералов.

Белок всегда присутствует в выделяемой при кашле жидкости. Норма – до 0,3%. Незначительное повышение соответствующей цифры до 1-2% может указывать на прогрессирование туберкулеза. Существенное возрастание показателя (10-20%) – признак развития крупозной пневмонии. Лабораторное исследование слизи с определением белка позволяет дифференцировать указанные патологии на фоне анализа клинической картины (кашель, одышка, боль в груди) и результатов других диагностических процедур.

Желчные пигменты

Желчные пигменты, а точнее, микрочастички холестерина выделяются со слизью во время кашля при следующих патологиях:

1. абсцесс;
2. образование эхинококковой кисты;
3. злокачественные опухоли респираторного тракта.

Микроскопический анализ мокроты позволяет с помощью соответствующего оптического аппарата выявить наличие клеток или микроорганизмов, которые в норме не должны присутствовать в выделяемой с кашлем слизи.

Эпителиальные клетки

Эпителий в мокроте – вариант нормы. При микроскопическом исследовании внимание обращается на резкое увеличение концентрации клеток или образование эпителиальных цилиндров. Указанная картина свидетельствует о повреждении дыхательных путей и внутренней оболочки.

Альвеолярные макрофаги

Функция альвеолярных макрофагов – обеспечение локальной иммунной защиты. Небольшое количество клеток может присутствовать в слизи. Резкое возрастание концентрации макрофагов свидетельствует о хроническом воспалительном процессе (бронхит, бронхоэктатическая болезнь, астма, трахеит).

Появление лейкоцитов свидетельствует о наличии острого воспаления, которое может возникать на фоне бактериальной инфекции. Возможные патологии – абсцесс, пневмония, бронхоэктатическая болезнь.

Кровяные тельца появляются в мокроте при разрыве мелких или больших сосудов. О характере кровотечения врач судит по количеству эритроцитов. Отдельно стоит выделить появление видоизмененных клеток, которые проникают сквозь расширенные стенки сосудов без разрыва последних. Типичный пример заболевания – крупозная пневмония.

Опухолевые клетки

Атипичные клетки в мокроте – признак развивающегося онкологического процесса. Для уточнения локализации и типа патологии требуется проведение дополнительных анализов.

Эластические волокна

Появление эластичных волокон в выделяемой при кашле слизи – признак серьезного поражения легких с распадом тканей. Примеры заболеваний – гангрена, поздняя стадия бронхоэктатической болезни, туберкулез и рак, сопровождающийся деструкцией паренхимы органа.

Микробиологический анализ мокроты – один из важных методов верификации наличия туберкулеза. Возбудитель болезни – микобактерия (палочка Коха).

Определение наличия микроорганизма возможно с помощью бактериоскопического метода при использовании микроскопа. Для визуализации возбудителя нужно окрасить исследуемый материал по Цилю-Нильсену. Если в мокроте после кашля обнаруживается палочка Коха, фтизиатр должен в документации указать БК (+), что свидетельствует о выделении возбудителя. Такие больные требуют изоляции. БК (-) – пациент не распространяет бактерию.

Факт! Анализ мокроты на туберкулез проводится также посредством посева исследуемой жидкости на питательную среду. Плюсом методики остается 100% точность. Если бактерия присутствует в организме, она вырастет и в лабораторных условиях. Основной минус описанной диагностики – длительность получения результатов анализа (иногда больше месяца).

Бактериологическое исследование при воспалительном поражении респираторного тракта, как правило, используется для верификации внебольничных форм инфекции (пневмония, актиномикоз и тому подобное).

Анализ проводится в три этапа:

1. забор мокроты для исследования;
2. посев жидкости на предварительно подготовленную питательную среду;
3. пересев необходимой колонии с изучением химических и физических характеристик возбудителя.

При необходимости установления восприимчивости к противомикробным средствам дополнительно выполняется проба на чувствительность. В чашку Петри, где выросла колония микроорганизмов, помещаются бумажные кружки, обработанные антибиотиками. Те препараты, вокруг которых зона разрушения колонии максимальная, рекомендуются к применению конкретному пациенту.

Сбор мокроты на общий анализ может назначаться практически при любом заболевании, которое сопровождается отхаркиванием после кашля. Однако соответствующая диагностика редко применяется при сезонных вирусных инфекциях из-за ненадобности. В указанных случаях кашель и другие симптомы регрессирует при обильном питье и соблюдении постельного режима.

Патологии, требующие проведения анализа мокроты:

• туберкулез;
• абсцесс легкого;
• злокачественные новообразования;
• гангрена легкого;
• бронхиальная астма;
• хронический бронхит;
• пневмокониозы – профессиональные заболевания бронхолегочной системы.

Подтверждение диагноза осуществляется с помощью лабораторных, физикальных, а также инструментальных методов.

Подготовка пациента к сбору мокроты для анализа – ответственный процесс, от которого может зависеть качество диагностики. При игнорировании простых правил в слизи появляются дополнительные примеси, мешающие лаборанту установить первопричину кашля и респираторной патологии в целом.

Рекомендации:

• Подготовка емкости. Оптимальными остаются контейнеры, продаваемые в аптеках. В случае отсутствия такого флакона подойдет даже полулитровая банка или небольшой пластиковый бак (не больше 1 л). Однако нужно учесть, что такие емкости крайне неудобны и могут использоваться только в нетипичных обстоятельствах, когда нет доступа к нормальным контейнерам;
• За два часа до исследования необходимо почистить зубы и прополоскать ротовую полость. Удаление частичек пищи и слюны способствует повышению точности диагностики;
• Проконсультироваться с врачом. Доктор подробно объяснит, как правильно собрать мокроту на анализ.

Если человек впервые сдает бронхиальную слизь, тогда ему часто требуется несколько попыток для правильного выполнения процедуры.

Кроме описанных выше нюансов подготовки, правила сбора мокроты предусматривают использование утренней порции слизи. Причина – скопление секрета с ночи, что существенно облегчает отхаркивание после кашля. Можно брать бронхиальную слизь и в другое время дня, однако, количество и качество исследуемого материала снижается.

Алгоритм сбора мокроты на общий анализ:

1. глубокий вдох с задержкой воздуха на 10 секунд;
2. плавный выдох;
3. повторные 2 вдоха;
4. на третьем выдохе воздух необходимо с силой выталкивать из груди, после чего нужно откашляться;
5. поднести контейнер к нижней губе и сплюнуть слизь.

Указанный алгоритм позволяет собрать необходимое количество исследуемого материала (2-5 мл). При возникновении трудностей рекомендуется наклониться вперед, лечь на бок. Для ускорения отхождения слизи дополнительно можно сделать увлажняющую ингаляцию паром или с применением отхаркивающего средства.

Сбор мокроты описанным способом не исключает попадания слюны в исследуемый образец во время кашля. Альтернативой указанному алгоритму действия остается забор секрета дыхательных путей во время бронхоскопии. Врач с помощью эндоскопа исследует состояние реснитчатого эпителия и может взять необходимое количество жидкости для соответствующего анализа.

Домашний сбор мокроты проводится аналогично описанной выше методике. Важно после попадания слизи в контейнер после кашля плотно закрыть емкость и быстро доставить в лабораторию. В противном случае информативность исследования снижается.

В норме расшифровкой анализа мокроты занимается пульмонолог или фтизиатр. Ниже представлена таблица, в которой указаны характеристики выделяемой после кашля слизи при отсутствии патологии.

После изучения мокроты лаборант заполняет соответствующую форму (нажми, чтобы увеличить).

Указанный документ может выглядеть немного по-другому. Все зависит от конкретной лаборатории. Ниже представлены варианты бланков исследования с предполагаемыми диагнозами.

Расшифровка: розовый цвет слизистой мокроты в сочетании с присутствием микобактерий туберкулеза (МТ+) указывает на наличие соответствующей патологии.

Расшифровка: учитывая наличие лейкоцитов, слизисто-гнойную консистенцию и большое количество кокковой флоры, наиболее вероятным диагнозом остается хронический бактериальный бронхит.

Расшифровка: в первую очередь внимание нужно обратить на большое количество мокроты (50 мл). В сочетании с изобилием лейкоцитов, которые покрывают все поле зрения микроскопа, и присутствием эластичных волокон можно судить о наличии абсцесса, который прорвался в бронх.

Для того чтобы расшифровывать анализ мокроты и подобрать адекватную терапию от кашля рекомендуется консультация пульмонолога или фтизиатра. Участковый терапевт и семейный врач также могут справиться с простыми вариантами респираторной патологии.

Кашель – проблема, которая часто протекает на фоне отхаркивания слизи. Анализ мокроты – простой и эффективный метод уточнения предполагаемого диагноза. Самостоятельно соответствующее исследование не гарантирует полноценной оценки функционирования респираторной системы пациента, но в сочетании с базовыми процедурами упрощает выбор адекватного лечения для конкретного больного.

источник

1. Направление: название метода исследования,

адрес или № истории болезни,

дата направления на исследование.

2. Стерильная, широкогорлая банка с крышкой из крафт- бумаги, берется в

Методика взятия мокроты.

1. Собирают мокроту утром до еды.
2. Вечером и за 1,5 – 2 часа до исследования почистить зубы.
3. Непосредственно перед исследованием прополоскать рот и глотку кипяченой водой.
4. Объяснить больному, что во время сбора мокроты он не должен касаться краев стерильной посуды руками, ртом. Не касаться внутренней поверхности крышки. А после откашливания сразу закрыть банку крышкой.
5. Откашлять и собрать мокроту. Не менее 5 мл.
6. Доставить в лабораторию не позднее 1 – 1,5 часов после сбора.

Диагностическое значение.

Выявляют возбудителя патологического процесса ( делают посев на питательные среды), а так же можно произвести подбор антибиотика эффективного при данном возбудителе (то есть определить чувствительность возбудителя к тому или иному антибиотику).

Сбор мокроты на микобактерии туберкулеза методом флотации.

1. Направление: название метода исследования,

адрес или № истории болезни,

дата направления на исследование

2. Чистая стеклянная широкогорлая банка из темного стекла с завинчивающейся крышкой

( так как на свету микобактерии туберкулеза гибнут)

Методика сбора мокроты.

1. Мокрота собирается в течение суток.
2. Если мокрота отходит в малом количестве, то сбор происходит в течение 3 суток. Плевательница в этом случае хранится в прохладном, темном, сухом месте.
3. Для достоверного анализа необходимо 15 – 20 мл мокроты.
4. Предупредить, что мокрота собирается только при откашливании, а не при отхаркивании.
5. Необходимо соблюдать правила личной гигиены до и после сбора мокроты.

Диагностическое значение.

Выявление в мокроте возбудителя туберкулеза – микобактерия туберкулеза.

Сбор мокроты на атипичные клетки.

Подготовка пациента и правила сбора такие же, как для общего клинического анализа.

Н О ! Исследуется свежевыделенная мокрота, так как атипичные клетки быстро разрушаются.

Иногда применяют предварительные ингаляции с протеолитическим ферментом трипсином, способствующим выхождению мокроты из наиболее глубоких отделов бронхиального дерева.

Бронхоскопия.

Бронхоскопия– метод осмотра бронхов с помощью специального прибора бронхофиброскопа.

Цели процедуры:

Визуально осмотрев слизистую бронхов крупного и среднего калибра, можно обнаружить эрозии, язвы, воспалительные изменения, новообразования.

С помощью специальных щипчиков можно взять кусочек тканей из подозрительного места

для цитологического и гистологического исследования

Можно извлечь инородное тело, удалить полипы. Можно извлечь гнойную, вязкую мокроту, а так же ввести в полость бронха антибиотики и другие лекарственные вещества.

Цели подготовки:

1. Информировать пациента о предстоящей процедуре и получить его согласие.
2. Подготовить необходимое оснащение для обеспечения четкого выполнения исследования.

1. Бронхоскоп
2. Резиновые перчатки
3. Шприцы 10 и 20 мл
4. Раствор анестетика (новокаин 1%, тримекаин 5%, лидокаин 2%)
5. Раствор атропина 0,1%
6. Раствор димедрола 1%
7. Направление на исследование
8. Набор для помощи при анафилактическом шоке

Информация для пациента по подготовке к исследованию.

1. В доступной форме предоставить пациенту или его родственникам информацию о сути и целях предстоящего исследования. Получить согласие.
2. Предупредить пациента, что в день исследования нельзя есть, пить, курить.
3. Накануне вечером по назначению врача провести премедикацию транквилизаторами.
4. Непосредственно перед исследованием предложить пациенту опорожнить мочевой пузырь.
5. Придти в эндоскопический кабинет с полотенцем и направлением в назначенное время.

Методика проведения исследования:

1. Непосредственно перед исследованием, за 15 мин, по назначению врача ввести пациенту подкожно 0,1% 1 мл аптропина, 1% 1 мл димедрола.
2. Надеть стерильные перчатки.
3. Попросить пациента сесть на стул, слегка запрокинув голову.
4. Провести анестезию верхних дыхательных путей.
5. Ассистировать врачу при проведении бронхоскопии.
6. После окончания процедуры сбросить перчатки и отработанные инструменты в дезраствор.
7. Проводить пациента в палату, предупредить о необходимости не принимать пищу и не курить в течение 2 часов после исследования.

Постуральный дренаж.

Это использование определенного положения тела – специальные «дренажные» позы и упражнения с форсированным удлиненным выдохом для улучшения отхождения мокроты.

Противопоказания:

1. Кровохарканье.
2. Возникновение во время процедуры значительной одышки или приступа удушья.
3. Повышение артериального давления.
4. Головокружение.
5. Аритмии.

Алгоритм действия:

1. Объяснить пациенту смысл и цели процедуры.
2. Получить его согласие.
3. Приготовить плевательницу.
4. Придать одно из дренажных положений.
5. Наблюдать за состоянием пациента и правильностью выполнения процедуры.
6. Повторить процедуру 3 – 5 раз с перерывами в 10 – 15 минут.
7. Придать пациенту обычное положение в постели.
8. Провести дезинфекцию мокроты и плевательницы.
9. Протоколирование о выполненной процедуре в сестринской карте.

Методика выполнения процедуры:

1. Упражнения выполняются 2 раза в день – утром и вечером.
2. Предварительно принимают отхаркивающие средства – настой термопсиса, багульника, мать-и-мачехи.
3. Через 20 – 30 минут после этого больной поочередно занимает дренажные положения (смотри ниже).
4. В каждом положении больной выполняет вначале 4 – 5 глубоких медленных дыхательных движений, вдыхая воздух через нос, а выдыхая через сжатые губы. Затем после медленного глубокого вдоха производится форсированный выдох с настойчивым покашливанием 3 – 5 раз.

Хороший результат достигается при сочетании дренажных положений с различными методами вибрации грудной клетки.

А. Лежа в кровати больной поворачивается вокруг продольной оси своего тела и в промежуточных положениях (45˚) делает форсированные выдохи. Необходимо совершить полный оборот на 360˚.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: На стипендию можно купить что-нибудь, но не больше. 8909 — | 7211 — или читать все.

193.124.117.139 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.

Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)
очень нужно

источник

Сбор мокроты.

Мокрота(sputum) — это патологическое отделяемое из дыхательных путей — легких, бронхов, трахеи, гортани, выделяется при кашле или отхаркивании. В состав мокроты могут входить слизь, серозная жидкость, клетки крови и дыхательных путей.

Сбор мокроты желательно осуществлять утром (так как она накапливается ночью) и до еды. Анализ мокроты будет достоверней, если пациент предварительно почистил зубы щёткой и прополоскал рот кипячёной водой, что позволяет уменьшить бактериальную обсеменённость полости рта.

Анализ мокроты следует проводить подготовленному и обученному пациенту:

Мокрота лучше отходит и её образуется больше, если накануне исследования пациент употреблял больше жидкости;

Сбор мокроты проходит эффективней, если пациент предварительно выполняет три глубоких вдоха с последующим энергичным откашливанием. Необходимо подчеркнуть, что важно получить именно мокроту, а не слюну.

Сбор мокроты выполняют в стерильный разовый герметичный флакон (контейнер) из ударостойкого материала с навинчивающимся колпачком или плотно закрывающейся крышкой. Флакон должен иметь ёмкость 20-50 мл и широкое отверстие (не менее 35 мм в диаметре), чтобы пациент мог легко сплёвывать мокроту внутрь флакона. Для возможности оценки количества и качества собранной пробы флакон должен быть изготовлен из прозрачного материала.

Если сбор мокроты проходит в присутствии медицинского работника, то последнему необходимо одеть перчатки (взятие материала и его отправку следует осуществлять в перчатках). Учитывая, что при энергичном кашле мокрота в виде капель может разбрызгиваться, с профилактической целью следует одеть маску, а при необходимости закрыть глаза очками или сразу всё лицо защитным щитком. Лучше вообще находиться за спиной пациента, выбирая свое положение таким образом, чтобы направление движения воздуха было от медработника к пациенту.

Для провокации кашля, а так-же если мокрота отделяется плохо пациенту проводят в течение 10-15 минут ингаляцию 30-60 мл подогретого до 42-45 градусов Цельсия раствора (в 1 л стерильной дистиллированной воды растворяют 150 г хлорида натрия и 10 г бикарбоната натрия). У большинства пациентов после подобной ингаляции ещё в течение нескольких часов наблюдается остаточная гиперсекреция бронхиального содержимого. Для исследования достаточно 3-5 мл мокроты, но анализ можно проводить и при меньших объёмов. Анализ мокроты необходимо проводить не позднее, чем через 2 часа после сбора. Если собранная мокрота подлежит транспортировке в другое учреждение, то до момента отправки в лабораторию герметично закрытые флаконы с материалом хранятся в холодильнике не более 2-3 суток. При более длительном хранении необходимо применить консервирующие средства. Во время транспортировки мокрота должна быть защищена от воздействия прямых солнечных лучей и тепла.

Факторы, влияющие на результат исследования:

1. Неправильный сбор мокроты.

2. Мокрота несвоевременно отправлена в лабораторию. В несвежей мокроте размножается сапрофитная флора, разрушаются форменные элементы.

3. Анализ мокроты проведён уже после назначения антибактериальных, противогельминтных средств.

Анализ мокроты.

Если мокрота отделяется в виде небольших плевков, то — это защитная реакция. Если много — это патология. При хроническом бронхите выделяется слизистая или гнойная мокрота до 250 мл в сутки. При бронхоэктазах (расширение бронхов или их отделов), абсцессе лёгкого — мокрота обильная, гнойная, с запахом, до 500 мл/сут.

Утренний кашель с мокротой характерен в первую очередь для курильщиков с хроническим бронхитом. Ночью мокрота скапливается в бронхах, а утром после подъёма с постели вследствие перемены положения тела перемещается, раздражая рефлексогенные зоны и вызывая кашель. Кашель с мокротой в течение дня у подростков, скорей всего будет обусловлен гайморитом, а не хроническим бронхитом.

По положению больного, при котором мокрота отделяется лучше всего, можно получить условное представление о локализации полости или бронхоэктазов в лёгком. При расположении бронхоэктазов в левом лёгком выделение мокроты с кашлем будет облегчаться при нахождении на правом боку, и наоборот. При бронхоэктазах в передних отделах лёгких, мокрота лучше отходит в положении лёжа на спине, в задних отделах — на животе. Данное обстоятельство используется для постурального дренажа лёгких (пациент 3-4 раза в день занимает определённое положение на 10-20 минут для облегчения отхождения мокроты под влиянием силы тяжести).

В исследования физических свойств входят: характер, цвет и консистенция.

Анализ мокроты начинают с её внешнего осмотра в чашке Петри, которую ставят попеременно на чёрный и белый фон.

Общее правило: прозрачная слизь — это обычная защитная мокрота; мутная мокрота — идёт воспалительный процесс.

Слизистая мокрота — бесцветная (прозрачная), вязкая, практически не содержит клеточных элементов. Встречается при многих острых и хронических заболеваниях верхних и нижних дыхательных путей.

Серозная мокрота — бесцветная, жидкая, пенистая. Выделяется при отёке лёгких.

Гнойная (или гнилостная) мокрота содержит гной. Цвет мокроты — жёлтый или зелёный. Чисто гнойная мокрота встречается, например, при прорыве абсцесса лёгкого в бронх; чаще наблюдается смешенная — слизисто-гнойная мокрота. Гнойная (или гнилостная) мокрота содержит гной. Цвет мокроты — жёлтый или зелёный. Чисто гнойная мокрота встречается, например, при прорыве абсцесса лёгкого в бронх; чаще наблюдается смешенная — слизисто-гнойная мокрота.

Зелёный цвет мокроты — это вообще любая патология, связанная с задержкой оттока (гаймориты, бронхоэктазы, посттуберкулёзные нарушения и пр) У подростков при зелёной мокроте в первую очередь надо исключать лор-патологию, а не предполагать хронический бронхит.

Мокрота янтарно-оранжевого цвета отражает эозинофильную реакцию и свидетельствует об аллергии.

Кровянистая — мокрота с примесью крови. Может быть чисто кровяной на фоне легочных кровотечений, так и смешанной, например, слизисто-гнойной с прожилками крови при бронхоэктазах. Если кровь задерживается в дыхательных путях, то гемоглобин превращается в гемосидерин, и цвет мокроты приобретает оттенок ржавчины (ржавая мокрота). Кровь в мокроте (даже единичные прожилки) — всегда настораживающий признак, требующий тщательного обследования (см. файл Кровохарканье).

Жемчужная мокрота содержит округлые опалесцирующие включения, состоящие из атипичных клеток и детрита. Жемчужная мокрота наблюдается при плоскоклеточном раке бронхов.

При отстаивании мокрота может расслаиваться. Трёхслойная мокрота — это обильная, гнойная мокрота, которая при отстаивании разделяется на три слоя: верхний — серозный, пенистый; средний — слизистый, бесцветный, прозрачный; нижний — грязного серо-зелёного цвета, содержащий гной и остатки некротизированных тканей. Наблюдается при гангрене лёгкого.

Из отдельных элементов, различимых простым глазом можно обнаружить:

Спирали Куршмана в виде небольших плотных извитых беловатых нитей.

«Чечевицы» — небольшие зеленовато-жёлтые плотные комочки, состояние из обызвествлённых эластических волокон, кристаллов холестерина. Встречаются при туберкулёзе.

Пробки Дитриха. Макроскопически имеют вид мелких желтовато-серых зернышек с неприятным запахом, содержатся в гнойной мокроте. Микроскопически представляют собой детрит, бактерии, кристаллы жирных кислот в виде игл и капелек жира. Образуются при застое мокроты в полостях, главным образом при абсцессе легкого, бронхоэктазах.

Друзы актиномицетов в виде мелких желтоватых зёрнышек, напоминающих манную крупу.

Мокрота чаще не имеет запаха. Зловонный запах мокроты зависит либо от распада ткани (гангрена, раковая опухоль) либо от разложения белков самой мокроты при задержке её в полостях (абсцесс, бронхоэктазы).

Реакция мокроты, как правило, имеет щелочной характер. Кислой она становится при разложении мокроты (длительное стояние) и от примеси желудочного сока (что помогает дифференцировать кровохарканье от кровавой рвоты).

Бактериоскопия и посев мокроты

Для бактериоскопического исследования предварительно готовят препарат. Вначале растирают комок мокроты между двумя предметными стёклами; затем высохший мазок фиксируют над пламенем горелки и окрашивают: для поисков микобактерий туберкулёза по Цилю-Нильсену, в других случаях — по Грамму.

Чувствительность бактериоскопического метода напрямую зависит от кратности обследования пациента. Например, согласно исследованиям, однократный анализ мокроты на микобактерии туберкулёза имеет чувствительность 80-83%, двукратный анализ мокроты (в течение двух дней) — на 90-93% больше и при исследовании трёх проб мокроты (в течение трёх дней) — 95-98%. Таким образом, при подозрении на туберкулез органов дыхания необходимо исследовать не менее трёх проб мокроты.

Отрицательный результат микроскопического исследования не исключает диагноз той или иной инфекции, так как мокрота пациента может содержать меньше микробов, чем может выявить микроскопическое исследование.

Когда бактериоскопическое исследование не обнаруживает предполагаемого возбудителя, прибегают к посеву мокроты на питательные среды. Посев мокроты производят не позднее 2-х часов после сбора. Если подозревается туберкулёз, то сбор мокроты осуществляют в течение 3-х последовательных дней.

Бактериологическое исследование позволяет идентифицировать вид микробов и определять их антибиотикочувствительность.

Обычно у здоровых лиц в мокроте при посеве выявляются альфа-гемолитический стрептококк, Neisseria spp., дифтероиды. Обнаружение лишь нормальной микрофлоры ещё не означает отсутствие инфекции. Результат посева следует интерпретировать с учётом клинической картины и общего состояния пациента.

Критерием этиологической значимости возбудителя будет выявления микроба в концентрации 106в 1 мл и выше. Но к выявлению микобактерий туберкулёза в любом количестве следует отнестись со всей серьёзностью.

СБОР МОКРОТЫ НА МИКОБАКТЕРИИ ТУБЕРКУЛЕЗА

Цель: обеспечить качественный сбор мокроты, содержащей достаточное количество микобактерии туберкулеза, если они выделяются.

Оснащение: карманная плевательница для сбора мокроты или чистая, стеклянная широкогорлая банка из темного стекла с крышкой, направление в лабораторию.

Список использованной литературы

1. Лабораторные и инструментальные исследования в диагностике: Справочник / Пер. с англ. В.Ю. Халатова; под. ред. В.Н. Титова. — М.: ГЭОТАР-МЕД, 2004. — 960 с.

2. Kincaid-Smith P., Larkins R., Whelan G. Problems in clinical medicine. — Sydney: MacLennan and Petty, 1990, 105-108.

3. Лабораторные методы исследования в клинике: Справочник. Под ред. проф. Меньшикова В.В. — М.: «Медицина», 1987. — 368 с.

4. Пропедевтика внутренних болезней. Под ред. В.Х. Василенко, А.Л. Гребнёва. — М.: «Медицина», 1982. — 640 с.

5. Справочник по клиническим лабораторным методам исследования. Под ред. Е.А. Кост. — «Медицина», 1975 — 383 с.

источник

Известно, что микроорганизмы, невзирая на свой «малый рост», тоже имеют пищевые «пристрастия», температурный оптимум, в общем, среду, которая им идеально подходит, где они чувствуют себя комфортно и хорошо, а поэтому начинают интенсивно размножаться и расти.

Бактериологический посев или, как принято называть короче – бак посев, применяется для получения большого количества микробов одного вида (чистая культура) с целью изучения их физико-химических и биологических свойств, чтобы затем полученные данные использовать для диагностики инфекционных заболеваний.

К сожалению, даже популярные нынче иммуноферментный анализ (ИФА), полимеразная цепная реакция (ПЦР) и другие методы, основным недостатком которых являются ложноположительные или ложноотрицательные результаты, не всегда могут идентифицировать возбудителя. Кроме того, они не способны подобрать антибактериальные препараты направленного действия. Подобную задачу решает бак посев, который часто не спешат назначать, ссылаясь на то, что, например, уреа- микоплазмы медленно культивируется, а стоимость анализа немалая. Однако ведь и здоровье того стоит!

Микробиологи нынче знают, что каждому возбудителю нужна своя «родная» среда с учетом ее рН, окислительно-восстановительных потенциалов, вязкости, влажности и осмотических свойств. Среды могут быть мягкими и твердыми, простыми и сложными, универсальными и не очень, однако во всех случаях они должны обеспечивать питание, дыхание, размножение и рост бактериальной клетки.

пример роста микроорганизмов после бак-посева в питательную среду

Некоторые среды (тиогликолевая, Сабуро) подходят для широкого круга микроорганизмов и называются универсальными. Другие же предназначены только для определенных видов, например, пневмококк и золотистый стафилококк, продуцирующие гемолизины, растут на кровяном агаре, который служит для выделения особо «капризных» и, вместе с тем, опасных штаммов. Таким образом, разновидностей сред множество, где каждая из них выращивает свой круг микроорганизмов.

Кроме воды, воздуха, почвы, содержащие в тех или иных концентрациях различные микроорганизмы, в том числе и приносящие болезнь (патогенные), многие отрасли медицинской науки интересуют микробы, живущие на коже и слизистых человеческого организма, которые могут быть представлены:

• Постоянными обитателями, не несущими никакой опасности человеку, то есть, нормальной микрофлорой организма, без которой мы просто жить не можем. Например, исчезновение бактерий, живущих в кишечнике и участвующих в процессе пищеварения, приводит к дисбактериозу, лечить который – дело непростое. Так же происходит и с исчезновением вагинальной микрофлоры. Ее тут же заселяют условно-патогенные микроорганизмы, гарднереллы, например, которые вызывают бактериальный вагиноз (гарднереллез);
• Условно-патогенной флорой, которая приносит вред лишь в больших количествах при определенных условиях (иммунодефицит). Вышеназванная гарднерелла – представитель такого типа микроорганизмов;
• Наличием патогенных микробов, которые в здоровом теле не присутствуют. Они чужды человеческому организму, куда попадают случайно при контакте с другим (больным) человеком и вызывают развитие инфекционного процесса, порой, довольно тяжелого или даже смертельного. Например, встреча с возбудителями сифилиса – еще куда ни шло, на первых порах лечится, а вот (упаси Бог!) выпустит на волю холеру, чуму, черную оспу и др.

К счастью, многие из них побеждены и в настоящее время находятся «за семью печатями» в специальных лабораториях, однако человечество в любой момент должно быть готово к нашествию невидимого врага, способного уничтожить целые народы. Бактериологический посев в подобных случаях играет, пожалуй, главную роль в идентификации микроорганизма, то есть, определении рода, вида, типа и т.д. (токсономическое положение), что очень важно для диагностики инфекционных процессов, в том числе и заболеваний, передающихся половым путем.

Таким образом, методы посева, как и питательные среды, бывают разными, тем не менее, цель у них одна: получить чистую культуру без посторонних примесей в виде микробов других классов, которые обитают повсеместно: в воде, в воздухе, на поверхностях, на человеке и внутри его.

Бактериологический анализ пациенты сами себе не назначают, это делает врач, если у него есть подозрения, что проблемы больного, предъявляющего различные жалобы, связаны с проникновением в организм патогенного возбудителя или с усиленным размножением микроорганизмов, постоянно живущих с человеком, но проявляющих патогенные свойства только в определенных условиях. Сдав анализ и через некоторое время получив на руки ответ, человек теряется, а порой и пугается, увидев непонятные слова и обозначения, поэтому, чтобы этого не произошло, хочется дать краткое разъяснение по данному вопросу:

1. Первым пунктом заключения, как правило, стоит название возбудителя на латинском языке, например, Escherichiacoli. Это – кишечная палочка, она является естественным обитателем кишечника и в допустимых количествах никакого вреда не приносит;
2. Следующий пункт – концентрация микроорганизма. Е.coli– обильный рост (1х10^ 6 и более) норма – менее 1x10^ 4 ;
3. Далее – патогенность: флора условно-патогенная.

При исследовании биологического материала на присутствие патогенных микроорганизмов ответ может быть отрицательным или положительным («плохой бак посев»), поскольку организм человека является для них лишь временным пристанищем, а не естественной средой обитания.

Иной раз, в зависимости от того, какой материал подлежит посеву, можно увидеть количество микроорганизмов, выраженное в колониеобразующих единицах на мл (одна живая клетка даст рост целой колонии) – КОЕ/мл. Например, посев мочи для бактериологического исследования при норме дает до 10 3 КОЕ/мл всех выявленных бактериальных клеток, в сомнительных случаях (анализ повторить!) – 10 3 – 10 4 КОЕ/мл, при воспалительном процессе инфекционного происхождения – 10 5 и выше КОЕ/мл. О двух последних вариантах в разговорной речи, порой, выражаются просто: «Плохой бак посев».

Одновременно с посевом материала в таких ситуациях производится посев микрофлоры на чувствительность к антибиотикам, который даст четкий ответ врачу – какие антибактериальные препараты и в каких дозах «испугают» «незваного гостя». Здесь тоже есть своя расшифровка, например:

• Вид микроорганизма, допустим, та же Е.coli в количестве 1х10^ 6 ;
• Название антибиотика с обозначением (S) указывает на чувствительность возбудителя к этому препарату;
• Вид антибиотиков, не действующих на микроорганизм, обозначается символом (R).

Бактериологический анализ представляет особую ценность в определении чувствительности к антибиотикам, поскольку основной проблемой в борьбе с хламидией, микоплазмой, уреаплазмой и др. остается подбор действенного лечения, не приносящего вред организму и не ударяющего по карману пациента.

Бактериологическому анализу может подвергаться любой биологический материал, взятый у человека (кожа, кровь, сперма, слизистые ротовой полости, дыхательных и мочеполовых путей, желудочно-кишечного тракта, органов зрения, слуха и обоняния и др.). Чаще всего бак посев назначают гинекологи и урологи, поэтому на нем следует несколько остановиться.

Правильная подготовка к бактериологическому посеву будет залогом правильного результата, потому что в противном случае, анализ придется сдавать заново и ждать назначенное время. Как сдать кровь на стерильность из вены – это задача медработников. От больного здесь, как правило, ничего не зависит, он просто предоставляет локтевой сгиб, а медсестра производит забор в стерильную пробирку с соблюдением всех правил асептики и антисептики.

Другое дело – моча или мазок из половых путей. Здесь пациент должен обеспечить первый этап (забор), соблюдая предписанные правила. Следует заметить, что моча женщин и мужчин несколько отличается, хотя в мочевом пузыре у обоих полов она стерильна:

• У женщин при прохождении через мочеиспускательный канал может захватить небольшое количество непатогенных кокков, хотя в целом, часто остается стерильной;
• У мужчин все несколько по-другому. Передняя часть уретры может снабдить проходящую мочу находящимися там:
  1. дифтероидами;
  2. стафилококками;
  3. некоторыми непатогенными грамотрицательными бактериями, что и покажет впоследствии бактериологический анализ.

Однако, если они находятся в допустимой концентрации (до 10 3 КОЕ/мл), то пугаться нечего, это вариант нормы.

Чтобы избежать присутствия других микроорганизмов и максимально обеспечить стерильность взятого материала, перед сдачей анализа производится тщательный туалет половых органов (вход во влагалище у женщин закрывается ватным тампоном – защита от попадания отделяемого половых органов). Для анализа берется средняя порция мочи (начало мочеиспускания в унитаз, приблизительно 10 мл средней порции в стерильную баночку, окончание в унитаз). Пациентам необходимо знать: моча, взятая на посев, должна быть обработана не позднее, чем через два часа при хранении не выше 20°С, поэтому следует рассчитывать время на транспортировку.

Кроме этого материал на бак посев при необходимости берут из уретры и прямой кишки у мужчин, из уретры, прямой кишки, влагалища, шейки матки и цервикального канала – у женщин, но это происходит в медицинском учреждении, куда пациент должен прибыть. Подмывание, спринцевание и использование антисептических средств в таких случаях запрещено.

Многие пациенты интересуются, сколько дней делается анализ. Однозначно на этот вопрос ответить нельзя, все зависит от того, какой материал подвергается исследованию и какой возбудитель нужно искать. Иногда ответ готов через 3 дня, иногда через неделю или даже дней 10 – 14, поскольку некоторые образцы требуют пересева на другую среду.

Не обходят стороной люди, направляющиеся на бак посев и вопрос о цене анализа. Примерная стоимость в Москве составляет порядка 800 – 1500 рублей. Разумеется, она может быть выше и зависит от широты спектра бактериологического поиска. Бесплатно анализ, наверное, можно сдать при беременности в женской консультации, или в поликлинике по особым медицинским показаниям.

Для беременных бак посев является обязательным, сдается 2 раза (при постановке на учет и в 36 недель), при этом, мазок берется не только из половых путей, но и со слизистых носа и зева. Объектом поиска в данном случае, кроме урогенитальных инфекций, будет золотистый стафилококк (Staphylococcus aureus), который в послеродовом периоде может натворить много бед (гнойный мастит и др). Кроме этого, беременным в обязательном порядке делается посев мочи, соскоба влагалищного эпителия и мазки из шейки матки и цервикального канала.

Многие женщины, перед тем как отправиться на процедуру очень боятся таких страшных слов и начинают раздумывать: «А нужно ли это? Может, не пойти». Спешим заверить, что анализы абсолютно безболезненны. Мазок из шейки матки и цервикального канала берется стерильной цитощеткой, не причиняя женщине абсолютно никакой боли, зато впоследствии бак посев из ш/м и ц/к защитит и будущую мать, и плод от возможных осложнений. Объектом поиска при беременности являются возбудители хламидиоза, уреа- и микоплазмы, дрожжеподобный грибок рода Candida (обычно это Candida albicans), трихомонады и другие условно-патогенные и патогенные микроорганизмы.

Попав в половые пути патогенные микроорганизмы, через самое короткое время осваиваются и начинают свою вредную деятельность. Например, всегда патогенные гонококки (Neisseria), являющиеся виновниками довольно неприятной болезни, называемой гонореей и относящейся к ЗППП, чувствуют себя «как дома» буквально на 3 день. Они начинают активно размножаться и смело двигаться по половым путям вверх, захватывая все новые территории. Всем известно, что гонорея нынче неплохо лечится и ее уже почти никто не боится. Но для начала ее нужно найти. Основным методом поиска этой инфекции считается бак посев, культивирование, идентификация с помощью окрашивания по Граму, микроскопия.

Найденные в мазке, взятом «на флору» из половых путей, попарно лежащие «кофейные зерна» (диплококки), не указывают на наличие венерического заболевания. Такая микрофлора влагалища часто появляется в постменопаузе и ни о чем плохом не говорит. Отобранный в нестерильных условиях на предметное стекло и окрашенный метиленовым синим или по Романовскому (цитология) мазок, не может дифференцировать микроорганизм. Он может только предположить и направить пациентку на дополнительное исследование (получение изолированной культуры).

Следует заметить, что, если соскоб со слизистых мочеполовых путей, взятый для посева на уреаплазму, является не таким уж редким явлением, то посева мочи сами врачи часто избегают, поскольку с ней работать сложнее.

Трудности в диагностике создает хламидийная инфекция, приносящая большой вред не только при беременности. Кроме этого, хламидия вызывает множество заболеваний, свойственных не только женщинам, но и мужскому населению тоже, поэтому ее сеют, культивируют, изучают, определяют чувствительность к антибактериальной терапии и, таким образом, борются с ней.

При беременности вообще без бактериологического посева трудно обойтись, поскольку многие микроорганизмы, маскируясь в цитологическом мазке, могут быть пропущены. Между тем, влияние некоторых возбудителей ЗППП на плод бывает губительным. К тому же лечить беременную женщину значительно сложнее, а назначать антибиотики «на глаз» просто недопустимо.

Для выделения чистых культур возбудителей на первом этапе прибегают к их посеву на соответствующие среды, который проводится в специальных (стерильных!) условиях. В основном, перенос материала на среду осуществляется с помощью приспособлений, применяемых еще в 19 века великим Луи Пастером:

• Бактериальной петлей;
• Пастеровской пипеткой;
• Стеклянной палочкой.

Конечно, многие инструменты за 2 столетия претерпели изменения, на смену пришли пластиковые стерильные и одноразовые, однако и старые не остались в прошлом, продолжая и поныне служить микробиологической науке.

Первый этап получения колоний требует соблюдения определенных правил:

1. Посев осуществляется над спиртовкой в боксе, предварительно обработанном дезинфектантами и кварцеванием, или в ламинарном шкафу, обеспечивающем стерильность в рабочей зоне;
2. Одежда медработника, перчатки и среда также должны быть стерильными, поскольку обратное мешает выделению изолированных штаммов;
3. Работать в боксе нужно быстро, но аккуратно, нельзя разговаривать и отвлекаться, при этом – необходимо помнить о личной безопасности, ведь материал может быть заразным.

Выделение штаммов не всегда одинаково, поскольку некоторые биологические среды, находящиеся в человеческом организме требуют индивидуального подхода, например, гемокультуру (кровь) сначала в жидкой среде (соотношение 1 : 10) немного «подращивают», поскольку кровь (неразведенная) может убить микроорганизмы, а затем, через сутки или больше, пересевают на чашки Петри.

Посев мочи, промывных желудочных вод и других жидких материалов тоже имеет свои особенности, где для получения чистой культуры, жидкость сначала следует центрифугировать (условия – асептические!), а уж затем сеять, причем не саму жидкость, а ее осадок.

Культивирование и выращивание колоний осуществляют на чашках Петри или помещают сначала в жидкую среду, разлитую в стерильные флакончики, а затем изолированные колонии еще раз высевают, но уже на скошенный агар и помещают материал на сутки в термостат. Убедившись в чистоте полученной культуры, штаммы переносят на предметное стекло, делают мазок и окрашивают по Граму (чаще всего), Цилю-Нильсену и др. и для дифференцировки изучают морфологию микроба под микроскопом:

• Размер и форму бактериальной клетки;
• Наличие капсул, жгутиков, спор;
• Тинкториальные свойства (отношение микроорганизма к окрашиванию)*.

*Читатель, вероятно, слышал о таком возбудителе, как бледная трепонема? Это – возбудитель сифилиса, а ее название (бледная) поэтому и появилось, что она плохо воспринимает краски и остается слегка розоватой при окрашивании по Романовскому. Микроорганизмы, невоспринимающие анилиновые красители называются грамотрицательными, а воспринимающие – грамположительные. Грамотрицательным бактериям придают розовый или красный цвет при окраске по Граму дополнительные красители (фуксин, сафранин).

Бак посев можно назвать древним анализом, однако его популярность от этого отнюдь не падает, хотя современная бактериология имеет возможности выделения не только штаммов, но и отдельной клетки из него, которая называется клоном. Однако для получения клона необходим специальный прибор – микроманипулятор, который в обычных лабораториях отсутствует, поскольку применяется, в основном, в научно-исследовательских целях (генетические исследования).

источник

Недопустимо направлять мокроту на исследование в емкостях, не предназначенных для этих целей, так как в них могут содержаться вещества, способные исказить результат анализов.

Нельзя разделять мокроту на две части для исследования в разных лабораториях, так как важные компоненты могут попасть только в один из контейнеров.

• Мокрота собирается утром, натощак. Перед сбором мокроты почистите зубы и прополощите рот водой, чтобы удалить частицы пищи и бактериальный налет. Сделайте два глубоких вдоха, задерживая дыхание на несколько секунд, после каждого глубокого вдоха медленно выдыхайте. Затем вдохните в третий раз и с силой выдохните (вытолкните) воздух. Еще раз вдохните и хорошо откашляйтесь.
• Поднесите контейнер как можно ближе ко рту и осторожно сплюньте в него мокроту после откашливания. Следите, чтобы мокрота не попала на край контейнера. Не касайтесь внутренней поверхности крышки и стенок стерильного контейнера пальцами. Плотно закройте контейнер крышкой.
• Вымойте руки с мылом.
• Собранную для исследования утреннюю мокроту доставьте в лабораторию не позднее, чем через 1–1,5 часа после сбора. При этом должны быть созданы условия, исключающие ее охлаждение при транспортировке. В противном случае в мокроте быстро произойдут изменения ее качеств, состава микробных колоний, что может исказить результаты исследования.

Внимание Нельзя собирать мокроту, выделяемую при отхаркивании, только при откашливании. Попадание слюны в образец может существенно влиять на результат исследования.

Общие правила сбора слюны

Внимание! Нецелесообразно проводить исследования слюны на фоне применения глюкокортикоидных препаратов (в т.ч. мазей).

За сутки до взятия слюны не употреблять алкоголь.

• За час до сбора слюны не есть, не курить, не чистить зубы (если нет других указаний от лечащего врача).
• За 10 минут до сбора слюны прополоскать рот водой.

• За сутки и в течение всего периода сбора слюны исключить физические нагрузки, не употреблять кофеин (чай, кофе, кофеиносодержащие энергетические напитки, продукты, жевательная резинка), алкоголь;
• За один час до сбора слюны не курить;
• За 30 минут до сбора слюны не употреблять пищу, не чистить зубы, в том числе не использовать зубную нить и ополаскиватель для полости рта, не жевать жевательную резинку;
• За 10 минут до сбора слюны прополоскать рот водой;
• Прием седативных препаратов, кортизона ацетата, эстрогенов, пероральных контрацептивов, глюкокортикоидных препаратов (в т. ч. мазей) может вызвать повышение уровня кортизола. Отмена лекарственных препаратов осуществляется строго по рекомендации лечащего врача.

Продробнее о правилах сбора слюны для исследований «Кортизол в слюне» смотрите по ссылке

• Мокрота собирается утром, натощак. Перед сбором мокроты почистите зубы и прополощите рот водой, чтобы удалить частицы пищи и бактериальный налет. Сделайте два глубоких вдоха, задерживая дыхание на несколько секунд, после каждого глубокого вдоха медленно выдыхайте. Затем вдохните в третий раз и с силой выдохните (вытолкните) воздух. Еще раз вдохните и хорошо откашляйтесь.
• Поднесите контейнер как можно ближе ко рту и осторожно сплюньте в него мокроту после откашливания. Следите, чтобы мокрота не попала на край контейнера. Не касайтесь внутренней поверхности крышки и стенок стерильного контейнера пальцами. Плотно закройте контейнер крышкой.
• Вымойте руки с мылом.
• Собранную для исследования утреннюю мокроту доставьте в лабораторию не позднее, чем через 1–1,5 часа после сбора. При этом должны быть созданы условия, исключающие ее охлаждение при транспортировке. В противном случае в мокроте быстро произойдут изменения ее качеств, состава микробных колоний, что может исказить результаты исследования.

Внимание! Нельзя собирать мокроту, отделяющуюся при отхаркивании. Попадание слюны в образец может существенно влиять на результат исследования.

• Мокрота собирается утром, натощак. Перед сбором мокроты почистите зубы и прополощите рот водой, чтобы удалить частицы пищи и бактериальный налет. Сделайте два глубоких вдоха, задерживая дыхание на несколько секунд, после каждого глубокого вдоха медленно выдыхайте. Затем вдохните в третий раз и с силой выдохните (вытолкните) воздух. Еще раз вдохните и хорошо откашляйтесь.
• Поднесите контейнер как можно ближе ко рту и осторожно сплюньте в него мокроту после откашливания. Следите, чтобы мокрота не попала на край контейнера. Не касайтесь внутренней поверхности крышки и стенок стерильного контейнера пальцами. Плотно закройте контейнер крышкой.
• Вымойте руки с мылом.
• Собранную для исследования утреннюю мокроту доставьте в лабораторию не позднее, чем через 1–1,5 часа после сбора. При этом должны быть созданы условия, исключающие ее охлаждение при транспортировке. В противном случае в мокроте быстро произойдут изменения ее качеств, состава микробных колоний, что может исказить результаты исследования.

Внимание! Нельзя собирать мокроту, выделяемую при отхаркивании, только при откашливании. Попадание слюны в образец может существенно влиять на результат исследования.

Для бактериологического исследования мокроту собирают до начала антибактериальной терапии или через определенный промежуток времени после введения препарата.

Порядок сбора

• Мокрота собирается утром, натощак. Перед сбором мокроты почистите зубы и прополощите рот водой, чтобы удалить частицы пищи и бактериальный налет. Сделайте два глубоких вдоха, задерживая дыхание на несколько секунд, после каждого глубокого вдоха медленно выдыхайте. Затем вдохните в третий раз и с силой выдохните (вытолкните) воздух. Еще раз вдохните и хорошо откашляйтесь.
• Поднесите контейнер как можно ближе ко рту и осторожно сплюньте в него мокроту после откашливания. Следите, чтобы мокрота не попала на край контейнера. Не касайтесь внутренней поверхности крышки и стенок стерильного контейнера пальцами. Плотно закройте контейнер крышкой.
• Вымойте руки с мылом.
• Собранную для исследования утреннюю мокроту доставьте в лабораторию. При этом должны быть созданы условия, исключающие ее охлаждение при транспортировке. В противном случае в мокроте быстро произойдут изменения ее качеств, состава микробных колоний, что может исказить результаты исследования.

Внимание! Нельзя собирать мокроту, выделяемую при отхаркивании, только при откашливании. Попадание слюны в образец может существенно влиять на результат исследования.

Внимание Мокрота собирается натощак.

Предварительно почистите зубы, десны и язык зубной щеткой и прополощите рот кипяченой водой комнатной температуры.

Порядок сбора

• Сделайте два глубоких вдоха, задерживая дыхание на несколько секунд, после каждого глубокого вдоха медленно выдыхайте. Затем вдохните в третий раз и с силой выдохните (вытолкните) воздух. Еще раз вдохните и хорошо откашляйтесь.
• Поднесите контейнер как можно ближе ко рту и осторожно сплюньте в него мокроту после откашливания. Следите, чтобы мокрота не попала на край контейнера. Не касайтесь внутренней поверхности крышки и стенок стерильного контейнера пальцами. Плотно закройте контейнер крышкой.
• Вымойте руки с мылом.
• Собранную для исследования утреннюю мокроту доставьте в лабораторию.

Внимание! Нельзя собирать мокроту, выделяемую при отхаркивании, только при откашливании. Попадание слюны в образец может существенно влиять на результат исследования.

Мокрота. На грибы Cand >Внимание! Мокрота собирается до начала антибактериальной терапии.

Порядок сбора

• Сделайте два глубоких вдоха, задерживая дыхание на несколько секунд, после каждого глубокого вдоха медленно выдыхайте. Затем вдохните в третий раз и с силой выдохните (вытолкните) воздух. Еще раз вдохните и хорошо откашляйтесь.
• Поднесите контейнер как можно ближе ко рту и осторожно сплюньте в него мокроту после откашливания. Следите, чтобы мокрота не попала на край контейнера. Не касайтесь внутренней поверхности крышки и стенок стерильного контейнера пальцами. Плотно закройте контейнер крышкой.
• Вымойте руки с мылом.
• Собранную для исследования утреннюю мокроту доставьте в лабораторию.

Мокрота собирается до начала антибактериальной терапии. Предварительно почистите зубы, десны и язык зубной щеткой и прополощите рот кипяченой водой комнатной температуры.

Порядок сбора

• Сделайте два глубоких вдоха, задерживая дыхание на несколько секунд, после каждого глубокого вдоха медленно выдыхайте. Затем вдохните в третий раз и с силой выдохните (вытолкните) воздух. Еще раз вдохните и хорошо откашляйтесь.
• Поднесите контейнер как можно ближе ко рту и осторожно сплюньте в него мокроту после откашливания. Следите, чтобы мокрота не попала на край контейнера. Не касайтесь внутренней поверхности крышки и стенок стерильного контейнера пальцами. Плотно закройте контейнер крышкой.
• Вымойте руки с мылом.
• Собранную для исследования утреннюю мокроту доставьте в лабораторию.

Внимание! Качественным материалом для анализа считается мокрота, имеющая слизистый или слизисто-гнойный характер, а также содержащая плотные белесоватые включения.

У детей, не умеющих откашливать мокроту и заглатывающих ее, следует поступить следующим образом:

• Вызвать рефлекторный кашель, раздражая ватным тампоном, накрученным на ручку чайной ложки область корня языка и задней стенки глотки.
• Полученную мокроту собрать этим же тампоном и поместить в контейнер.

Так же следует поступать с очень слабыми больными, которые не могут откашляться самостоятельно.

источник