Грамположительные кокки. Грамотрицательные кокки. Микробиологическая диагностика, принципы лечения, профилактика
Грамотрица́тельные бакте́рии— это бактерии, которые не окрашиваются кристаллическим фиолетовым при окрашивании по Граму. В отличие от грамположительных бактерий, которые сохранят фиолетовую окраску даже после промывания обесцвечивающим растворителем (спирт), грамотрицательные полностью обесцвечиваются. После промывания растворителем при окрашивании по Граму добавляется контрастный краситель (обычно сафранин), который окрашивает все грамотрицательные бактерии в красный или розовый цвет. Это происходит из-за наличия внешней мембраны, препятствующей проникновению красителя внутрь клетки. Сам по себе тест полезен при классификации бактерий и разделении их на две группы относительно строения их клеточной стенки. Из-за своей более мощной и непроницаемой клеточной стенки грамотрицательные бактерии более устойчивы к антителам, чем грамположительные. Обычно патогенность грамотрицательных бактерий связывают с определёнными компонентами их клеточных стенок, а именно, с липополисахаридным слоем (ЛПС или эндотоксический слой). В человеческом организме ЛПС вызывает иммунный ответ, который характеризуется синтезом цитокинов и активацией иммунной системы. Обычной реакцией на синтез цитокинов является воспаление, что также может привести к увеличению количества токсичных веществ в организме хозяина.
Грамположительные бактерии (обозначаются Грам (+)) — бактерии, которые, в отличие от грамотрицательныхбактерий, сохраняют окраску, не обесцвечиваются при промывке при использовании окраски микроорганизмов пометоду Грама.
Большинство Грам (+) бактерий имеют однослойную клеточную мембрану, без внешней мембраны, присущейграмотрицательным бактериям. Исключением является тип Deinococcus-Thermus.
Большая часть патогенных для человека микроорганизмов относится к грамположительным. Шесть родов грамположительных организмов являются типичными патогенами человека. Два из них, стрептококки и стафилококки, являются кокками (шарообразными бактериями). Остальные — палочковидные и делятся далее по возможности образовывать споры.
Неспорообразующие: Corynebacterium и Листерия; спорообразующие: Бациллы и Клостридии. Спорообразующие можно разделить на факультативных анаэробов Бациллы и облигатных анаэробов Клостридий.
Лабораторная диагностика инфекционных заболеваний проводится в трех основных направлениях:
1) поиски возбудителя заболевания в материале, взятом у больного (испражнения, моча, мокрота, кровь, гнойное отделяемое и др.);
2) обнаружение специфических антител в сыворотке крови — серологическая диагностика;
3) выявление повышенной чувствительности организма человека к возбудителям инфекционных заболеваний — аллергический метод.
Для выявления возбудителя инфекционного заболевания и его идентификации (определения вида возбудителя) используют три метода: микроскопический, микробиологический (бактериологический) и биологический.
Адекватный подход к лечению инфекционных болезней построен на комплексном воздействии, которому подвергаются все составляющие инфекции. Большую роль играют терапевтические методы, объектом которых являются бактерии и вирусы, а также токсины, выделяемые ими. Кроме того, нужно позаботиться о нормализации обмена веществ, укреплении иммунной системы и восстановлении биологического равновесия с той средой, в которой живет пациент.
Антибиотики назначаются лечащим врачом, когда возбудитель инфекции слишком силен и есть опасность того, что возникнут серьезные осложнения и организм не справится самостоятельно. При этом следует понимать, что лечение не подразумевает исключительно прием антибиотиков. Комплексный подход к лечению инфекционных заболеваний дает наилучший результат. В частности, хороший эффект обеспечивает патогенетическая терапия, цель которой — ликвидация болезнетворных цепных реакций организме пациента. В связи с этим большое значение имеет нормализация тех функций систем и органов организма, которые оказались нарушены из-за инфекции. Это означает пересмотр рациона в сторону правильного питания, лечение сердечными препаратами, лечение препаратами, влияющими на нервную систему, прием достаточного количества витаминов и средств противовоспалительного характера.
Стафилококковая инфекция — это группа заболеваний, вызванных золотистыми стафилококками, которые могут проявляться как легкими формами (воспаление кожи), так и тяжелыми процессами (пневмония (воспаление легких), сепсис (воспалительный процесс во всех органах человека или « заражение крови»)).
Отличительной особенностью стафилококков является их способность вырабатывать токсины (вредные вещества, появляющиеся в результате жизнедеятельности вируса). Эти токсины оказывают сильнейшее воздействие на организм человека.
Менингококковая инфекция – это острое инфекционное заболевание, причиной которого является бактерия – Neisseria meningitidis . Тяжесть менингококковой инфекции колеблется от назофарингита до молниеносного сепсиса, приводящего к смерти за несколько часов. Немногие инфекции имеют столь катастрофичное течение.
Материал для исследований может забираться как от больных, так и от медперсонала, кроме того исследованию подлежат объекты окружающей среды: воздух, почва, смывы с окружающих предметов, лекарственные формы и т.д.
От людей забирается на исследование: отделяемое дыхательных путей, мокрота, слизь зева, носа, носоглотки; моча, испражнения, желчь, спиномозговая жидкость, кровь, гной (маститы, фурункулы, карбункулы, абсцессы, флегмоны и т.п.), отделяемое язв, свищей; отделяемое женских половых органов и др.
Следует помнить о соблюдении правил техники безопасности при заборе материала для исследований, поскольку он представляет опасность для здоровья медицинского персонала. Обязательно применение спецодежды и средств индивидуальной защиты, включая защитные очки, смотровые или хирургические перчатки и медицинские респираторы (при риске попадания контаминированных частиц и аэрозолей в дыхательные пути)
ТЕМА №8. Кишечная группа бактерий. Эшерихии. Шигеллы. Выделение чистой культуры энтеробактерий (1,2,3,4 день ). Посев на холеру. Сальмонеллы. Особенности микробиологической диагностики в связи с патогенезом заболеваний. Принципы лечения, профилактика.
Общая характеристика. Семейство кишечных бактерий (Enterobacteriaceae) объединяет обширную группу грамотрицательных неспорообразующих палочек. Они широко распространены в природе, обитают в кишечнике человека и животных. Среди них встречаются сапрофиты, условно-патогенные бактерии и патогенные виды.
Согласно Международной классификации (1963), все семейство кишечных бактерий разделено на 13 родов, из которых наибольшее значение для человека имеют:
1) род Escherichia, включающий группу кишечной палочки;
2) род Salmonella, куда входят возбудители брюшного тифа, паратифов и пищевых токсйкоинфекций;
3) род Shigella— возбудители бактериальной дизентерии;
4) род Proteus, включающий группу протея;
5) род Klebsiella — группа капсульных бактерий, возбудителей инфекций дыхательных и мочевых путей.
Кишечная палочка имеют типичную для энтеробактерий форму и представлены короткими подвижными палочками с закруглёнными концами.
- На плотных средах бактерии образуют плоские выпуклые мутные S-колонии с ровными или слегка волнистыми краями (3-5 мм в диаметре) либо сухие плоские R-колонии с неровными краями.
- В жидких средах растут диффузно, вызывая помутнение среды и образование осадка (реже формируют поверхностную плёнку или пристеночное кольцо).
- На средах Хисса кишечная палочка может образовывать газ. На селективно-дифференциальных средах колонии принимают цвет, соответствующий окраске среды. На агаре Эндо лактоза-положительные эшерихии образуют фукс и ново-красные колонии с металлическим блеском, лактоза-отрицательные — бледно-розовые или бесцветные с тёмным центром. На среде Левина бактерии формируют тёмно-синие колонии с металлическим блеском, а лактоза-отрицательные — бесцветные, на среде Плоскирева — соответственно красные с жёлтым оттенком или бесцветные. На КА могут давать полный гемолиз.
Шигеллыотносятся к роду Shigella. Являются возбудителями дизентерии. Род включает в себя четыре вида:
1) Sh. disenteriae; (внутри вида делятся на 12 сероваров; один из них – шигелла Григорьева—Шига);
2) Sh. flexneri; (делится на 6 сероваров);
3) Sh. boydii; (делится на 18 сероваров);
4) Sh. sonnei; (в антигенном отношении вид однороден, внутри вида выделяют ферментовары, фаговары, колециновары).
Шигеллы имеют вид палочек без жгутиков, с закругленными концами размером 2–3 на 0,5–0,7 мкм. Не образуют спор и капсул. Шигеллы плохоустойчивы к воздействию физических, химических и биологических факторов окружающей среды. В воде, почве, пищевых продуктах, на предметах, посуде, овощах, фруктах шигеллы живут в течение 5–14 дней. При температуре 60 °С шигеллы гибнут через 10–20 минут, при 100 °С — мгновенно. Прямой солнечный свет убивают шигелл в течение 30 минут. При отсутствии солнечного света, повышенной влажности и умеренной температуре шигеллы сохраняют жизнеспособность в почве до 3 месяцев. В желудочном соке шигеллы могут выживать лишь несколько минут. В пробах кала шигеллы погибают от действия кислой реакции среды и бактерий-антагонистов через 6–10 часов. В высушенном или замороженном кале шигеллы жизнеспособны в течение нескольких месяцев.
Шигеллы попадают в толстый кишечник. Прикрепляются к рецепторам мембран колоноцитов и проникают внутрь с помощью белка наружной мембраны. Гибель клеток приводит к образованию эрозий и язв, окруженных перифокальным воспалением.
Род сальмонеллы(лат. Salmonella) входит в семейство энтеробактерии(лат. Enterobacteriaceae), порядок энтеробактерии (лат. Enterobacteriales), класс гамма-протеобактерии (лат. γ proteobacteria), тип протеобактерии (лат. Proteobacteria), царство бактерии.
Подвид Salmonella enterica enterica включает следующие серогруппы:
A (наиболее известен серотип paratyphi A)
B (серотипы: typhimurium, agona, derby, heidelberg, paratyphi B и др.)
С (серотипы: bareilly, choleraesuis, infantis, virchow и др.)
D (серотипы: dublin, enteritidis, typhi и др.)
E (наиболее известен серотип anatum)
Сальмонеллы — палочкообразные с закругленными краями, грамотрицательные, не образующие споры и капсулы, в основном подвижные бактерии, имеющие диаметр от 0,7 до 1,5 мкм и длину от 2 до 5 мкм и распределенные по всей поверхности жгутиками.
Посев холеры проводят на жидкие среды обогащения, щелочной МПА, элективные и дифференциально-диагностические среды (например, TCBS-arap). Изучают рост на первой среде накопления и выполняют высев на щелочной агар и вторую среду накопления (что повышает высевае-мость возбудителя). Если на первом этапе при исследовании нативного материала ускоренными методами получают положительные результаты, пересев на вторую среду накопления не проводят. Подозрительные колонии пересевают для выделения чистых культур. Затем определяют морфологические, биохимические свойства и антигенную структуру холеры с помощью агглютинирующих О-, OR-, Инаба- и Огава-антисывороток. Важное диагностическое значение имеет типирование с помощью холерных диагностических бактериофагов. Все V. cholerae лизируются бактериофагом IV группы, а вибрионы биовара Эль-Тор — фагами группы V.
- Для ускоренной диагностики холеры применяют иммунолюминесцептный и иммобилизационный методы и РАГА с диагностикумом. Нецелесообразно проводить бактериоскопию мазков и препаратов методом «висячей капли» из нативного материала.
- Для ускоренной биохимической идентификации возбудителя холеры предложен набор СИБ из 13 тестов (оксида-за, индол, лактоза, глюкоза, сахароза, манноза, арабиноза, маннит, инозит, аргинин, орнитин, лизин), дифференцирующий от представителей семейства Enterobacteriaceae, бактерий родов Plesiomonas, Aeromunas и др.
- При выделении Vibrio cholerae группы, отличной от 01, возбудитель необходимо типировать с помощью других антисывороток. При выделении таких бактерий от больного с диареей обязательным считают проведение всего объёма исследований дли диагностики холеры.
- Определение AT в крови больных холерой носит вспомогательный характер. Их выявляют в РА, а также путём обнаружения вибриоцидных AT и антитоксинов.
Дата добавления: 2016-07-29 ; просмотров: 5828 | Нарушение авторских прав
источник
Микроскопическое исследование нативных и фиксированных окрашенных препаратов мокроты позволяет подробно изучить ее клеточный состав, и известной степени отражающий характер патологического процесса в легких и бронхах, его активность, выявить различные волокнистые и кристаллические образования, также имеющие важное диагностическое значение, и, наконец, ориентировочно оценить состояние микробной флоры дыхательных путей (бактериоскопия).
При микроскопии используют нативные и окрашенные препараты мокроты. Для изучения микробной флоры (бактериоскопии) мазки мокроты обычно окрашивают по Романовскому-Гимзе, по Граму, а для выявления микобактерий туберкулеза но Цилю-Нильсену.
Из клеточных элементов, которые можно обнаружить в мокроте больных пневмонией, диагностическое значение имеют эпителиальные клетки, альвеолярные макрофаги, лейкоциты и эритроциты.
Эпителиальные клетки. Плоский эпителий из полости рта, носоглотки, голосовых складок и надгортанника диагностического значения не имеет, хотя обнаружение большого количества клеток плоского эпителия, как правило, свидетельствует о низком качестве образца мокроты, доставленного в лабораторию и содержащего значительную примесь слюны.
У больных пневмониями мокрота считается пригодной к исследованию, если при микроскопии с малым увеличением количество эпителиальных клеток не превышает 10 в поле зрения. Большее количество эпителиальных клеток указывает на недопустимое преобладание в биологическом образце содержимого ротоглотки.
Альвеолярные макрофаги, которые в незначительном количестве также можно обнаружить в любой мокроте, представляют собой крупные клетки ретикулогистиоцитарного происхождения с эксцентрически расположенным крупным ядром и обильными включениями в цитоплазме. Эти включения могут состоять из поглощенных макрофагами мельчайших частиц пыли (пылевые клетки), лейкоцитов и т.п. Количество альвеолярных макрофагов увеличивается при воспалительных процессах в легочной паренхиме и дыхательных путях, в том числе при пневмониях.
Клетки цилиндрического мерцательного эпителия выстилают слизистую оболочку гортани, трахеи и бронхов. Они имеют вид удлиненных клеток, расширенных с одного конца, где расположено ядро и реснички. Клетки цилиндрического мерцательного эпителия обнаруживаются в любой мокроте, однако их увеличение свидетельствует о повреждении слизистой бронхов и трахеи (острый и хронический бронхит, бронхоэктазы, трахеит, ларингит).
Лейкоциты в небольшом количестве (2-5 в поле зрения) обнаруживаются в любой мокроте. При воспалении ткани легкого или слизистой бронхов и трахеи, особенно при нагноительных процессах (гангрена, абсцесс легкого, бронхоэктазы) их количество значительно увеличивается.
При окраске препаратов мокроты по Романовскому-Гимзе удается дифференцировать отдельные лейкоциты, что имеет иногда важное диагностическое значение. Так, при выраженном воспалении легочной ткани или слизистой бронхов увеличивается как общее число нейтрофильных лейкоцитов, так и количество их дегенеративных форм с фрагментацией ядер и разрушением цитоплазмы.
Увеличение числа дегенеративных форм лейкоцитов является важнейшим признаком активности воспалительного процесса и более тяжелого течения заболевания.
Эритроциты. Единичные эритроциты можно обнаружить практически и любой мокроте. Значительное их увеличение наблюдается при нарушении сосудистой проницаемости у больных пневмониями, при разрушении ткани легкого или бронхов, застое в малом круге кровообращения, инфаркте легкого и т.д. В большом количестве эритроциты в мокроте обнаруживаются при кровохарканье любого генеза.
Эластические волокна. Следует упомянуть также еще об одном элементе мокроты пластических волокнах, которые появляются в мокроте при деструкции легочной ткани (абсцесс легкого, туберкулез, распадающийся рак легкого и др.). Эластические волокна представлены в мокроте в виде тонких двухконтурных, извитых нитей с дихотомическим делением на концах. Появление эластических волокон в мокроте у больных с тяжелым течением пневмонии свидетельствует о возникновении одного из осложнений заболевания — абсцедировании ткани легкого. В ряде случаев при формировании абсцесса легкого эластические волокна в мокроте можно обнаружить даже несколько раньше, чем соответствующие рентгенологические изменения.
Нередко при крупозной пневмонии, туберкулезе, актиномикозе, фибринозном бронхите в препаратах мокроты можно обнаружить тонкие волокна фибрина.
Признаками активного воспалительного процесса в легких являются:
- характер мокроты (слизисто-гнойная или гнойная);
- увеличение количества нейтрофилов в мокроте, в том числе их дегенеративных форм;
- увеличение количества альвеолярных макрофагов (от единичных скоплений из нескольких клеток в поле зрения и больше);
Появление в мокроте эластических волокон свидетельствует о деструкции легочной ткани и формировании абсцесса легкого.
Окончательные выводы о наличии и степени активности воспаления и деструкции легочной ткани формируются только при их сопоставлении с клинической картиной заболевания и результатами других лабораторных и инструментальных методов исследования.
[1], [2], [3], [4], [5], [6]
Микроскопия мазков мокроты, окрашенных по Граму, и изучение микробной флоры (бактериоскопия) у части больных пневмонией позволяет ориентировочно установить наиболее вероятного возбудителя легочной инфекции. Этот простой метод экспресс-диагностики возбудителя недостаточно точен и должен использоваться только в комплексе с другими (микробиологическими, иммунологическими) методами исследования мокроты. Иммерсионная микроскопия окрашенных мазков мокроты иногда бывает весьма полезной для экстренного подбора и назначения адекватной антибактериальной терапии. Правда, следует иметь в виду возможность обсеменения бронхиального содержимого микрофлорой верхних дыхательных путей и ротовой полости, особенно при неправильном сборе мокроты.
Поэтому мокроту считают пригодной для дальнейшего исследования (бактериоскопии и микробиологического исследования) только в том случае, если она удовлетворяет следующим условиям:
- при окраске по Грамму в мокроте выявляется большое количество нейтрофилов (более 25 в поле зрения при малом увеличении микроскопа);
- количество эпителиальных клеток, больше характерных для содержимого ротоглотки, не превышает 10;
- в препарате имеется преобладание микроорганизмов одного морфологического типа.
При окраске по Граму в мазке мокроты иногда можно достаточно хорошо идентифицировать грамположительные пневмококки, стрептококки, стафилококки и группу грамотрицательных бактерий — клебсиеллу, палочку Пфейффера, кишечную палочку и др. При этом грамположительные бактерии приобретают синий цвет, а грамотрицательные — красный.
Бактериальные возбудители пневмоний
- Пневмококки Streptococcus pneumoniae.
- Стрептококки Streptococcus pyogenes, Streptococcus viridans.
- Стафилококки: Staphylococcus aureus, Staphylococcus haemolyticus.
- Клебсиеллы (Klebsiella pneumoniae)
- Гемофильная палочка (Пфейфера) Haemophilius influenzae
- Синегнойная палочка (Pseudomonas aeruginosa)
- Легионелпа
- Кишечная палочка (Escherichia coli)
Предварительная бактериоскопия мокроты является наиболее простым способом верификации возбудителя пневмонии и имеет определенное значение для выбора оптимальной терапии антибиотиками. Например, при обнаружении в мазках, окрашенных по Грамму, громположительных диплококков (пневмококков) или стафилококков вместо антибиотиков широкого спектра действия, увеличивающих риск селекции и распространения аитибиотикорезистентных микроорганизмов, возможно назначение целенаправленной терапии, активной в отношении пневмококков или стафилококков. В других случаях выявление преобладающей в мазках грамотрицательной флоры может указывать па то, что возбудителем пневмонии являются грамотрицательные энтеробактерии (клебсиелла, кишечная палочка и т.п.), что требует назначения соответствующей целенаправленной терапии.
Правда, ориентировочное заключение о вероятном возбудителе легочной инфекции при микроскопии можно сделать только па основании значительного увеличения бактерий в мокроте, в концентрации 10 6 — 10 7 м.к./мл и больше (Л.Л. Вишнякова). Низкие концентрации микроорганизмов ( 3 м.к./мл) характерны для сопутствующей микрофлоры. Если концентрация микробных тел колеблется от 10 4 до 10 6 м.к./мл, это не исключает этиологическую роль данного микроорганизма в возникновении легочной инфекции, но и не доказывает ее.
Следует также помнить, что «атипичные» внутриклеточные возбудители (микоплазма, легионелла, хламидии, риккетсии) не окрашиваются по Грамму. В этих случаях подозрение на наличие «атипичной» инфекции может возникнуть, если в мазках мокроты обнаруживают диссоциацию между большим количеством нейтрофилов и чрезвычайно малым количеством микробных клеток.
К сожалению, метод бактериоскопии и целом отличается достаточно низкой чувствительностью и специфичностью. Hе предсказательная ценность даже в отношении хорошо визуализируемых пневмококков едва достигает 50%. Это означает, что в половине случаев метод дает ложноположительные результаты. Это связано с несколькими причинами, одной из которых является то, что около 1/3 больных до госпитализации уже получали антибиотики, что существенно снижает результативность бактериоскопии мокроты. Кроме того, даже в случае положительных результатов исследования, указывающих на достаточно высокую концентрацию в мазке «типичных» бактериальных возбудителей (например, пневмококков), нельзя полностью исключить наличие ко-инфекции «атипичными» внутриклеточными возбудителями (микоплазмой, хламидиями, легионеллой).
Метод бактериоскопии мазков мокроты, окрашенных по Грамму, в отдельных случаях помогает верифицировать возбудителя пневмонии, хотя в целом отличается весьма низкой предсказательной ценностью. «Атипичные» внутриклеточные возбудители (микоплазма, легионелла, хламидии, риккетсии) вообще не верифицируются методом бактериоскопии, так как не окрашиваются по Грамму.
Следует упомянуть о возможности микроскопической диагностики у больных пневмониями грибкового поражения легких. Наиболее актуальным для больных, получающих длительное лечение антибиотиками широкого спектра действия, является обнаружение при микроскопии нативных или окрашенных препаратов мокроты Candida albicans в виде дрожжеподобных клеток и ветвистого мицелия. Они свидетельствуют об изменении микрофлоры трахеобронхиального содержимого, возникающем под влиянием лечения антибиотиками, что требует существенной коррекции терапии.
В некоторых случаях у больных пневмониями возникает необходимость дифференцировать имеющееся поражение легких с туберкулезом. С этой целью используют окраску мазка мокроты по Цилю-Нильсену, что в отдельных случаях позволяет идентифицировать микобактерии туберкулеза, хотя отрицательный результат такого исследования не означает отсутствия у больного туберкулеза. При окраске мокроты по Цилю-Нильсену микобактерии туберкулеза окрашиваются в красный цвет, а все остальные элементы мокроты — в синий. Туберкулезные микобактерии имеют вид топких, прямых или слегка изогнутых палочек различной длины с отдельными утолщениями. Они располагаются в препарате группами или поодиночке. Диагностическое значение имеет обнаружение в препарате даже единичных микобактерий туберкулеза.
Для повышения эффективности микроскопического выявления микобактерий туберкулеза используют ряд дополнительных методов. Наиболее распространенным из них является так называемый метод флотации, при котором гомогенизированную мокроту взбалтывают с толуолом, ксилолом или бензином, капли которых, всплывая, захватывают микобактерии. После отстаивания мокроты верхний слой пипеткой наносят на предметное стекло. Затем препарат фиксируют и окрашивают по Цилю-Нильсену. Существуют и другие методы накопления (электрофорез) и микроскопии бактерий туберкулеза (люминесцентная микроскопия).
Микроскопическое исследование (анализ) мокроты позволяет обнаружить слизь, клеточные элементы, волокнистые и кристаллические образования, грибы, бактерии и паразиты.
- Альвеолярные макрофаги — клетки ретикулогистиоцитарного происхождения. Большое количество макрофагов в мокроте выявляют при хронических процессах и на стадии разрешения острых процессов в бронхолёгочной системе. Альвеолярные макрофаги, содержащие гемосидерин («клетки сердечных пороков»), выявляют при инфаркте лёгкого, кровоизлиянии, застое в малом кругу кровообращения. Макрофаги с липидными каплями — признак обструктивного процесса в бронхах и бронхиолах.
- Ксантомные клетки (жировые макрофаги) обнаруживают при абсцессе, актиномикозе, эхинококкозе лёгких.
- Клетки цилиндрического мерцательного эпителия — клетки слизистой оболочки гортани, трахеи и бронхов; их обнаруживают при бронхитах, трахеитах, бронхиальной астме, злокачественных новообразованиях лёгких.
- Плоский эпителий обнаруживают при попадании в мокроту слюны, он не имеет диагностического значения.
- Лейкоциты в том или ином количестве присутствуют в любой мокроте. Большое количество нейтрофилов выявляют в слизисто-гнойной и гнойной мокроте. Эозинофилами богата мокрота при бронхиальной астме, эозинофильной пневмонии, глистных поражениях лёгких, инфаркте лёгкого. Эозинофилы могут появиться в мокроте при туберкулёзе и раке лёгкого. Лимфоциты в большом количестве обнаруживают при коклюше и, реже, при туберкулёзе.
- Эритроциты. Обнаружение единичных эритроцитов в мокроте диагностического значения не имеет. При наличии свежей крови в мокроте определяют неизменённые эритроциты, если же с мокротой отходит кровь, находившаяся в дыхательных путях в течение длительного времени, обнаруживают выщелоченные эритроциты.
- Клетки злокачественных опухолей обнаруживают при злокачественных новообразованиях.
- Эластические волокна появляются при распаде ткани лёгкого, который сопровождается разрушением эпителиального слоя и освобождением эластических волокон; их обнаруживают при туберкулёзе, абсцессе, эхинококкозе, новообразованиях в лёгких.
- Коралловидные волокна выявляют при хронических заболеваниях лёгких, таких как кавернозный туберкулёз.
- Обызвествлённые эластические волокна — эластические волокна, пропитанные солями кальция. Обнаружение их в мокроте характерно для распада туберкулёзного петрификата.
- Спирали Куршмана образуются при спастическом состоянии бронхов и наличии в них слизи. Во время кашлевого толчка вязкая слизь выбрасывается в просвет более крупного бронха, закручиваясь спиралью. Спирали Куршмана появляются при бронхиальной астме, бронхитах, опухолях лёгких, сдавливающих бронхи.
- Кристаллы Шарко-Лейдена — продукты распада эозинофилов. Обычно появляются в мокроте, содержащей эозинофилы; характерны для бронхиальной астмы, аллергических состояний, эозинофильных инфильтратов в лёгких, лёгочной двуустки.
- Кристаллы холестерина появляются при абсцессе, эхинококкозе лёгкого, новообразованиях в лёгких.
- Кристаллы гематоидина характерны для абсцесса и гангрены лёгкого.
- Друзы актиномицета выявляют при актиномикозе лёгких.
- Элементы эхинококка появляются при эхинококкозе лёгких.
- Пробки Дитриха — комочки желтовато-серого цвета, имеющие неприятный запах. Состоят из детрита, бактерий, жирных кислот, капелек жира. Они характерны для абсцесса лёгкого и бронхоэктатической болезни.
- Тетрада Эрлиха состоит из четырех элементов: обызвествлённого детрита, обызвествлённых эластических волокон, кристаллов холестерина и микобактерий туберкулёза. Появляется при распаде обызвествлённого первичного туберкулёзного очага.
Мицелий и почкующиеся клетки грибов появляются при грибковых поражениях бронхолёгочной системы.
Пневмоцисты появляются при пневмоцистной пневмонии.
Сферулы грибов выявляют при кокцидиоидомикозе лёгких.
Личинки аскарид выявляют при аскаридозе.
Личинки кишечной угрицы выявляются при стронгилоидозе.
Яйца лёгочной двуустки выявляются при парагонимозе.
Элементы, обнаруживаемые в мокроте при бронхиальной астме. При бронхиальной астме обычно отделяется малое количество слизистой, вязкой мокроты. Макроскопически можно увидеть спирали Куршмана. При микроскопическом исследовании характерно наличие эозинофилов, цилиндрического эпителия, встречаются кристаллы Шарко-Лейдена.
источник
Показания к проведению исследования: воспалительные заболевания нижних отделов дыхательных путей. Диагностика инфекционных заболеваний: пневмококковой инфекции, сибирской язвы, чумы, туберкулеза.
Взятие исследуемого материала: перед сбором мокроты больному предлагают почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой. Предпочтительным является исследование утренней порции мокроты. Мокроту собирают в стерильную широкогорлую склянку. Удобно использовать для этих целей «карманные плевательницы». Так как маленькие дети не умеют отхаркивать мокроту и заглатывают её, для диагностики туберкулеза, у них исследуют промывные воды желудка.
Исследование промывных вод бронхов проводят при отсутствии или скудности мокроты. Это связано не только с технической сложностью взятия этого вида материала, но и с меньшей диагностической ценностью результата, из-за его значительного разбавления (концентрация микроорганизмов в промывных водах в 10-1000 раз меньше чем в мокроте). Простейший метод взятия трахеобронхиального смыва следующий: гортанным шприцем с помощью аппарата Боброва в трахею вводят около 10 мл стерильного физиологического раствора, и после возникновения кашля собирают откашлянный трахеобронхиальный смыв. У маленьких детей через катетер вводят в трахею 5-10 мл физиологического раствора и затем отсасывают трахеобронхиальный смыв [9].
Бронхиальные смывы могут быть получены при бронхоскопии. В этом случае не рекомендуется вводить в бронх более 5 мл физиологического раствора.
Наиболее достоверные результаты достигаются при взятии материала непосредственно из очага инфильтрации или абсцесса с помощью проводимой под рентгенологическим контролем трансторокальной пункции. По мнению Л.А.Вишняковой и соавт. [9], «тяжесть данной манипуляции компенсируется значительно более точным определением этиологии и этиотропной терапии заболевания».
Методы исследования. Для приготовления мазка из мокроты, распределенной тонким слоем по дну чашки Петри, с помощью двух игл или пинцета выбирают слизистые либо гнойные комочки и переносят их на середину предметного стекла. Затем берут второе стекло и накладывают поверх первого. Комочки мокроты растирают между двумя стеклами до тех пор, пока не получится достаточно тонкий мазок. При этом, во избежание инфицирования рук работающего, и на первом и на втором стеклах мазки не должны занимать более 1/2-2/3 поверхности. Препараты высушивают и фиксируют над пламенем. Один из мазков окрашивают по Граму, второй микроскопируют неокрашенным, для выявления друз актиномицетов или мицелия грибов.
При микроскопии мазка необходимо обратить внимание на наличие и характер клеточных элементов. Хотя их оценка — задача, решаемая при клиническом анализе мокроты, но их выявление позволяет бактериологу проверить правильность взятия материала и составить представление о характере патологических изменений. Для воспалительных процессов в нижних отделах дыхательного тракта характерно наличие гранулоцитов. Присутствие в материале большого количества эпителиальных клеток, особенно в сочетании с отсутствием гранулоцитов, свидетельствует о том, что материал был взят неправильно (с примесью слюны). В этом случае исследование следует повторить. Для острой инфекции характерно наличие в мокроте 1-2 видов бактерий, расположенных вблизи гранулоцитов. Микроорганизмы — контаминанты мокроты, попавшие в нее из ротовой полости, напротив, чаще расположены вблизи эпителиальных клеток.
Микроскопической оценке правильности взятия материала многие микробиологи придают чрезвычайно большое значение. Американским руководством по клинической микробиологии [81] рекомендовано применение для этих целей одной из специально разработанных количественных шкал оценки. Использование каждой из них предполагает микроскопию окрашенного по Граму мазка из гнойной части мокроты под малым увеличением (объектив х10). При использовании шкалы Barlett просматривают 20-30 полей зрения, давая каждому оценку путем суммирования баллов из таблицы 7. Затем рассчитывают средний балл: складывают все начисленные баллы и делят сумму на количество просмотренных полей. Если полученный результат равен 0 или менее вероятность воспаления мала или мокрота вероятно контаминирована в ротовой полости. Такие образцы не подлежат бактериологическому исследованию, и взятие мокроты должно быть повторено.
При оценке мокроты по Murray Washington принадлежность образца к определенной группе устанавливается по таблице 8. При этом бактериологическому исследованию подлежат только образцы принадлежащие к 4-5 группе.
Схема Barlett оценки правильности взятия мокроты
(цитируется по [81])
| Тип клеток и их количество в поле зрения при микроскопии с объективом х10 | Балл | |
| Нейтрофилы | 25 | +2 |
| Присутствие слизи | +1 | |
| Эпителиальные клетки | 10-25 | -1 |
| >25 | -2 |
Схема Murray Washington оценки правильности взятия мокроты
(цитируется по [81])
| Группа | Количество в поле зрения при микроскопии с объективом х10 | |||||||||||||||||||||||
| Эпителиальных клеток | Лейкоцитов | |||||||||||||||||||||||
| 10-25 | ||||||||||||||||||||||||
| 10-25 | ||||||||||||||||||||||||
| о С. Промывные воды бронхов засевают аналогичным образом, но без предварительной отмывки гнойных комочков. В основе количественного метода лежит высев на плотные питательные среды разведений, приготовленных из гомогенизата мокроты. Для этого к 1 мл мокроты добавляют 9 мл питательного бульона или 2% пептонной воды и гомогенизируют в банке со стеклянными бусами 20 минут[1][5] или путем растирания в ступке с кварцевым песком (в этом случае бульон добавляют небольшими порциями в процессе обработки). Приготовленный гомогенат мокроты принимается за разведение материала 10 -1 . Из него готовят ряд серийных десятикратных разведений до 10 -7 в бульоне или в пептонной воде. Каждое последовательное разведение готовят новой пипеткой! Из “нечетных” разведений (10 -1 ;10 -3 ; 10 -5 ; 10 -7 ) засевают по 0,1 мл на чашки с 5% кровяным агаром и шоколадным агаром. Посевы рекомендуется инкубировать в эксикаторе “со свечой” при 37 о С в течение суток. Дополнительно можно провести посев на среды Эндо, Сабуро, ЖСА из исходного разведения 10 -1 . Количество микроорганизмов определяют в максимальном разведении, в котором еще удалось обнаружить рост микроорганизмов. Сопоставление эффективности количественного и качественного методов исследования мокроты было проведено А.Н.Калюк и К.Н.Полянской [23]. По их мнению, оба метода достаточно информативны, а полученные с их помощью результаты тесно коррелируют друг с другом. В то же время исследование мокроты количественным методом без предварительной отмывки гнойных комочков снижает информативность исследования и может способствовать увеличению выделения пневмококков, вегетирующих на слизистых оболочках носоглотки. На необходимость отмывки мокроты указывают и Т.С.Агеева и соавт. [1], однако по их данным, напротив, рост пневмококков и гемофильных палочек, при посеве не отмытой мокроты ингибируется сопутствующей микрофлорой. Для гомогенизации мокроты могут быть использованы химические методы. К ним относятся обработка мокроты муколитиками (ацетилцистеин, мукосальвин и др.) или ферментами (трипсин, хемотрипсин, панкреатин). По мнению Л.А.Вишняковой и соавт. [9], наиболее эффективным является применение ацетилцистеина. При этом в неметаллическом сосуде с помощью пипетки с грушей в течение 1-2 минут тщательно перемешивают равные объемы мокроты и 0,5% раствора ацетилцистеина. Применение ацетилцистеина особенно целесообразно для выделения Haemophilus influenzae, так как позволяет снизить ингибирующее действие муцина на гемофильные палочки. Ферменты могут оказывать повреждающее действие на микроорганизмы, кроме того процесс гомогенизации мокроты с их помощью наиболее продолжителен по сравнению с другими химическими и механическими методами. Описаны многочисленные модификации количественных методов посева мокроты. Ряд авторов использовал для этой цели различные модификации посева петлей на сектора с использованием калиброванной петли на 0,01 мл по аналогии с методом Gould, широко используемым при исследовании мочи [1, 58]. В.В.Акользин [2] предложил использовать калиброванные петли не только для посева, но и для приготовления разведений. Однако все эти методы не получили широкого распространения. Оценка диагностической значимости полученных результатов. Оценка результатов бактериологического исследования проводится на основании сочетанного анализа информации о видовом составе микрофлоры (по данным бактериоскопического и бактериологического исследований), численности отдельных видов микроорганизмов, стабильности их выделения во времени, клинических данных и результатов терапии. В целом лидирующее положение в этиологии внебольничных пневмоний занимают пневмококки. Например, по данным, Л.А.Вишняковой и соавт. [10] 97,1% пневмоний у детей в возрасте от 1 месяца до 14 лет имели пневмококковую этиологию. При оценке результатов бактериологического исследования необходимо принимать во внимание господствующее значение определенных видов микроорганизмов в типичных клинических ситуациях. Так, крупозная пневмония вызывается пневмококками; лобарная пневмония чаще всего пневмококками, клебсиеллами, стафилококками; очаговые пневмонии — пневмококками, гемофильными палочками, энтеробактериями, синегнойными палочками [18]. Первичная атипичная пневмония чаще всего обусловлена микоплазмами, легионеллами или хламидиями; пневмония на фоне хронического бронхита — гемофильной палочкой, стрептококками; пневмония на фоне гриппа — стафилококками, пневмококками, гемофильными палочками; аспирационная пневмония — энтеробактериями, синегнойной палочкой, анаэробами; пневмония на фоне иммунодефицита — энтеробактериями, стафилококками [45]. Госпитальная пневмония у новорожденных (0-7 дней) чаще всего связана со Streptococcus spp., Escherichia coli, реже: Staphylococcus aureus, Chlamydia trachomatis, Pseudomonas spp. [70]. Острые бронхиты и бронхиолиты, вызываются, как правило, вирусами или микоплазмами, но со 2-3 дня заболевания осложнятся наслоением бактериальной инфекции (чаще всего обусловленной пневмококками или гемофильной палочкой) [5]. Бронхолегочная инфекция у больных муковисцидозом наиболее часто вызывается синегнойной палочкой [24]. Господствующая роль в этиологии острых инфекционных деструкций легких принадлежит несорообразующим анаэробам, стафилококкам [54]. Для ориентировочной оценки численности микроорганизмов в мокроте и их этиологической роли используется следующая схема: I — очень скудный рост — рост единичных колоний (до 10); II — скудный рост — рост 10 — 25 колоний; III — умеренный рост — рост множества сосчитываемых колоний (не менее 50); IV — обильный рост — сплошной рост не сосчитываемых колоний. I и II степени роста свидетельствуют в пользу загрязнения или носительства, а III и IV — в пользу этиологической значимости данного микроорганизма [43]. Более сложную схему оценки этиологии инфекционного процесса предлагают Л.А.Вишнякова и соавт. [9]. Её применение подразумевает выполнение лабораторией количественного посева мокроты. Согласно данной схемы этиология острой пневмонии может быть определена на основании одного из следующих критериев: Обнаружение монокультуры S.pneumoniae в крови или в плевральном эксудате. Выделение пневмококка или гемофильной палочки в количестве 10 6 кл./мл в мокроте или 10 4 — в трахеобронхиальном смыве. Выявление в течение заболевания при помощи реакции непрямой иммунофлуоресценции 4-кратного или более значительного изменения первоначального титра антипневмококковых антител или титра 1:320 для детей 0-3 лет или 1:640-1:1280 для взрослых больных. При обследовании больных острой пневмонией на поздних сроках болезни и на фоне этиотропной антибактериальной терапии обнаружение в мокроте или трахеобронхиальных смывах низких концентраций (менее 10 6 или 10 4 кл./мл) пневмококка с последующим снижением их не менее чем в 100 раз или при одновременном выявлении антипневмококковых антител в титре 1:640. При возникновении вторичного инфекционного процесса выделение в 2-3 последующих исследованиях с интервалом 2-5 дней одного и того же вида условно-патогенных бактерий в концентрации 10 6 кл./мл в мокроте или 10 4 кл/мл в трахеобронхиальном смыве в сочетании с выявлением местной или системно-иммунологической реакции организма на этот возбудитель. Обнаружение пневмококкового антигена в крови, плевральном эксудате или моче. Этиологию внебольничных пневмоний с помощью стандартных методов лабораторного исследования не удается установить в 30-50% случаев. По мнению А.И.Синопальникова и соавт. [59], это обусловлено рядом обстоятельств: · примерно у 30% больных пневмонический кашель имеет не продуктивный характер; · часть возбудителей (Mycoplasma pneumoniae, Chlamydia pneumoniae, Legionella pneumoniae и др.) не могут быть обнаружены с помощью рутинных методов (табл. 9); · в ряде случаев трудно правильно отдифференцировать «резидентную» флору и возбудитель; · не всегда удается получить мокроту, пригодную для бактериологического исследования (см. выше); · часть больных получает антибиотики до начала бактериологического обследования. Некоторые специальные методы диагностики заболеваний, обусловленных отдельными пневмотропными микроорганизмами.
В зарубежной практике при диагностике пневмоний часто используется исследование крови. Безусловно, обнаружение возбудителя в крови позволяет наиболее точно судить об этиологии процесса, однако, по данным Л.А.Вишняковой и соавт.[10], исследования крови эффективны лишь в первые 2-3 дня болезни и бывают положительными только у 10-25% больных. Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском: Лучшие изречения: Только сон приблежает студента к концу лекции. А чужой храп его отдаляет. 8752 — 193.124.117.139 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь. Отключите adBlock! источник Анализ мокроты расшифровка — это микроскопическое изучение клеток и их расшифровка. которая позволяет установить активность процесса при хронических болезнях бронхов и легких, диагностировать опухоли легкого. Расшифровка анализа мокроты позволяют выявить различные заболевания. Эозинофилы, составляют до 50-90% всех лейкоцитов, повышенные эозинофилы диагноструют заболевания:
Если количество нейтрофиов более 25 в поле зрения это говорит о наличии в организме инфекционного процесса. Плоский эпителий, более 25 клеток в поле зрения — примесь отделяемого из полости рта. Эластические волокна — Деструкция лёгочной ткани, абсцедирующая пневмония. Спирали Куршмана диагностируют — бронхоспастический синдром, диагностика астмы. Кристаллы Шарко-Лейдена диагностируют — аллергические процессы, бронхиальная астма. Альвеолярные макрофаги — Образец мокроты идет из нижних дыхательных путей. Мокрота выделяется при разнообразных заболеваниях органов дыхания. Анализ мокроты собирать ее лучше утром, перед этим надо прополоскать рот слабым раствором антисептика, затем кипяченой водой. При осмотре отмечают суточное количество мокроты характер, цвет и запах мокроты, ее консистенцию, а также расслоение при стоянии в стеклянной посуде. Анализы мокроты могут содержать:
Повышенное выделение мокроты наблюдается при:
Если увеличение количества мокроты связано с нагноительным процессом в органах дыхания, это является признаком ухудшения состояния больного, если с улучшением дренирования полости, то расценивается как положительный симптом.
Пониженное выделение мокроты наблюдается при:
Зеленоватый Зеленоватый цвет мокроты наблюдается при:
Различные оттенки красного Отделение мокроты с примесью крови наблюдается при:
Ржавый цвет мокроты наблюдается при:
Иногда на цвет мокроты влияет прием некоторых лекарственных препаратов. При аллергии мокрота может быть ярко-оранжевого цвета. Желто-зеленый или грязно-зеленый Желто-зеленый или грязно-зеленый цвет мокроты наблюдается при различной патологии легких в сочетании с желтухой. Черноватый или сероватый Черноватый или сероватый цвет мокроты наблюдается у курящих людей (примесь угольной пыли). Гнилостный запах мокроты наблюдается при:
При вскрытии эхинококковой кисты мокрота приобретает своеобразный фруктовый запах.
Двухслойная мокрота Разделение гнойной мокроты на два слоя наблюдается при абсцессе легкого. Трехслойная Разделение гнилостной мокроты на три слоя – пенистый (верхний), серозный (средний) и гнойный (нижний) – наблюдается при гангрене легкого. Кислую реакцию, как правило, приобретает разложившаяся мокрота. Густая слизистая Выделение густой слизистой мокроты наблюдается при:
Слизисто-гнойная Выделение слизисто-гнойной мокроты наблюдается при:
Выделение гнойной мокроты наблюдается при:
Серозная и серозно-гнойная Выделение серозной и серозно-гнойной мокроты наблюдается при: Кровянистая Выделение кровянистой мокроты наблюдается при:
Альвеольные макрофаги Большое количество альвеольных микрофагов в мокроте наблюдается при хронических патологических процессах в бронхолегочной системе. Жировые макрофаги Наличие в мокроте жировых макрофагов (ксантомных клеток) наблюдается при:
Клетки цилиндрического мерцательного эпителия Наличие в мокроте клеток цилиндрического мерцательного эпителия наблюдается при: Наличие в мокроте плоского эпителия наблюдается при попадании в мокроту слюны. Этот показатель не имеет диагностического значения.
Большое количество эозинофилов в мокроте наблюдается при:
Эластические Наличие эластических волокон в мокроте наблюдается при:
Наличие в мокроте обызвествленных эластических волокон наблюдается при туберкулезе легких. Коралловидные Наличие коралловидных волокон в мокроте наблюдается при кавернозном туберкулезе. Спирали Куршмана Наличие в мокроте спиралей Куршмана наблюдается при:
Кристаллы Шарко – Лейдена Наличие в мокроте кристаллов Шарко -Лейдена – продуктов распада эозинофилов – наблюдается при:
Кристаллы холестерина Наличие в мокроте кристаллов холестерина наблюдается при:
Кристаллы гематодина Наличие в мокроте кристаллов гематодина наблюдается при:
Бактериологический анализ мокроты необходим для уточнения диагноза выбора метода лечения, для определения чувствительности микрофлоры к различным лекарственным средствам, имеет большое значение для выявления микобактерии туберкулеза. Появление кашля с мокротой требует обязательного обращения к врачу. источник Анализ на микрофлору сдают при различных заболеваниях: пневмонии, бронхиальной астме и других патологиях. Исследование мокроты на бак особенно важно, когда человек заболел легочными патологиями. В этом случае ее состав меняется, и в ней в большом количестве присутствуют микроорганизмы, лейкоциты, эритроциты. Анализ на микрофлору позволит врачу оценить клиническую картину, понять, какие процессы локализуются в легких и подобрать лечение для дыхательных путей. Подробная расшифровка норм анализа мокроты важна не только для специалиста, но и для пациента. В стадии диагностирования будет изучен патологический секрет, выделяемый из дыхательных путей с помощью бак посева. В лаборатории на бак изучат: качественный и количественный состав слизи, бактериологические свойства, проанализируют цвет, запах, концентрацию мокроты. Также общий анализ выявит клеточный состав исследуемого материала, присутствие волокон, различных примесей, наличие микроорганизмов, паразитов. В частности на бак, мокроту исследуют при подозрении пневмонии, бронхиальной астме. Подобный общий анализ берут в следующих случаях:
После того как было проведено бактериологическое исследование, врач может поставить диагноз, опираясь на прочие данные: результаты терапевтического обследования, информацию, которую предоставил общий анализ крови, жалобы пациента и т.д. Сбор, взятие мокроты на бак, ведется при следующих патологиях: при подозрении на туберкулез, если у пациента кашель с выделением слизи, новообразования в органах дыхательных путей, при различных инвазиях. Также анализ могут взять при пневмонии, бронхиальной астме, хронических заболеваний или рака легких. В частых случаях именно мокрота при кашле служит показанием к назначению сбора слизи для оценки ее консистенции и наличия микрофлоры. В главном ключе она считается признаком пневмонии и при бронхиальной астме.
Правила сбора мокроты, например, при бронхиальной астме или пневмонии типичны и не должны вызвать затруднений. Сам исследуемый материал бывает вязким слизистым, гнойным, зачастую с примесями крови. Неприятный запах мокроты часто оказывается признаком опухолей, их формированием или распадом. Густая слизь означает обострение патологии. Для сбора материала на исследование нужно подготовить специальную, стерильную емкость. Взятие образца осуществляется во время приступа кашля. Тем не менее, важно соблюдать некоторые правила, чтобы сбор велся без учета вторичных условий. Утром, на голодный желудок нужно прополоскать рот кипяченой водой с добавлением соды. Это правило актуально для того, чтобы в сбор не попала другая бактериальная среда. Если правила сбора на бак будут соблюдены, результат исследования окажется точным. Соответственно в руки специалиста попадет достоверная расшифровка анализов. Чтобы взятие материала прошло легко, а алгоритм изучения слизи не нарушился, рекомендовано:
Готовый материал нужно плотно закрыть крышкой и сразу отнести в лабораторию. Изучение осуществляется не позже 2-х часов с момента получения мокроты. При пневмонии или бронхиальной астме, сбор материала для исследований облегчается за счет проведения ингаляции или перкуссионного массажа. В некоторых случаях применяют катетер. Его вводят непосредственно в трахею, однако эту процедуру обязан осуществлять подготовленный специалист. После того как исследуемый материал оказался в стенах лаборатории, анализ на бак проводится следующим образом. Бактериологическую субстанцию растирают между двумя предметными стеклами. Далее высохший посев мокроты нагревают над огнем и окрашивают, чтобы найти бактерии туберкулеза по методу Циля-Нильсена. Благодаря такому исследованию, определяют лейкоциты, микрофлору и т.д. В частности:
При бронхиальной астме или пневмонии оценивают соотношение клеточного материала эпителия, нейтрофилов, эозинофилов. Также анализ выявит присутствие бактерий в полученном образце. На это укажет высокая концентрация нейтрофилов. О сильном воспалительном процессе при бронхиальной астме или пневмонии свидетельствует завышенный уровень клеток. Увеличенные эозинофилы будут при экзогенной флоре заболевания. Нормальные значения у здорового человека колеблются в диапазоне 10-100мл/сут. Однако анализ не всегда покажет хороший результат. Ниже приведены расшифровки тестов на микрофлору при различных патологиях. Присутствие в мокроте эластичных волокон. Если посев мокроты при исследовании выявил клеточный материал, возможны заболевания: абсцедирующая пневмония, рак легких, туберкулез. Высокое число эозинофилов, от 50 до 90 процентов. Предположительно инвазии или аллергические заболевания. Мокрота с гноем, белая, желто-зеленая, мутная. Патологии: синусит, ринит, бронхиальная астма, пневмония, абсцесс легких. Присутствие крови в мокроте. Опасные предпосылки на тяжелые заболевания: трахеит, коклюш, туберкулез, рак легких, патологии соединительных тканей. Симптомы бронхиальной астмы – это, когда в анализе на микрофлору обнаружены кристаллы Шарко-Лейдена и спирали Куршмана. Если в мокроте присутствуют нейтрофилы (больше 25 единиц), возможно, развивается воспалительное заболевание. Когда исследуемый материал янтарного оттенка, можно вести речь об аллергических болезнях. Вязкая, прозрачная мокрота. Если изучение секрета показало именно такой результат, вероятно, что дыхательные пути поражены вирусной инфекцией. Диагностируются такие патологии как ОРВИ, острый бронхит. В некоторых случаях исследование бактериальной среды оказывается неточным. Это связано с нарушением правил сбора материала или несвоевременной доставкой в лабораторию, а также приемом некоторых лекарственных средств. источник |
| 7488 — 
или читать все.