Меню Рубрики

Как собрать мокроту на атипичные клетки

— заболевания органов дыхания и ССС.

— чистая стеклянная широкогорлая банка из прозрачного стекла, направление.

Последовательность действий:

1. Объяснить правила сбора, получить согласие.

2. Утром почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой.

3. Откашлять и собрать в банку 3-5 мл мокроты, закрыть крышкой.

5. Доставить в клиническую лабораторию в течение 2 часов.

— Для определения суточного количества мокроту собирают в течение суток в одну большую посуду и хранят в прохладном месте.

— Мокроту рекомендуется собирать в специально оборудованном помещении у открытого окна или форточки.

— Не допускается загрязнение банки с наружной стороны.

Оценивается: консистенция (вязкая, студенистая, стекловидная), цвет (прозрачная, гнойная, серая, кровянистая), клеточный состав (наличие лейкоцитов, эритроцитов, эпителия, дополнительных включений.

— выявления возбудителя заболевания и определение чувствительности его к антибиотикам.

— стерильная пробирка или банка с крышкой (заказывается в бак. лаборатории), направление.

Последовательность действий:

1. Объяснить цель и суть сбора мокроты, получить согласие.

2. Утром натощак после туалета полости рта и до назначения а/б.

3. Пробирку или банку поднести ко рту, открыть ее, не касаясь краев посуды руками и ртом откашлять мокроту и сразу закрыть крышкой, соблюдая стерильность.

4. Отправить анализ в баклабораторию в течение 2 часов в контейнере спецтранспортом. Примечание: стерильность посуды сохраняется в течение 3 суток.

Сбор мокроты на МБТ (микобактерии туберкулеза):

Порядок сбора мокроты:

1. Объяснить суть и цель назначения, получить согласие.

3. Утром натощак после туалета полости рта после нескольких глубоких вдохов откашлять мокроту в чистую сухую банку (15-20 мл), закрыть крышкой. Если мокроты мало, то ее можно собирать в течение 1-3 суток, сохраняя в прохладном месте.

4. Доставить анализ в клиническую лабораторию.

Примечание: Если назначается посев мокроты на ВК, то мокрота собирается в стерильную посуду в течение 1 суток, храня в прохладном месте, и доставляется в баклабораторию.

Сбор мокроты на атипичные клетки:

— диагностическая (диагностика, исключение онкопатологии).

Последовательность сбора:

1. Объяснить пациенту правила сбора мокроты.

2. Утром после туалета полости рта собрать мокроту в чистую сухую банку.

4. Доставить в цитологическую лабораторию сразу, т.к. атипичные клетки быстро разрушаются.

Правила пользования карманной плевательницей:

Плевательницей пользуются пациенты, выделяющие мокроту.

Запрещается:

— сплевывать мокроту на улице, в помещении, в платок, полотенце;

Плевательница дезинфицируются по мере заполнения, но не реже 1 раза в сутки. При большом количестве мокроты – после каждого использования.

Для обеззараживания мокроты: залить 10% хлорной известью в соотношении 1:1 на 60 мин или засыпать сухой хлорной известью из расчета 200 г/л мокроты на 60 мин.

При выделении или подозрении на ВК — 10% хлорная известь на 240 мин или сухая хлорная известь на 240 мин в тех же соотношениях; 5% хлорамином на 240 мин.

После обеззараживания мокроту сливают в канализацию, а посуду, в которой обеззараживалась мокрота, моют обычным способом с последующей дезинфекцией.

Обеззараживание карманных плевательниц: кипячение в 2% растворе соды 15 мин или в 3% хлорамин на 60 мин.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: Студент — человек, постоянно откладывающий неизбежность. 10422 — | 7292 — или читать все.

193.124.117.139 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.

Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)

очень нужно

источник

Цель: обеспечить достоверность диагностики заболеваний дыхательной системы (рака лёгкого).

Оснащение: чистый одноразовый контейнер, направление в лабораторию.

Показания:заболевания органов дыхания.

1. Предупредить и объснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования.

2. Обеспечить лабораторной посудой и направлением.

3. Обучить технике сбора мокроты. Предупредить, что собирают мокроту только при кашле, а не при отхаркивании.

4. Объснить, что необходимо почистить зубы утром и прополоскать рот кипяченой водой непосредственно перед сбором мокроты .

5. Открыть плевательницу. Откашлять и собрать мокроту в чистый одноразовый контейнер. Закрыть крышку. Отдать медсестре.

6. Приклеить направление и доставить в клиническую лабораторию как можно скорее.

7. Мокроту отправляют в лаборатоию сразу, так как атипичные клетки быстро разрушаютя.

Сбор мокроты на чувствительность к антибиотикам

Цель: подбор эффективного антибиотикка

Оснащение: стерильный одноразовый контейнер, направление в лабораторию.

Показания:заболевания органов дыхания.

1. Предупредить и объснить пациенту смысл и необходимость предстоящего

2. Накануне исследования необходимо получить из бактериологической лаборатории

стерильный одноразовый контейнер

3. Объяснить, что сбор мокроты целесообразно проводить до начала

4. Оформите направление на исследование.

5. Объясните пациенту, что мокроту собирают утром натощак.

6. Объясните, что необходимо перед сбором мокроты почистить зубы и

прополоскать рот кипяченой водой непосредственно перед сбором.

7. Первая порция мокроты не собирается в контейнер, а сплёвывается.

8. Последующая порция мокроты собирается в стерильный одноразовый контейнер.

9. Собранную мокроту вместе с направлением доставьте в бактериологическую

Взятие мокроты на микобактерии туберкулеза

Цель: обеспечить достоверность диагностики заболеваний органов дыхания Показания:заболевания органов дыхания, подозрение на туберкулез.

Оснащение: 3 стерильные одноразовые контейнера, с крышкой, направление в

1. Установить доверительные отношения с пациентом.

2. Надеть спецодежду – халат, колпак, маску, перчатки.

3. Взять медицинскую форму ТБ 05 у пациента.

4. Ознакомить пациента с процедурой сбора мокроты.

5. Занести данные о пациенте из ТБ 05 в журнал сбора мокроты.

6. Отметить имя пациента и номер образца на контейнере.

7. Попрость пациента помыть руки, тщательно ополоснуть рот.

8. Перед забором мокроты включить оконный вытяжной вентилятор.

9. Поставить пациента (стать) лицом к широко открытому окну.

10. Дать пациенту контейнер для сбора мокроты, открутить крышку

11. Встать позади пациента на расстоянии не менее 1 метра.

12. Попросить пациента откашлять 3-5 мл мокроты, сплюнуть ее в контейнер и наблюдать за выполнением процедуры.

13. Предложить пациенту плотно закрыть контейнер закручивающейся

крышкой и передать медсестре.

14. Убедиться в правильности закрытия контейнера, обработать его дезраствором, поставить в бикс. Перед транспортировкой наружная поверхность биксов обеззараживается 2-х кратной обработкой одним из имеющихся дез.средств (люмакс-хлор 0,1%, хлордезин 2% и т. Д.)

15. После приёма каждого пациента медицинская сестра должна помыть руки с мылом под проточной водой.

16. При завершении работы снять перчатки, колопак, маски, халат, бумажные

полотенца и сбросить в емкость с отходами класса «В» (упаковка красного цвета).

17. Выдать пациенту чистый контейнер для сбора второго образца мокроты

(ночую мокроту собирают во второй контейнер ) дома утром следующего дня и попросить принести контейнер в кабинет забора мокроты.

18. Предупредить пациента о необходимости сдачи третьего образца

мокроты в кабинете сбора мокроты.

19. Отметить в журале сбора мокроты проведение процедуры.

20. Выключить вытяжной оконный вентилятор через 10 минут после ухода

Забор материала из зева

Цель: Выявить возбудителя заболевания Оснащение: штатив со стерильными пробирками, плотно закрывающимися ватно-марлевыми тампонами, в которые вмонтированы стержни с накрученными сухими ватными тампонами для забора материала; шпатель стерильный в крафт-пакете; бикс для транспортировки пробирок, штатив; стеклограф. 1. Объяснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования, сроки получения результата исследования и получить согласие на процедуру. 2. Вымыть руки, надеть маску, перчатки.

3. Усадить пациента лицом к источнику света, сесть напротив пациента. 4. Поставить стеклографом номер на пробирках, соответствующих номеру в

направлении: ЗЕВ- №1. 5. Взять в левую руку шпатель и пробирку с меткой: ЗЕВ-№1.

6. Попросить пациента открыть рот, фиксировать им язык пациента.

7. Извлечь правой рукой из пробирки стержень со стерильным тампоном, держа его за пробку в виде ватно-марлевого тампона.

8. Взять мазок, не касаясь стерильным тампоном слизистой оболочки полости рта и языка, последовательно обтирая правую миндалину, затем небную дужку, язычок, левую небную дужку, левую миндалину и заднюю стенку глотки. 9. Извлечь тампон, не касаясь им слизистой оболочки полости рта и языка.

10.Ввести тампон в пробирку, не касаясь наружной поверхности пробирки, плотно

закрыть её. 11. Поставить пробирку в штатив для пробирок, затем в бикс, закрыв его на «замок». 12. Снять перчатки, маску утилизировать в КБУ.

13. Вымыть и осушить руки. 14. Оформить направление. 15.Доставить взятый материал в биксе с направлением в бактериологическую лабораторию.

Забор материала из носа

1.Объяснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования, сроки

получения результата исследования и получить согласие на процедуру. 2. Вымыть, осушить руки, надеть перчатки. 3. Поставить стеклографом номер на пробирках, соответствующих номеру в

направлении: НОС- №2, установить пробирку в штатив. 4. Усадить пациента лицом к источнику света, сесть напротив пациента.

5. Взять закрытую пробирку с меткой «НОС-2» в левую руку под 3,4,5 пальцы, а правой

рукой извлечь из нее тампон.

6. Приподнять кончик носа пациента большим пальцем левой руки, а правой – ввести

тампон вглубь правой, затем левой полости.

7. Извлечь тампон из полости носа. 8. Осторожно, не касаясь наружной поверхности пробирки, ввести в нее тампон.

9. Поставить пробирку в штатив для пробирок, затем в бикс, закрыв его на «замок».

10. Снять перчатки, маску утилизировать в КБУ класса Б.

11. Вымыть и осушить руки. 12. Оформить направление. 13. Доставить взятый материал в биксе с направлением в бактериологическую

Дуоденальное зондирование

Цель: все три порции желчи исследуются

микроскопически (определение простейших, лямблий их цисты, описторхии, клетки опухоли, лейкоциты, кошачей, китайской, печёночной двуустки, аскоридов);

химически (определение билирубина, холестерин, желчные кислоты, белок);

бактериологически имеет лишь относительное значение, так как трудно установить, откуда флора – из полости рта, кишечника, желчных путей, и если, дважды одинаков анализ – то бактерионосительство;

лечебная для оттока желчи при застойных явлениях.

Оснащение: стерильный одноразовый дуоденальный зонд, шприц 20 мл одноразовый, зажим, почкообразный лоток, пробирки конусообразные 5-6 штук, полотенце, салфетки, резиновые перчатки, направление в лабораторию, грелка, штатив для пробирок, низкая скамейка, стимуляторы желчного пузыря (сорбит 4-5 пакетов, глюкоза 40%), стакан с тёплой водой.

Показания: взятие желчи для диагностики заболеваний желчного пузыря, желчных путей и с лечебной целью – для стимуляции оттока желчи при застойных явления в желчном пузыре.

Противопоказания: острый холецистит, обострение хронического холецистита, кровотечение.

1. Установить доверительные отношения с пациентом, получить согласие на проведение процедуры.

2. Подготовить пациента за 3 дня до исследования (назначается диета №4):

  • исключить продукты, вызывающие газообразование;
  • применять на ночь грелку на область правого подреберья (если дуоденальное зондирование проводится с целью обнаружения лямблий или повторно, то грелка на ночь не применяется).
  • на ночь выпивать стакан очень сладкого чая, (если нет сахарного диабета) и дать 2 таблетки но-шпы.
  • предложить пациенту лёгкий ужин накануне вечером, не позднее 19 часов.

3. Исследование проводится утром натощак. Утром, в день исследования, нельзя пить, есть, принимать лекарственные средства, курить.

4. Надеть перчатки, взять зонд руки и в положении пациента стоя, определить расстояние на зонде: от мочки уха до резцов, от резцов до пупка плюс ладонь пациента, поставить метку.

5. Усадить пациента на кушетку и ввести смоченный зонд под краном, обычным способом.

6. Предложить пациенту проглотить зонд до первой метки (примерно 45 см), свободный конец зонда опустите в пробирку (пациент может ходить).

7. На протяжении 20-60 минут пациент заглатывает зонд до метки, когда пациент проглотит зонд до метки, предложите ему лечь на правый бок без подушки, с согнутыми в коленях ногами, положите теплую грелку, завёрнутую в салфетку, под правое подреберье.

8. Под голову положите полотенце.

9. В пробирку начнет поступать светлая, мутная жидкость (её выливают), а затем золотисто-желтая прозрачного цвета жидкость – это дуоденальная желчь – порция А, вязкое содержимое щелочной реакции (20-30 мл)

10. Для получения порции В (пузырная желчь), пациента поворачивают на спину и вводят разведенный сорбит 40-50 мл в зонд, подогретый до температуры тела (37-38ºС), пережимают зажимом.

11. Через 10-15 минут пациента опять поворачивают на правый бок, снимают зажим: через зонд поступает густая темно-оливкового цвета жидкость из желчного пузыря – это порция В, более вязкая желчь. За 20-30 минут выделяется 30-60 мл желчи из желчного пузыря.

12. Опустите зонд в следующую пробирку: вслед за желчью из желчного пузыря

начнет поступать печеночная желчь порция С лимонно-желтого цвета, менее

вязкая желчь. За 20-30 минут выделяется 15-20 мл печеночной желчи.

13.Пробирки помещают в стакан с тёплой водой.

14.Приложите салфетку, извлеките зонд, утилизируйте всё в КСБУ класса Б.

15. Подпишите пробирки (А, В, С), сразу отправьте их в клиническую лабораторию с

16.Снимите перчатки и утилизируйте их в КСБУ класса Б.

Последнее изменение этой страницы: 2016-04-19; Нарушение авторского права страницы

источник

Цель: диагностическая.

Показания: подозрение на злокачественные заболевания легких.

Оснащение: чистая широкогорлая сухая ёмкость, бланки направлений.

I . Подготовка к процедуре ( накануне вечером)

1. Установить доверительные отношения с пациентом.

2. Предупредить и объяснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования и получить согласие на исследование.

Читайте также:  Мокрота при кашле у щенка

3. Обеспечить лабораторной посудой, направлением накануне вечером. Провести инструктаж.

4. Объяснить пациенту суть и ход предстоящей процедуры (если он с нею не знаком) и особенности подготовки. При необходимости дать ему письменную инструкцию:

· вечером, накануне исследования, перед сном тщательно почистить зубы;

· утром, после сна, натощак, тщательно прополоскать рот кипяченой водой;

· сделать несколько глубоких вдохов;

· открыть крышку плевательницы, откашляться и собрать мокроту в чистую сухую плевательницу (достаточно 5 мл);

· закрыть крышку плевательницы и поставить ее в специальный ящик в санитарной комнате.

5. Попросить пациента повторить информацию, задать ему вопросы по алгоритму подготовки и сбора мокроты.

6. Указать, к каким последствиям может привести несоблюдение рекомендаций медсестры.

7.Обеспечить пациента емкостью для сбора мокроты.

II Выполнение процедуры

8. Проконтролировать действия пациента.

9. Заполнить направление, доставить плевательницу с материалом в лабораторию на исследование.

· При взятии мокроты на атипичные (опухолевые) клетки следует помнить, что эти клетки быстро разрушаются, поэтому собирать следует свежевыделенную мокроту.

· Для большей вероятности попадания опухолевых клеток в мокроту иногда применяют предварительные ингаляции с протеолитическим ферментом трипсином, способствующим выхождению мокроты из наиболее глубоких отделов бронхиального дерева.

III . Завершение процедуры

10. Сделать запись о проведенной процедуре.

11.Подклеить полученные результаты исследования в медицинскую документацию.

IX. Анализы кала

ВЗЯТИЕ КАЛА ДЛЯ КОПРОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ

Цель: диагностическая: определение функциональной способности желудочно-кишечного тракта.

Показания: заболевания желудочно-кишечного тракта.

Оснащение: чистая сухая стеклянная ёмкость от 30 до 100 мл, шпатель, перчатки, направление.

I . Подготовка к процедуре ( за 4-5 дней до исследования):

1. Установить доверительные отношения с пациентом, объясните пациенту цель предстоящего исследования и правила подготовки к нему:

· необходимо в течение 4-5 дней соблюдать диету, назначенную врачом (диета Шмидта, Певзнера) В некоторых случаях специальная диета не назначается;

· подготовить накануне ёмкость с крышкой для взятия кала ;

· кал собирается в день исследования утром после опорожнения кишечника в судно без воды.

II . Выполнение процедуры

2. Вымыть руки (социальный уровень), надеть перчатки.

3. Взять шпателем после акта дефекации 5-10 г фекалий (без примеси мочи) и поместить их в приготовленную ёмкость, закрыть ёмкость крышкой.

Примечание: допускается хранение ёмкости с фекалиями при температуре 3-5 0 С не более 8 часов.

X.Завершение процедуры

4. Поместить шпатель и перчатки в ёмкость с дезинфецирующем средством.

5. Вымыть руки, надеть перчатки, доставить ёмкость с направлением в Ааческую лабраторию.

6. Провести дезинфекцию использованного инструментария с последующей утилизацией одноразового;

7. Сделать запись о проведенной процедуре;

8. Подклеить полученные результаты исследования в медицинскую документацию.

Подготовка пациента к исследованию

Кала и сбор материала

Перед копрологическим исследованием следует убедиться, что пациент не принимает лекарственные средства, примеси которых мешают Ааиопиическому исследованию и влияют на внешний вид каловых масс, а также Ааивают перистальтику кишечника. К таким лекарствам относятся все слабительные, ваго- и симпатикотропные средства (атропин, платифиллин, метацин, адреналин, норадреналин, нафтизин, мезотон, эфедрин, изадрин, обзидан, Ааприлин, прозерин и др.), каолин, бария сульфат, препараты висмута, железа, а также препараты, вводимые в ректальных свечах, приготовленных на жировой основе.

При исследовании, целью которого является изучение степени усвоения различных компонентов пищи, целесообразно применять диеты, содержащие точно дозированные определенные наборы продуктов.

Диета Шмидта (щадящая):

· 1 завтрак: 0,5л. Молока, чая или какао; белый хлеб с маслом; яйцо всмятку;

· 2 завтрак: 0,5л. Жидкой овсяной каши;

· обед: 125г. хорошо измельченного тощего мясо, слегка обжаренного в масле (внутри сырого), 250г. картофельного пюре;

· полдник: 0,5л. Молока, чая или какао; белый хлеб с маслом;

· ужин: 0,5л. Молока или тарелка жидкой овсяной каши, белый хлеб с маслом; 1-2 яйца всмятку (или яичница);

Диета Певзнера (на 1 день);

· 400 г хлеба (в том числе 200г. черного);

· 250 г. мяса, жареного куском;

· жареный картофель, салаты, квашеная капуста, компот, свежие фрукты.

Для исследования в лабораторию направляют суточное (!) количество Ала. При растительном питании количество фекалий гораздо больше, чем при питании животной пищей.

По Шмидту после пробной диеты в течение суток у здорового человека выделяется 200-250г. экскрементов. Увеличение суточного количества кала (полифекалия) может быть обусловлено нарушением всасывания, желчеотделения, заболеваниями желудка, поджелудочной железы и кишечника.

Вот почему для исследования степени усвоения пищи должна быть собрана вся суточная порция фекалий.

ЗАПОМНИТЕ! В лабораторию нельзя доставлять кал после клизмы, введения свечей, приема внутрь красящих веществ, касторового и вазелинового масла, белладонны, пилокарпина, железа, висмута, бария.

Дата добавления: 2019-01-14 ; просмотров: 118 ; ЗАКАЗАТЬ РАБОТУ

источник

Атипичная бронхиальная клетка

Общее описание

Атипичные клетки представляют собой клетки, резко отличающиеся по своим морфологическим характеристикам от аналогичных клеток той же ткани, имеющих нормальную структуру. Наличие в мокроте атипичных клеток свидетельствует о наличии злокачественного новообразования, затрагивающего дыхательные пути. Образование атипичных клеток является общим свойством злокачественных опухолей. При раке патологическому преобразованию подвергаются клетки эпителия. Такое свойство клеток, связанное с изменением их морфологии при злокачественном опухолевом росте, называется клеточным атипизмом, а измененные клетки, соответственно, атипичными. Нередко опухолевые клетки настолько изменяются, что визуально установить их первичную принадлежность к той или иной ткани становится невозможным.

Атипичные клетки обладают способностью легко отделяться от ткани из-за потери некоторых качеств межклеточных соединений. Отделившиеся клетки откашливаются вместе с мокротой. Кроме самих атипичных клеток в мокроте при злокачественных опухолях могут быть обнаружены кусочки опухолевой ткани, эритроциты, лейкоциты.

Аудитория риска

Анализ мокроты на атипичные клетки назначается больным, у которых подозревается злокачественное новообразование дыхательных путей. Обычно исследуется мокрота больных при длительном кашле, длительном незначительном повышении температуры тела, при обнаружении при флюорографии или рентгенографии теней в легких неясного происхождения, в случаях, когда имеется кровохарканье невыясненного генеза.

Подготовка и проведение исследования

Мокрота собирается утром в специально подготовленную чистую емкость утром до приема пищи. Для этого больной тщательно полоскает ротоглотку водой, после чего глубоко вдыхает воздух через рот и продолжительно откашливается. Нередко мокроты отделяется недостаточно, в этих случаях накануне исследования проводятся раздражающие ингаляции, например, с йодидом калия. Собранная мокрота доставляется в лабораторию.

Лаборант наносит мокроту на предметное стекло и подробно последовательно просматривает под световым микроскопом большое количество полей зрения. Атипичные клетки имеют ряд особенностей строения, позволяющих отличить их от клеток нормального эпителия:

  • клеточный полиморфизм представляет собой значительные различия в строении, размерах и форме клеток одного класса;
  • крупные, гиперхромные (интенсивно окрашенные) ядра, при этом соотношение площади ядра и цитоплазмы сдвигается в сторону ядра (так называемый ядерно-цитоплазматический сдвиг);
  • ядра атипичных клеток различаются по размерам и внешнему виду (ядерный полиморфизм);
  • появляются крупные ядрышки;
  • нередко встречаются многоядерные клетки;
  • присутствуют картины патологического деления (патологических митозов).

Нередко исследование мокроты на атипичные клетки проводится несколько раз: в одних случаях, когда вероятен диагноз рака легких, но атипичные клетки не выявляются, в других, когда выявлены единичные клетки, обладающие свойствами атипизма, но диагноз рака является сомнительным. В любом случае изолированно анализ мокроты на атипичные клетки не позволяет полноценно выставить диагноз новообразования и является лишь частью комплекса диагностических процедур.

Методы исследования

Мокрота с целью выявления атипичных клеток исследуется с помощью микроскопического изучения.

Показатель источник

Исследование мокроты (цитология) – микроскопический анализ мокроты для обнаружения раковых клеток у больных с подозрением на рак легкого. Основные показания к применению: клинические признаки новообразований легкого, дифференциальная диагностика заболеваний легких.

В свежесобранной мокроте при цитологическом исследовании у пациентов с онкологическими заболеваниями легких в ряде случаев можно обнаружить опухолевые клетки. Опухолевые клеткиобнаруживаются у 85% пациентов с центральным раком легкого. Отсутствие атипичных клеток в мокроте при подозрении на опухолевый рост не является критерием отсутствия рака. В этих случаях необходимо применение других методов исследования: бронхоскопия и гистологическое исследование, проведение инструментальных методов обследования.

Накануне пациенту выдается пластиковая емкость на 100 мл (или приобретается самостоятельно).Мокрота собирается с утра до приема пищи.Рот прополоскать, что бы избежать попадания содержимого рта.Необходимо собирать мокроту, которая отделяется при кашле.После сбора крышка плотно завинчивается и передается медицинской сестре для отправки в лабораторию в день забора материала.До передачи в лабораторию хранить в прохладном месте не более 10-11 часов.======================================

Цель: определить физико-химические свойства и клеточный состав мокроты. Показания: заболевания органов дыхания и сердечно-сосудистой системы.

Приготовьте: — чистую сухую широкогорлую банку из прозрачного стекла 50-100 мл; — напишите и наклейте на наружную стенку банки направление (отделение, № палаты, ФИО пациента, возраст, цель исследования, дата); — кипяченую воду Т 0 — 37°С в количестве 0,5 — 0,7л.

Алгоритм действия: 1. Проведите инструктаж с пациентом о правилах сбора мокроты на исследование и получите его согласие. 2. Мокрота собирается рано утром (натощак) до приема пищи. 3. Попросите пациента: — почистить зубы утром за 2 часа до сбора мокроты; — прополоскать полость рта и глотки кипяченой водой непосредственно перед сбором мокроты; — встать или сесть прямо; — держать банку для сбора мокроты у нижней губы, не касаясь ее: — сделать несколько глубоких вдохов и выдохов, а затем покашлять; — собрать ее в банку в количестве не менее 3-5 мл; — закрыть банку с мокротой крышкой. 4. Осмотрите собранную мокроту и отправьте ее в лабораторию в течение 2 часов после ее сбора.

— если собранная мокрота составляет менее 3-5 мл, то процедуру сбора мокроты необходимо повторить: — пациентам надо указать на то, что исследованию подлежит только мокрота, отделяющаяся при кашле, а не при отхаркивании.

Цель: обнаружение опухолевых клеток в мокроте.

Показания: заболевания органов дыхания, подозрение на онкозаболевания.

Приготовьте: — чистую сухую широкогорлую банку из прозрачного стекла 50-200 мл. — напишите и наклейте на наружную стенку банки направление (отделение, № палаты, ФИО пациента возраст, цель исследования, дата).

Алгоритм действия: 1. Дайте пациенту информацию о правилах сбора мокроты на исследование и получите его согласие. 2. Мокрота собирается рано утром (натощак) до приема пищи, 3. Попросите пациента: — почистить зубы утром за 2 часа до сбора мокроты: — прополоскать полость рта и глотки кипяченой водой непосредственно перед сбором мокроты. — встать или сесть прямо. — держать банку для сбора мокроты нижней губы. — сделать несколько глубоких вдохов и выдохов, а затем покашлять. 4. Соберите отошедшую свежевыделенную мокроту в количестве 3 – 5 мл. в банку, закройте ее крышкой. 5. Осмотрите собранную мокроту и достаньте ее в лабораторию не позднее 1 часа после сбора материала, так как атипичные клетки быстро разрушаются.

1.104. Стандарт «Сбор мокроты для бактериоскопического исследования на туберкулез, в условиях стационара».

Цель: обнаружение микобактерий туберкулеза, научить пациента самостоятельно собрать мокроту. Показание: заболевания органов дыхания Приготовьте: — при плевательницы многоразовые или одноразовые или контейнеры с герметично завинчивающимися крышками; — чистую сухую широкогорлую банку из прозрачного стекла 50 – 200 мл с крышкой; — напишите и наклейте направление (ФИО пациента, год рождения, дата забора идентификационный номер пациента, направление ф. ТБ – 0,5) Алгоритм действия: 1. Проведите инструктаж с пациентом о правилах сбора мокроты на исследование

2. Проводите забор мокроты в отсутствие посторонних лиц на открытом воздухе, либо а специально отведенной для этих целей отдельной комнате, хорошо проветриваемой, с открывающимися окнами, с наличием вытяжной вентиляции и кварцевой лампы. 3. Наденьте маску, клеенчатый фартук, резиновые перчатки. 4. Собирайте мокроту рано утром до приема пищи 3 дня подряд. Выдайте пациент открытую плевательницу или контейнер. 5. Попросите пациента почистить зубы и прополоскать полость рта и зев водой или раствором соды. 6. Встаньте за спиной пациента и попросите его поднести ко рту плевательницу или контейнер.

7. Попросите пациента накрыть рот платком или тканью и сделать 3 глубоких вдоха и выдоха и в конце сильно откашлянуться и сплюнуть мокроту в количестве 3-5 мл в плевательницу или контейнер, не касаясь ее краев. 8. Закройте плевательницу (контейнер) крышкой. 9. Осмотрите мокроту убедитесь, что мокрота содержит плотные гнойные частицы, а не слюну. 10. Отправьте собранную утреннюю пробу мокроты в лабораторию в течение суток. 11. Оформите бланк направление Ф. ТБ-05.

Примечание: при сборе мокроты для бактериоскопического исследования в условиях поликлиники, амбулатории. ФАПа мокроту собирают согласно выше описанных правил. Особенностью сбора мокроты вне стационара является сбор мокроты в два приема. Первая проба мокроты собирается при обращении пациента в поликлинику утром под наблюдением медработника. Вторая проба – утром следующего дня дома и доставляется в лабораторию. Третья проба собирается пациентом в этот же день в поликлинике под

наблюдением медработника (т.е. 2-3 пробы собираются в один день).

— сбор мокроты проводится обязательно под контролем медработника. — многоразовые плевательницы и контейнеры подлежат дезинфекции и стерилизации. — одноразовые плевательницы после использования подлежат уничтожению

Этот сайт использует Akismet для борьбы со спамом. Узнайте как обрабатываются ваши данные комментариев.

источник

Исследование мокроты — одно из первых диагностических мероприятий, применяемых у больных с легочной патологией.

Это исследование позволяет выявить даже carcinoma in situ.

Успех цитологической диагностики зависит от правильного сбора мокроты и ее обработки, а также правильной интерпретации цитологической картины.

Высокая эффективность цитологического исследования мокроты при выявлении рака может быть достигнута только путем ее последовательною четырех- или пятикратного исследования (ежедневно или через 1-2 дня).

Для анализа следует брать утреннюю порцию мокроты, откашливаемой больным натощак. В лабораторию мокроту доставляют не позднее 1-1 3/4, ч после откашливания. М. Clee и соавт. (1982) указывают также на необходимость быстрой фиксации мазков без высушивания, при котором нарушается ее структура.

Распознавание рака легкого на основании результатов исследования мокроты зависит от клилико-анатомической формы, типа роста и гистологической структуры опухоли, наличия ателектаза, квалификации врача-цитолога. При центральном раке опухолевые клетки в мокроте удается обнаружить у 52-88% больных: результативность метода при периферическом раке ниже — 33-61% (Агамова К.А., 1993).

Особую ценность имеет цитологическое исследование мокроты, полученной после бронхоскопии: выявляемость рака возрастает до 94% при центральном и до 13% при периферическом раке, а корреляция цитологических и гистологических Данных относительно типа рака легкого отмечается в 82-90% случаев.

В последние годы особое внимание уделяют уточнению дифференциально-диагностических цитологических критериев различных гистологических форм рака легкого для разных объектов, вопросам потенциально предраковых изменений бронхиального эпителия, поиску цитологических маркеров, отражающих состояние эпителия, предшествующее возникновению рака и патогенетически с ним связанное, т.е. дисплазию различной степени выраженности.

Морфологические проявления дисплазии используют как критерий для формирования групп повышенного риска развития злокачественных опухолей легких в программах скрининга раннего рака легкого (Зырянов Б.Н. и др., 1997; Quin D. et al., 1991; Strauss G. et al., 1993).

Детализированная цитологическая классификация предраковых состояний легких разработана в МНИОН им П.А. Герцена (Агамова К.А. и др., 1983): базально-клеточная гиперплазия; гиперплазия бокаловидных клеток; плоскоклеточная метаплазия бронхиального эпителия безатипии клеток; атипическая плоскоклеточная метаплазия бронхиального эпителия; дисплазия, подозрительная в отношении перехода в рак.

Частота распознавания плоскоклеточного рака на основании результатов исследования мокроты 60-65%, мелкоклеточного 54-61%, железистого 22-50% и крупноклеточного 30-42% (Wacha L. et al., 1979; Sanz O.J. et al., 1982).

По данным A. Ng и G. Horak (1983), результативность цитологического исследования мокроты составляет 88,2% (85% при плоскоклеточном, мелкоклеточном и крупноклеточном раке, 75% при аденокарциноме, бронхиолоальвеолярном и железисто-плоскоклеточном раке).

Они установили корреляцию между результатами цитологической диагностики и количеством исследований: при троекратном — 83%, пятикратном и более — 90%. По мере снижения дифференцировки опухолевых клеток показатель корреляции цитологических и гистологических данный снижается.

Исследование мокроты нередко позволяет в самом начале болезни, ло применения бронхоскопии, установить морфологический диагноз (рис. 3.42, 3.43). Это очень важно для тех больных, у которых клинико-рентгенологическая симптоматика заболевания скудна, диагноз рака сомнителен или его наличие не предполагается.


Рис. 3.42. Цитограмма мокроты при высокодифференцированном плоскоклеточном раке легкого. Окраска по Паппенгейму. х 400.


Рис. 3.43. Цитограмма мокроты при аденокарциноме легкого (умеренно дифференцированной). Окраска по Паппенгейму. х 400.

При цитологическом исследовании мокроты можно обнаружить предопухолевое состояние слизистой оболочки бронхов, включая эпидермоидную метаплазию и внутриэпителиальный рак.

Высока эффективность цитологического исследования мокроты при диагностике центрального рака легкого ранних стадий. При наличии опухоли, не выходящей за пределы устья сегментарного бронха (Т1), у большинства больных на основании результатов цитологического исследования мокроты удается морфологически верифицировать диагноз.

Элементы опухоли в мокроте довольно часто обнаруживают среди клеток метаплазированного эпителия. Таким образом, у большого числа больных центральным раком в стадии T1N0M0 опухоль выявляют при цитологическом исследовании до госпитализации и эндоскопического исследования.

Цитологические заключения о раке по мокроте оказываются правильными в 91-92% случаев, ложноположительными — в 1-6% наблюдений. Отсутствие элементов рака в мокроте не дает основания отрицать наличие опухоли легкого.

Достоинство метода заключается в том, что его можно применять амбулаторно. Если кашель отсутствует, то его вызывают искусственно с помощью специального аэрозоля — смеси 15% раствора хлорида натрия и 15% раствора пропиленгликоля.

Результативность цитологического исследования мокроты при злокачественных неэпителиальных опухолях легких значительно ниже, чем при раке легкого.

Только у 16% больных в мокроте находят атипические клетки, что позволяет диагностировать злокачественную опухоль легкого. Установить гистологический тип неэпителиальной злокачественной опухоли удается редко (рис. 3.44). Этот метод в ряде случаев является основным при оценке правильности диагноза.


Рис. 3.44. Цитограммы мокроты при нейросаркоме (а) и злокачественной фиброзной гистисицитоме (б). Окраска по Паппенгейму. х 400.

Затруднения, возникающие при морфологической верификации злокачественных неэпителиальных опухолей на основании исследования мокроты, можно часто объяснить тем, что чаще всего наблюдается периферическая клинико-анатомическая форма данного заболевания, хотя при цитологическом исследовании материала, полученного при бронхоскопии, верифицировать злокачественную опухоль удается в 4 раза чаще.

источник

ЦЕЛЬ: выявление атипичных клеток, вызывающих опухоли.

ОСНАЩЕНИЕ: чистый сухой флакон с крышкой.

Результат Интерпретация
№ отделения №палаты НАПРАВЛЕНИЕ В клиническую (цитологическую) лабораторию Мокрота на атипичные клетки ИВАНОВ ИВАН ПЕТРОВИЧ Дата: Подпись медсестры:
Этапы Примечания
ПОДГОТОВКА К ПРОЦЕДУРЕ
1. Объяснить пациенту цель и необходимость предстоящего исследования. Пациент имеет право на информацию.
2. Обеспечить лабораторной посудой. В условиях стационара выписать направление по установленной форме.
3. Обучить технике сбора мокроты, проинструктировать о порядке сбора мокроты. Мокроту собирать только при кашле, а не при отхаркивании. Если пациент испытывает трудности при обучении, оставить письменные рекомендации.
4. Предупредить, что утром, натощак, почистить зубы и тщательно прополоскать рот. Гигиена ротовой полости предохраняет от попадания содержимого полости рта в мокроту.
ВЫПОЛНЕНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
Откашлять и собрать мокроту в чистую банку в количестве 3-5 мл и закрыть крышку. Для большей вероятности попадания опухолевых клеток в мокроту иногда применяют предварительные ингаляции с протеолитическим ферментом трипсином, способствующим выхождению мокроты из наиболее глубоких отделов бронхиального дерева.
ОКОНЧАНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
Флакон с посудой сразу же отдать медсестре. В лабораторию мокрота доставляется сразу же свежевыделенной, так как атипичные клетки быстро разрушаются.

Обучение пациента сбору мокроты на бактериологическое исследование

ПОКАЗАНИЯ: заболевания органов дыхания.

ОСНАЩЕНИЕ: стерильная стеклянная широкогорлая банка с крышкой из крафт-бумаги, направление в лабораторию.

№ отделения №палаты НАПРАВЛЕНИЕ В бактериологическую лабораторию Мокрота на микрофлору и чувствительность к антибиотикам ИВАНОВ ИВАН ПЕТРОВИЧ Дата: Подпись медсестры:
Этапы Примечания
ПОДГОТОВКА К ПРОЦЕДУРЕ
1. Предупредить и объяснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования. Пациент имеет право на информацию.
2. Объяснить, что сбор мокроты целесообразно проводить до начала антибиотикотерапии.
3. Обучить технике сбора мокроты: ü предупредить, что собирают мокроту только при кашле, а не при отхаркивании; ü объяснить, что необходимо соблюдать правила личной гигиены до и после сбора мокроты; ü объяснить, что необходимо вечером почистить зубы, а утром, натощак прополоскать рот и глотку кипяченой водой непосредственно перед сбором. Если пациент испытывает трудности при обучении, оставьте письменные рекомендации. Чистить зубы можно за два часа до сбора мокроты.
ВЫПОЛНЕНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
1. Открыть крышку банки.
2. Откашлять и собрать мокроту (не слюну) в стерильную банку в количестве не менее 5 мл. Следите, чтобы мокрота не попала на край банки, и не касайтесь внутренней поверхности крышки и банки.
3. Закрыть крышку.
ОКОНЧАНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
Прикрепить направление и доставить в бактериологическую лабораторию. Исследуется свежевыделенная мокрота не позднее 1-1,5 часов. В условиях стационара в бактериологическую лабораторию мокроту доставляют в герметичном контейнере, а если необходимо транспортировать мокроту на дальнее расстояние, то используется спецтранспорт.

Дезинфекция мокроты и карманных плевательниц в домашних условиях

ЦЕЛЬ: обеспечить инфекционную безопасность. Обеззараживание мокроты и посуды, в которой она находится, проводится одним из способов:

ü налить в плевательницу дезинфицирующий раствор на 1/4 объема, например , 5% раствора хлорамина или 1% активированного раствора хлорамина (или другой регламентированный дезинфицирующий раствор);

ü дать пациенту плевательницу, объяснив необходимость заполнения ее мокротой до метки 3/4 объема плевательницы;

ü обеззаразить мокроту в плевательнице, залив в нее доверху дезинфицирующий раствор на 4 часа;

ü вылить мокроту в канализацию.

Примечание: можно обеззаразить плевательницу методом кипячения в 2% растворе питьевой соды в течение 15 минут.

VIII. Забор материала из зева и носа для бактериологического исследования

НАПРАВЛЕНИЕ В ________________ бактериологическую__________лабораторию (какую) направляется______мазок из зева (З) и носа (Н)_________________ для исследования____на дифтерию___________________________ (цель исследования) Ф.И.О. пациента ____ИВАНОВ ИВАН ПЕТРОВИЧ_____________ Возраст ______________40 лет__________________________________ Место нахождения пациента_БСМП, инфекционное отделение_ Дата, час _______________20 мая 1998 г. 8 час. 40 мин.____________ Подпись взявшего анализ _____________________________________

ЦЕЛЬ: выявить возбудителя заболевания.

ü штатив со стерильными пробирками, плотно закрывающимися ватно-марлевыми тампонами, в которые вмонтированы стержни с накрученными сухими ватными тампонами для забора материала;

ü шпатель стерильный в крафт-пакете;

ü бикс для транспортировки пробирок, штатив;

Забор материала из зева

Этапы Примечания
ПОДГОТОВКА К ПРОЦЕДУРЕ
1. Объяснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования, сроки получения результата исследования и получить согласие на процедуру. Объяснить пациенту, что забор материала из зева проводится утром, натощак, до приема лекарственных средств. Достоверный ответ получают через 5-7 дней, если правильно подготовлен пациент и правильно взят мазок.
2. Вымыть руки, надеть маску, перчатки. Обеспечение инфекционной безопасности.
3. Усадить пациента лицом к источнику света, сесть напротив пациента.
4. Поставить стеклографом номер на пробирках, соответствующий номеру в направлении: ЗЕВ-№1, установить пробирку в штатив. Порядковый номер каждой пробирки должен соответствовать номеру направления с указанием Ф.И.О. пациента.
5. Взять в левую руку шпатель и пробирку с меткой ЗЕВ-№1 Убедиться, что пробирка соответствует фамилии, имени, отчеству (Ф.И.О.) данного пациента.
ВЫПОЛНЕНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
1. Попросить пациента открыть рот, ввести шпатель в рот, фиксировать им язык пациента. Обеспечение инфекционной безопасности.
2. Извлечь правой рукой из пробирки стержень со стерильным тампоном, держа его за пробку в виде ватно-марлевого тампона. Обеспечение инфекционной безопасности.
3. Взять мазок, не касаясь стерильным тампоном слизистой оболочки полости рта и языка, последовательно обтерев правую миндалину, затем небную дужку, язычок, левую небную дужку, левую миндалину и заднюю стенку глотки. Провести только одним тампоном справа и слева (при подозрении на дифтерию – на границе измененной и неизмененной поверхности миндалин). При неяснолокализованных изменениях взять мазки двумя тампонами: из очага и из всех других секторов ротоглотки, указав это на пробирке.
4. Вынуть шпатель из полости рта, погрузить в дезраствор. Шпатель после дезинфекции подлежит предстерилизационной обработке и стерилизации.
5. Извлечь тампон, не касаясь им слизистой оболочки полости рта и языка. Обеспечение инфекционной безопасности.
6. Ввести тампон в пробирку, не касаясь наружной поверхности пробирки, плотно закрыть ее. Тампон должен как можно меньше времени находиться в нестерильных условиях окружающей среды.
7. Поставить пробирку в штатив, затем в бикс, закрыв его на «замок». На биксе имеются специальные приспособления для надежного укрепления крышки бикса.
ОКОНЧАНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
1. Снять перчатки, маску, погрузить их в дезинфицирующий раствор. Обеспечение инфекционной безопасности.
2. Вымыть и осушить руки.
3. Оформить направление в бактериологическую лабораторию.
4. Доставить пробирку с сопроводительным документом в лабораторию. Пробирку можно хранить в специальном холодильнике не более 2-3 часов.

Забор материала из носа

Этапы Примечания
ПОДГОТОВКА К ПРОЦЕДУРЕ
1. Объяснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования и получить согласие на процедуру. Пациент имеет право на информацию.
2. Осмотреть полость носа, убедиться, что она чистая. При необходимости очистить нос (предложить пациенту высморкаться), удалить корки из полости носа, размягчив их стерильным вазелиновым маслом, затем очистить сухим ватным фитилем.
3. Вымыть руки с мылом, надеть маску и перчатки. Обеспечение инфекционной безопасности.
4. Поставить стеклографом номер на пробирках, соответствующий номеру в направлении: НОС-2, установить пробирку в штатив. Порядковый номер каждой пробирки должен соответствовать номеру направления с указанием Ф.И.О. пациента.
5. Усадить пациента лицом к источнику света. Сесть напротив пациента.
ВЫПОЛНЕНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
1. Взять закрытую пробирку с меткой «НОС-2» в левую руку под 3, 4, 5 пальцы, а правой рукой извлечь из нее тампон. Пальцы правой руки должны касаться только пробки пробирки, в которую вмонтирован стержень с тампоном.
2. Приподнять кончик носа пациента большим пальцем левой руки, а правой ввести тампон вглубь правой, затем левой полости носа. Тампон вводится легким вращательным движением в нижний носовой ход на глубину 1,5-2 см.
3. Извлечь тампон из полости носа. Тампон должен как можно меньше времени находиться в нестерильных условиях окружающей среды.
4. Осторожно, не касаясь наружной поверхности пробирки, ввести в нее тампон. Следите, чтобы пробирка была плотно закрыта.
5. Поставить пробирку в штатив для пробирок, затем в бикс, закрыв его на «замок». Проверить соответствие номера пробирки с номером направления и Ф.И.О. пациента. На биксе имеются специальные приспособления для надежного укрепления крышки бикса.
ОКОНЧАНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
1. Снять перчатки, маску, погрузить их в дезинфицирующий раствор. Обеспечение инфекционной безопасности.
2. Вымыть и осушить руки.
3. Оформить направление в бактериологическую лабораторию.
4. Доставить взятый материал в биксе с направлением в бактериологическую лабораторию. Пробирку можно хранить в специальном холодильнике не более 2-3 часов.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском гугл на сайте:

источник

Мокрота – патологические выделения из дыхательных путей, появляющиеся после кашля. Отхаркивание свидетельствует о нарушении функции внутренней оболочки респираторного тракта. Анализ мокроты – исследование, широко применяемое для диагностики заболеваний легких и бронхов. Процедура позволяет дифференцировать патологии, протекающие на фоне кашля и другой типичной клинической симптоматики. Получить мокроту для анализа можно самостоятельно во время кашля или при использовании медицинской манипуляции (бронхоскопии).

Основная цель проведения описываемого исследования – уточнение диагноза. При обычных обстоятельствах мокрота не выделяется. Бокаловидные клетки реснитчатого эпителия секретируют от 10 до 100 мл жидкости, которая проглатывается человеком.

Прогрессирование патологического процесса в бронхах или легких ведет к изменению активности работы соответствующих структур с нарастанием кашля, одышки, боли в груди. Увеличивается количество жидкой фракции слизи, может присоединяться бактериальная микрофлора. Результат – выделение мокроты с кашлем.

Исходя из предполагаемого диагноза и результатов визуальной оценки секрета бронхиальных желез, врач назначает соответствующий тип исследования. Применение разных вариантов анализа мокроты позволяет оценить физико-химические свойства жидкости, цитологические изменения (присутствие раковых клеток), наличие бактериальной инвазии.

Исследование мокроты может проводиться как невооруженным глазом, так и с помощью специализируемого оборудования.

В зависимости от заболевания, которое подозревает врач, могут использоваться следующие типы диагностики:

  • Общий анализ мокроты. Врач оценивает физические характеристики слизи, которая появляется после кашля;
  • Цитологическое (микроскопическое) исследование. Для проведения соответствующей диагностики доктору требуется микроскоп. С помощью увеличения изображения осуществляется анализ жидкости. Методика позволяет увидеть наличие патологических клеток, которые появляются при определенных заболеваниях;
  • Химическое исследование. Оцениваются изменения, происходящие в метаболизме альвеолоцитов и реснитчатого эпителия бронхов;
  • Бактериологический метод или бакпосев мокроты. Суть исследования базируется на высевании бактерий, полученных из содержимого дыхательных путей на питательной среде. Рост колоний подтверждает наличие возбудителя в респираторном тракте. Важным преимуществом посева остается возможность проверки чувствительности бактерий к конкретным противомикробным препаратам в лабораторных условиях.

В тяжелых случаях для своевременной диагностики патологии респираторной системы пациента одновременно назначаются все три варианта исследования. На основе полученных результатов проводится подбор соответствующей терапии.

Факт! Общий или макроскопический анализ позволяет оценить мокроту сразу же после ее получения. Указанный вариант исследования используется врачами сотни лет. Еще до изобретения микроскопа и современных анализаторов врачи ставили диагнозы по внешнему виду отхаркиваемой жидкости.

Ниже будут описаны ключевые аспекты, на которые врач обращает внимание во время диагностики.

Суточное количество выделяемой слизи колеблется от 50-100 мл до 1,5 л в зависимости от базовой патологии, которая нарушает нормальный процесс секреции бокаловидных клеток. Респираторные заболевания по типу бронхита или пневмонии сопровождаются выделением до 200 мл жидкости (суточное количество).

Резкое возрастание указанного показателя происходит при скоплении гноя или крови с дальнейшим выходом через природные пути. Бронхоэктатическая болезнь, дренированный абсцесс, гангрена легкого протекают с выделением до 1,5 л жидкости.

В зависимости от характера жидкости, которая отхаркивается во время кашля, пульмонологи выделяют следующие типы мокроты:

  • Слизистая. Благоприятный вариант развития событий. Болезни, при которых встречается – бронхиальная астма, хронический бронхит, трахеит;
  • Слизисто-гнойная. Дополнительно присоединяется бактериальная инфекция. Кроме кашля и слизи, выделяется жидкость, которая является собой продукты жизнедеятельности микроорганизмов и «переваренные» иммунными клетками бактерии. Болезни – абсцесс легкого, бактериальные пневмонии, гангрена;
  • Гнойная. Причины возникновения те же, что и в предыдущем случае. Отличие – больший процент гноя и продуктов распада тканей. Состояние пациента ухудшается;
  • Кровянистая. При попадании отдельных эритроцитов или порций крови в жидкость, отхаркиваемой во время кашля, она приобретает характерный цвет. Симптом свидетельствует о повреждении сосудов. Возможные причины – рак, травма, инфаркт легкого, актиномикоз.

Оценка характера жидких выделений при кашле способствует пониманию патологического процесса, который развивается в дыхательной системе пациента и подбору адекватного лечения.

Цветовая палитра мокроты, выделяемой во время кашля, зависит от ее характера.

Возможные комбинации:

  1. Слизистая – сероватая или прозрачная;
  2. Слизисто-гнойная – серая с желтыми или гнойными вкраплениями;
  3. Гнойная – жидкость может быть темно-желтой, зеленой или коричневой;
  4. Кровянистая – различные оттенки красного. Важно помнить, что «ржавый» цвет указывает на наличие видоизмененных эритроцитов. При повреждении сосуда кровь алая или розовая (в зависимости от интенсивности кровопотери).

Мокрота в 75% случаев не имеет характерного запаха. Исключением остается выделение гнойного содержимого. Отмершие частички тканей обуславливают гнилостный запах. При прорыве кисты легкого, в которой развивался эхинококк (гельминт) возникает фруктовый аромат.

Слизь, выделяемая при кашле преимущественно гомогенна.

Разделение мокроты на слои характерно для следующих патологий:

  • Абсцесс легкого. В указанном случае формируется 2 слоя – серозный и гнилостный;
  • Гангрена легкого. В данном случае дополнительно образуется третий (верхний) пенистый слой, который обусловлен жизнедеятельностью соответствующих микроорганизмов, продуцирующих пузырьки газа.

Визуальная оценка слизи позволяет быстро установить диагноз без проведения вспомогательных анализов.

Примеси в мокроте представлены эритроцитами, гноем или серозной жидкостью. Присутствие описанных включений позволяет врачу оценить степень поражения легочной ткани и понять, какой патологический процесс является первичным для конкретного клинического случая.

Химический анализ жидкости, выделяемой во время кашля, позволяет определить выраженность патологического процесса. В зависимости от результатов исследования врач подбирает соответствующие лекарства, направленные на стабилизацию функции реснитчатого эпителия.

В норме рН мокроты составляет от 7 до 11. Прогрессирование процессов распада легочной ткани ведет к окислению соответствующей реакции (показатель ниже 6). Причина изменения значения рН базируется на нарушениях процессов обмена солей и минералов.

Белок всегда присутствует в выделяемой при кашле жидкости. Норма – до 0,3%. Незначительное повышение соответствующей цифры до 1-2% может указывать на прогрессирование туберкулеза. Существенное возрастание показателя (10-20%) – признак развития крупозной пневмонии. Лабораторное исследование слизи с определением белка позволяет дифференцировать указанные патологии на фоне анализа клинической картины (кашель, одышка, боль в груди) и результатов других диагностических процедур.

Желчные пигменты

Желчные пигменты, а точнее, микрочастички холестерина выделяются со слизью во время кашля при следующих патологиях:

  1. абсцесс;
  2. образование эхинококковой кисты;
  3. злокачественные опухоли респираторного тракта.

Микроскопический анализ мокроты позволяет с помощью соответствующего оптического аппарата выявить наличие клеток или микроорганизмов, которые в норме не должны присутствовать в выделяемой с кашлем слизи.

Эпителиальные клетки

Эпителий в мокроте – вариант нормы. При микроскопическом исследовании внимание обращается на резкое увеличение концентрации клеток или образование эпителиальных цилиндров. Указанная картина свидетельствует о повреждении дыхательных путей и внутренней оболочки.

Альвеолярные макрофаги

Функция альвеолярных макрофагов – обеспечение локальной иммунной защиты. Небольшое количество клеток может присутствовать в слизи. Резкое возрастание концентрации макрофагов свидетельствует о хроническом воспалительном процессе (бронхит, бронхоэктатическая болезнь, астма, трахеит).

Появление лейкоцитов свидетельствует о наличии острого воспаления, которое может возникать на фоне бактериальной инфекции. Возможные патологии – абсцесс, пневмония, бронхоэктатическая болезнь.

Кровяные тельца появляются в мокроте при разрыве мелких или больших сосудов. О характере кровотечения врач судит по количеству эритроцитов. Отдельно стоит выделить появление видоизмененных клеток, которые проникают сквозь расширенные стенки сосудов без разрыва последних. Типичный пример заболевания – крупозная пневмония.

Опухолевые клетки

Атипичные клетки в мокроте – признак развивающегося онкологического процесса. Для уточнения локализации и типа патологии требуется проведение дополнительных анализов.

Эластические волокна

Появление эластичных волокон в выделяемой при кашле слизи – признак серьезного поражения легких с распадом тканей. Примеры заболеваний – гангрена, поздняя стадия бронхоэктатической болезни, туберкулез и рак, сопровождающийся деструкцией паренхимы органа.

Микробиологический анализ мокроты – один из важных методов верификации наличия туберкулеза. Возбудитель болезни – микобактерия (палочка Коха).

Определение наличия микроорганизма возможно с помощью бактериоскопического метода при использовании микроскопа. Для визуализации возбудителя нужно окрасить исследуемый материал по Цилю-Нильсену. Если в мокроте после кашля обнаруживается палочка Коха, фтизиатр должен в документации указать БК (+), что свидетельствует о выделении возбудителя. Такие больные требуют изоляции. БК (-) – пациент не распространяет бактерию.

Факт! Анализ мокроты на туберкулез проводится также посредством посева исследуемой жидкости на питательную среду. Плюсом методики остается 100% точность. Если бактерия присутствует в организме, она вырастет и в лабораторных условиях. Основной минус описанной диагностики – длительность получения результатов анализа (иногда больше месяца).

Бактериологическое исследование при воспалительном поражении респираторного тракта, как правило, используется для верификации внебольничных форм инфекции (пневмония, актиномикоз и тому подобное).

Анализ проводится в три этапа:

  1. забор мокроты для исследования;
  2. посев жидкости на предварительно подготовленную питательную среду;
  3. пересев необходимой колонии с изучением химических и физических характеристик возбудителя.

При необходимости установления восприимчивости к противомикробным средствам дополнительно выполняется проба на чувствительность. В чашку Петри, где выросла колония микроорганизмов, помещаются бумажные кружки, обработанные антибиотиками. Те препараты, вокруг которых зона разрушения колонии максимальная, рекомендуются к применению конкретному пациенту.

Сбор мокроты на общий анализ может назначаться практически при любом заболевании, которое сопровождается отхаркиванием после кашля. Однако соответствующая диагностика редко применяется при сезонных вирусных инфекциях из-за ненадобности. В указанных случаях кашель и другие симптомы регрессирует при обильном питье и соблюдении постельного режима.

Патологии, требующие проведения анализа мокроты:

  • туберкулез;
  • абсцесс легкого;
  • злокачественные новообразования;
  • гангрена легкого;
  • бронхиальная астма;
  • хронический бронхит;
  • пневмокониозы – профессиональные заболевания бронхолегочной системы.

Подтверждение диагноза осуществляется с помощью лабораторных, физикальных, а также инструментальных методов.

Подготовка пациента к сбору мокроты для анализа – ответственный процесс, от которого может зависеть качество диагностики. При игнорировании простых правил в слизи появляются дополнительные примеси, мешающие лаборанту установить первопричину кашля и респираторной патологии в целом.

Рекомендации:

  • Подготовка емкости. Оптимальными остаются контейнеры, продаваемые в аптеках. В случае отсутствия такого флакона подойдет даже полулитровая банка или небольшой пластиковый бак (не больше 1 л). Однако нужно учесть, что такие емкости крайне неудобны и могут использоваться только в нетипичных обстоятельствах, когда нет доступа к нормальным контейнерам;
  • За два часа до исследования необходимо почистить зубы и прополоскать ротовую полость. Удаление частичек пищи и слюны способствует повышению точности диагностики;
  • Проконсультироваться с врачом. Доктор подробно объяснит, как правильно собрать мокроту на анализ.

Если человек впервые сдает бронхиальную слизь, тогда ему часто требуется несколько попыток для правильного выполнения процедуры.

Кроме описанных выше нюансов подготовки, правила сбора мокроты предусматривают использование утренней порции слизи. Причина – скопление секрета с ночи, что существенно облегчает отхаркивание после кашля. Можно брать бронхиальную слизь и в другое время дня, однако, количество и качество исследуемого материала снижается.

Алгоритм сбора мокроты на общий анализ:

  1. глубокий вдох с задержкой воздуха на 10 секунд;
  2. плавный выдох;
  3. повторные 2 вдоха;
  4. на третьем выдохе воздух необходимо с силой выталкивать из груди, после чего нужно откашляться;
  5. поднести контейнер к нижней губе и сплюнуть слизь.

Указанный алгоритм позволяет собрать необходимое количество исследуемого материала (2-5 мл). При возникновении трудностей рекомендуется наклониться вперед, лечь на бок. Для ускорения отхождения слизи дополнительно можно сделать увлажняющую ингаляцию паром или с применением отхаркивающего средства.

Сбор мокроты описанным способом не исключает попадания слюны в исследуемый образец во время кашля. Альтернативой указанному алгоритму действия остается забор секрета дыхательных путей во время бронхоскопии. Врач с помощью эндоскопа исследует состояние реснитчатого эпителия и может взять необходимое количество жидкости для соответствующего анализа.

Домашний сбор мокроты проводится аналогично описанной выше методике. Важно после попадания слизи в контейнер после кашля плотно закрыть емкость и быстро доставить в лабораторию. В противном случае информативность исследования снижается.

В норме расшифровкой анализа мокроты занимается пульмонолог или фтизиатр. Ниже представлена таблица, в которой указаны характеристики выделяемой после кашля слизи при отсутствии патологии.

После изучения мокроты лаборант заполняет соответствующую форму (нажми, чтобы увеличить).

Указанный документ может выглядеть немного по-другому. Все зависит от конкретной лаборатории. Ниже представлены варианты бланков исследования с предполагаемыми диагнозами.

Расшифровка: розовый цвет слизистой мокроты в сочетании с присутствием микобактерий туберкулеза (МТ+) указывает на наличие соответствующей патологии.

Расшифровка: учитывая наличие лейкоцитов, слизисто-гнойную консистенцию и большое количество кокковой флоры, наиболее вероятным диагнозом остается хронический бактериальный бронхит.

Расшифровка: в первую очередь внимание нужно обратить на большое количество мокроты (50 мл). В сочетании с изобилием лейкоцитов, которые покрывают все поле зрения микроскопа, и присутствием эластичных волокон можно судить о наличии абсцесса, который прорвался в бронх.

Для того чтобы расшифровывать анализ мокроты и подобрать адекватную терапию от кашля рекомендуется консультация пульмонолога или фтизиатра. Участковый терапевт и семейный врач также могут справиться с простыми вариантами респираторной патологии.

Кашель – проблема, которая часто протекает на фоне отхаркивания слизи. Анализ мокроты – простой и эффективный метод уточнения предполагаемого диагноза. Самостоятельно соответствующее исследование не гарантирует полноценной оценки функционирования респираторной системы пациента, но в сочетании с базовыми процедурами упрощает выбор адекватного лечения для конкретного больного.

источник