Г.Б. Ермолина, Е.В. Беляева, Г.К. Дегтева, Н.В. Меньков, Е.В. Борискина
НИИ эпидемиологии и микробиологии им. академика И.Н. Блохиной;
государственная медицинская академия, Нижний Новгород
Гнойно-воспалительные заболевания (ГВЗ) дыхательных путей продолжают оставаться одной из актуальных проблем современной медицины. Этиологическими агентами ГВЗ являются условно-патогенные микроорганизмы, многие из которых принадлежат к транзиторной флоре организма человека.
Верхние дыхательные пути являются важнейшими входными воротами для патогенных микроорганизмов, вызывающих инфекции верхних дыхательных путей (риниты, фарингиты, синуситы, ларингиты, трахеиты) и нижних отделов дыхательного тракта (бронхиты, пневмонии). В последние годы к числу наиболее распространенных заболеваний человека относятся хронические обструктивные болезни легких (ХОБЛ). В структуре заболеваемости они входят в число лидирующих по числу дней нетрудоспособности, причинам инвалидности и занимают четвертое место среди причин смерти. ХОБЛ — собирательное понятие, которое объединяет группу хронических болезней дыхательной системы: хронический обструктивный бронхит и эмфизему легких.
Из многочисленных зарубежных исследований [5—10] известно, что этиологически значимыми микроорганизмами при ГВЗ нижних дыхательных путей являются Streptococcus pneumoniae, Haemophylus influenzae, Branhamella catarrhalis, Staphylococcus aureus, Streptococcus pyogenes.
В отечественной литературе при оценке роли условно-патогенных микроорганизмов в развитии ГВЗ дыхательных путей авторы в основном ссылаются на иностранные источники [1—4]. Лишь по нескольким регионам имеются собственные сведения.
Так, по данным Н.Е. Марусиной с соавт. [11], при изучении этиологической структуры неспецифических заболеваний легких у детей города Казани (обследовано 104 ребенка) с помощью бактериологического анализа смывов бронхов установлено, что микрофлора в 95% случаев представлена монокультурами, а в 5% — ассоциациями бактерий. Наиболее часто выделялись стрептококки (46,8%), на втором месте — псевдомонады (16,4%). Реже выделялись гемофилы (7,8%), а также золотистый стафилококк, нейссерии, моракселлы, ацинетобактеры, цитробактеры, энтеробактеры, серрации, эшерихии, коринеформные анаэробы (1,2—2,4%). Микробные ассоциации были представлены сочетанием S. aureus и Pseudomonas aeruginosa или пневмококка, энтерококка, энтеробактера (5%).
В настоящее время, по данным ряда авторов [12—15], в развитии воспаления дыхательных путей в 8—39% случаев участвуют атипичные микроорганизмы, такие как Chlamydia pneumoniae, Mycoplasma pneumoniae. Эти микроорганизмы имеют большое значение в возникновении трахеобронхитов и пневмоний у детей раннего возраста. Клиническая картина хламидийной и микоплазменной инфекции нижних дыхательных путей характеризуется отсутствием выраженной лихорадки, скудностью физикальных данных, частым сочетанием бронхита и пневмонии с воспалением верхних дыхательных путей — фарингитом, синуситом, отитом.
По данным А.И. Синопальникова [16], основными возбудителями при нетяжелой пневмонии оказываются пневмококк, гемофильная палочка, микоплазма и хламидия. В случае тяжелой, тем более жизнеугрожающей, пневмонии пневмококк остается лидирующим возбудителем, роль гемофильной палочки возрастает, но так и остается вторичной, а вот микоплазма и хламидия по мере утяжеления болезни как бы отступают назад, предоставляя место основным возбудителям — легионелле (при тяжелой пневмонии) и представителям семейства Enterobacteriaceae — Escherichia coli и Klebsiella pneumoniae.
В большинстве исследований [2, 4, 15, 17—21] отмечено, что при бактериальных инфекциях нижних дыхательных путей основным возбудителем (в более половины случаев) является гемофильная палочка. Большое значение имеют также S. pneumoniae и Moraxella catarrhalis. Причиной обострения могут являться грамотрицательные бактерии, S. aureus, а также внутриклеточные возбудители, такие как C. pneumoniae, M. pneumoniae.
Основными бактериальными возбудителями острых инфекций верхних дыхательных путей, по данным Л.С. Страчунского и Е.И. Каманина [1], являются S. pneumoniae и H. influenzae. Гораздо реже выделяются M. catarrhalis, b-гемолитический стрептококк группы А. Неясно значение вирусов, которые при специальных исследованиях в 6% случаев выделяются как единственный возбудитель.
По данным Е.И. Шмелева [22], при микробиологических исследованиях дистальных отделов дыхательных путей с использованием специальной бронхологической техники, защищающей пробы от загрязнения, у больных ХОБЛ в 20—30% случаев выявляются пневмотропные вирусы (респираторно-синцитиальный вирус, аденовирусы, вирусы гриппа), у 50% — бактерии, причем наиболее часто S. pneumoniae, H. influenzae и M. catarrhalis.
А.Ю. Миронов с соавт. [23, 24] при исследовании обсемененности верхних дыхательных путей у больных Московской области со слизистой оболочки носа выделили микроорганизмы, принадлежащие к 28 родам и 51 виду (всего 6608 культур). Чаще других встречались S. epidermidis, существенно реже S. aureus, эпизодически S. haemolyticus, E. coli, грибы Candida albicans, S. pyogenes, Streptococcus группы viridans, Enterobacter cloaceae, Corynebacterium pseudodiphthericum и др. Всего на долю грамположительных кокков приходилось 79,7% от общего количества выделенных культур с явным преобладанием стафилококков (71,8%). Таким образом, в обсемененности слизистой оболочки передних отделов полости носа ведущая роль принадлежит грамположительным коккам — S. epidermidis и S. aureus.
В этих же исследованиях со слизистой оболочки зева были выделены 17402 культуры, относящиеся к 28 родам и 63 видам. Среди них наиболее часто встречались S. epidermidis, S. aureus, Streptococcus группы viridans, S. pyogenes, C. albicans, E. coli, Neisseria sicca, Neisseria mucosa, S. pneumoniae, E. cloacae, K. pneumoniae, S. saprophyticus. Всего на долю грамположительных кокков приходилось 67% от общего количества выделенных культур, из них на стафилококки — 30%, стрептококки — 29,4%. Таким образом, в обсемененности слизистой оболочки зева ведущая роль принадлежала грамположительным коккам, в основном эпидермальному и золотистому стафилококкам и стрептококкам группы viridans. Следует также отметить роль грамотрицательных кокков — бактерий рода Neisseria, на долю которых приходилось 11% , и грибов рода Candida, составляющих 12% от общего количества культур.
Результаты проведенного нами исследования качественного и количественного состава микрофлоры у больных с воспалительными процессами дыхательных путей в Н. Новгороде в основном совпадали с данными по Московской области. При обследовании 238 больных наблюдались различные дисбиотические состояния слизистых оболочек верхних дыхательных путей — от нормы с выделением стрептококков группы viridans, бактерий рода Neisseria, Stomatococcus, единичных изолятов S. epidermidis до III, тяжелой, степени дисбиоза (обильный рост условно-патогенных бактерий в ассоциации с грибковой флорой).
При дисбиозах слизистой оболочки носа преобладали коагулазоотрицательные стафилококки (КОС) — S. epidermidis, S. haemolyticus, S. hominis, S. xylosus (49,4%), доля S. aureus составляла 28,5%, в меньших количествах выделялись дифтероиды (9,5%), моракселлы (4,2%), гемофильные палочки (2,4%), b-гемолитические стрептококки (1,2%), энтеробактерии (0,6%) и грибы рода Candida (0,6%).
При дисбиозах слизистой оболочки зева преобладали S. aureus (34,3%) при значительном сокращении доли КОС — S. epidermidis (4,6%), S. Haemolyticus (1,8%), возрастала роль b-гемолитических стрептококков (16,2%), энтеробактерий — E. coli (2,8%), Klebsiella spp. (3,7%), E. aerogenes (1,4%), грибов рода Candida (25,5%). Значительно реже встречались дифтероиды (0,9%), моракселлы (0,9%), гемофильные палочки (0,5%), но выделялись неферментирующие глюкозу грамотрицательные бактерии — P. aeruginosa (2,3%), Acinetobacter spp. и Alcaligenes spp. (по 0,5%).
При исследовании обсемененности нижних дыхательных путей А.Ю. Мироновым с соавт. [23, 24] из мокроты были выделены условно-патогенные микроорганизмы, представленные 27 родами и 63 видами. Среди них наиболее часто встречались Streptococcus группы viridans, S. epidermidis, S. pyogenes, E. coli, дрожжеподобные грибы (в т. ч. C. albicans), S. aureus, S. pneumoniae, Enterococcus faecalis, K. pneumoniae, E. aerogenes, N. sicca, B. catarrhalis, E. faecium, N. mucosa. Прочие виды выделялись с частотой менее 1%. Всего на долю грамположительных кокков приходилось 53,6% от общего числа выделенных культур, из них на стрептококки — 28,4%, стафилококки — 16,8 %. Таким образом, в развитии ГВЗ бронхов и легких, по данным Московской области [23, 24], ведущая этиологическая роль принадлежит грамположительным коккам — стрептококкам, в основном группы viridans, а также стафилококкам, в основном эпидермальным. Следует также отметить роль грибов (плесневые и дрожжеподобные) — 11,5% и грамотрицательных кокков рода Neisseria — 9,6%.
По нашим данным, при бронхоскопическом обследовании 47 больных с хроническими бронхитами, пневмонией, бронхиальной астмой и раком легких были выделены a-гемолитические стрептококки (29,4%), нейссерии (13,7%), стоматококки (9,5%), флавобактерии (7,4%), b-гемолитические стрептококки (4,2%), гемофильные палочки (2,1%), S. aureus(8,4%), P. aeruginosa (3,2%), Klebsiella sp. (5,3%), грибы рода Candida (8,4%) и единичные изоляты E. aerogenes, Citrobacter koseri, Serratia marcescens, S. xylosus, Acinetobacter lwoffi, дифтероидов и плесневых грибов.
У 16,4% обследованных в бронхоальвеолярном лаваже не обнаружено бактериальной и грибковой флоры в значимых количествах (более 102 клеток/мл).
Из выделенной микрофлоры основную массу изолятов составляли a-гемолитические стрептококки (у 67,2% больных), причем большая часть их встречалась в ассоциациях (82,9%) — с 1—2, а в некоторых случаях с 5 видами микроорганизмов. Наиболее часто микробные ассоциации составляли представители нормальной флоры верхних дыхательных путей — непатогенные нейссерии, стоматококки.
Сравнительный анализ результатов исследований микрофлоры больных с воспалительными процессами дыхательных путей в Московской области и наших данных позволяет выявить ряд закономерностей.
1. Наиболее часто при ГВЗ респираторного тракта выделяются грамположительные кокки. Однако их этиологическая значимость в развитии воспаления по мере продвижения от верхних к нижним дыхательным путям уменьшается. Так, доля грамположительных кокков на слизистой оболочке носа составляет 80% всей выделенной микрофлоры, зева — 60%, в мокроте — 50%.
Отмечаются изменения видового и родового состава кокковой микрофлоры при ГВЗ респираторного тракта. Так, на слизистой оболочке носа среди грамположительных кокков преобладают стафилококки (70—80%), со слизистой оболочки зева они выделяются в меньших количествах (30—40%), а в пробах мокроты они составляют всего лишь 8—16%.
Среди стафилококков, как возбудителей ГВЗ респираторного тракта, большую роль играют КОС, частота выделения которых уменьшается от верхних к нижним дыхательным путям. Так, при ГВЗ носа КОС выделяются в 47—49%, в зеве — 7—18%, в легких и бронхах — до 11%. Наиболее часто идентифицированным видом при ГВЗ респираторного тракта является S. epidermidis.
2. В развитии ГВЗ нижних дыхательных путей на долю кокковой грамотрицательной микрофлоры (нейссерий и бранхамелл) приходится 11—13,7%.
3. В этиологической структуре ГВЗ зева большой удельный вес принадлежит грибковой флоре (до 25%), тогда как при ГВЗ носа грибы выделяются лишь в 0,5—4,5% случаев, а при заболеваниях нижних дыхательных путей — в 8—11,5%.
4. Этиологическая роль неферментирующих глюкозу грамотрицательных бактерий в развитии ГВЗ респираторного тракта увеличивается по мере продвижения от верхних к нижним дыхательным путям, составляя 1,3% при ГВЗ носа, 1,6—3,3% — при ГВЗ зева, 2,7—3,3% — при ГВЗ легких и бронхов.
5. Гемофильная палочка не является этиологически значимой при ГВЗ респираторного тракта как в Московской области, так и в Нижнем Новгороде.
6. Среди изолятов стрептококков, выделенных от больных с ГВЗ как верхних, так и нижних отделов респираторного тракта, преобладают штаммы Streptococcus группы viridans, затем S. pyogenes и лишь затем S. pneumoniae.
Таким образом, данные исследований в двух регионах — Н.Новгороде и Московской области показывают, что пневмококки в настоящее время не являются этиологически значимыми возбудителями при ГВЗ респираторного тракта, большую роль играют стрептококки группы viridans и энтерококки, причем частота выделения тех и других от больных с ГВЗ респираторного тракта увеличивается по мере продвижения воспаления от верхних к нижним дыхательным путям.
Указанные особенности микрофлоры, выявленные у больных с различными заболеваниями дыхательных путей, необходимо учитывать при назначении соответствующих антибактериальных препаратов.
источник
Показания к проведению исследования: воспалительные заболевания нижних отделов дыхательных путей. Диагностика инфекционных заболеваний: пневмококковой инфекции, сибирской язвы, чумы, туберкулеза.
Взятие исследуемого материала: перед сбором мокроты больному предлагают почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой. Предпочтительным является исследование утренней порции мокроты. Мокроту собирают в стерильную широкогорлую склянку. Удобно использовать для этих целей «карманные плевательницы». Так как маленькие дети не умеют отхаркивать мокроту и заглатывают её, для диагностики туберкулеза, у них исследуют промывные воды желудка.
Исследование промывных вод бронхов проводят при отсутствии или скудности мокроты. Это связано не только с технической сложностью взятия этого вида материала, но и с меньшей диагностической ценностью результата, из-за его значительного разбавления (концентрация микроорганизмов в промывных водах в 10-1000 раз меньше чем в мокроте). Простейший метод взятия трахеобронхиального смыва следующий: гортанным шприцем с помощью аппарата Боброва в трахею вводят около 10 мл стерильного физиологического раствора, и после возникновения кашля собирают откашлянный трахеобронхиальный смыв. У маленьких детей через катетер вводят в трахею 5-10 мл физиологического раствора и затем отсасывают трахеобронхиальный смыв [9].
Бронхиальные смывы могут быть получены при бронхоскопии. В этом случае не рекомендуется вводить в бронх более 5 мл физиологического раствора.
Наиболее достоверные результаты достигаются при взятии материала непосредственно из очага инфильтрации или абсцесса с помощью проводимой под рентгенологическим контролем трансторокальной пункции. По мнению Л.А.Вишняковой и соавт. [9], «тяжесть данной манипуляции компенсируется значительно более точным определением этиологии и этиотропной терапии заболевания».
Методы исследования. Для приготовления мазка из мокроты, распределенной тонким слоем по дну чашки Петри, с помощью двух игл или пинцета выбирают слизистые либо гнойные комочки и переносят их на середину предметного стекла. Затем берут второе стекло и накладывают поверх первого. Комочки мокроты растирают между двумя стеклами до тех пор, пока не получится достаточно тонкий мазок. При этом, во избежание инфицирования рук работающего, и на первом и на втором стеклах мазки не должны занимать более 1/2-2/3 поверхности. Препараты высушивают и фиксируют над пламенем. Один из мазков окрашивают по Граму, второй микроскопируют неокрашенным, для выявления друз актиномицетов или мицелия грибов.
При микроскопии мазка необходимо обратить внимание на наличие и характер клеточных элементов. Хотя их оценка — задача, решаемая при клиническом анализе мокроты, но их выявление позволяет бактериологу проверить правильность взятия материала и составить представление о характере патологических изменений. Для воспалительных процессов в нижних отделах дыхательного тракта характерно наличие гранулоцитов. Присутствие в материале большого количества эпителиальных клеток, особенно в сочетании с отсутствием гранулоцитов, свидетельствует о том, что материал был взят неправильно (с примесью слюны). В этом случае исследование следует повторить. Для острой инфекции характерно наличие в мокроте 1-2 видов бактерий, расположенных вблизи гранулоцитов. Микроорганизмы — контаминанты мокроты, попавшие в нее из ротовой полости, напротив, чаще расположены вблизи эпителиальных клеток.
Микроскопической оценке правильности взятия материала многие микробиологи придают чрезвычайно большое значение. Американским руководством по клинической микробиологии [81] рекомендовано применение для этих целей одной из специально разработанных количественных шкал оценки. Использование каждой из них предполагает микроскопию окрашенного по Граму мазка из гнойной части мокроты под малым увеличением (объектив х10). При использовании шкалы Barlett просматривают 20-30 полей зрения, давая каждому оценку путем суммирования баллов из таблицы 7. Затем рассчитывают средний балл: складывают все начисленные баллы и делят сумму на количество просмотренных полей. Если полученный результат равен 0 или менее вероятность воспаления мала или мокрота вероятно контаминирована в ротовой полости. Такие образцы не подлежат бактериологическому исследованию, и взятие мокроты должно быть повторено.
При оценке мокроты по Murray Washington принадлежность образца к определенной группе устанавливается по таблице 8. При этом бактериологическому исследованию подлежат только образцы принадлежащие к 4-5 группе.
Схема Barlett оценки правильности взятия мокроты
(цитируется по [81])
| Тип клеток и их количество в поле зрения при микроскопии с объективом х10 | Балл | |
| Нейтрофилы | 25 | +2 |
| Присутствие слизи | +1 | |
| Эпителиальные клетки | 10-25 | -1 |
| >25 | -2 |
Схема Murray Washington оценки правильности взятия мокроты
(цитируется по [81])
| Группа | Количество в поле зрения при микроскопии с объективом х10 | |||||||||||||
| Эпителиальных клеток | Лейкоцитов | |||||||||||||
| 10-25 | ||||||||||||||
| 10-25 | ||||||||||||||
| о С. Промывные воды бронхов засевают аналогичным образом, но без предварительной отмывки гнойных комочков. В основе количественного метода лежит высев на плотные питательные среды разведений, приготовленных из гомогенизата мокроты. Для этого к 1 мл мокроты добавляют 9 мл питательного бульона или 2% пептонной воды и гомогенизируют в банке со стеклянными бусами 20 минут[1][5] или путем растирания в ступке с кварцевым песком (в этом случае бульон добавляют небольшими порциями в процессе обработки). Приготовленный гомогенат мокроты принимается за разведение материала 10 -1 . Из него готовят ряд серийных десятикратных разведений до 10 -7 в бульоне или в пептонной воде. Каждое последовательное разведение готовят новой пипеткой! Из “нечетных” разведений (10 -1 ;10 -3 ; 10 -5 ; 10 -7 ) засевают по 0,1 мл на чашки с 5% кровяным агаром и шоколадным агаром. Посевы рекомендуется инкубировать в эксикаторе “со свечой” при 37 о С в течение суток. Дополнительно можно провести посев на среды Эндо, Сабуро, ЖСА из исходного разведения 10 -1 . Количество микроорганизмов определяют в максимальном разведении, в котором еще удалось обнаружить рост микроорганизмов. Сопоставление эффективности количественного и качественного методов исследования мокроты было проведено А.Н.Калюк и К.Н.Полянской [23]. По их мнению, оба метода достаточно информативны, а полученные с их помощью результаты тесно коррелируют друг с другом. В то же время исследование мокроты количественным методом без предварительной отмывки гнойных комочков снижает информативность исследования и может способствовать увеличению выделения пневмококков, вегетирующих на слизистых оболочках носоглотки. На необходимость отмывки мокроты указывают и Т.С.Агеева и соавт. [1], однако по их данным, напротив, рост пневмококков и гемофильных палочек, при посеве не отмытой мокроты ингибируется сопутствующей микрофлорой. Для гомогенизации мокроты могут быть использованы химические методы. К ним относятся обработка мокроты муколитиками (ацетилцистеин, мукосальвин и др.) или ферментами (трипсин, хемотрипсин, панкреатин). По мнению Л.А.Вишняковой и соавт. [9], наиболее эффективным является применение ацетилцистеина. При этом в неметаллическом сосуде с помощью пипетки с грушей в течение 1-2 минут тщательно перемешивают равные объемы мокроты и 0,5% раствора ацетилцистеина. Применение ацетилцистеина особенно целесообразно для выделения Haemophilus influenzae, так как позволяет снизить ингибирующее действие муцина на гемофильные палочки. Ферменты могут оказывать повреждающее действие на микроорганизмы, кроме того процесс гомогенизации мокроты с их помощью наиболее продолжителен по сравнению с другими химическими и механическими методами. Описаны многочисленные модификации количественных методов посева мокроты. Ряд авторов использовал для этой цели различные модификации посева петлей на сектора с использованием калиброванной петли на 0,01 мл по аналогии с методом Gould, широко используемым при исследовании мочи [1, 58]. В.В.Акользин [2] предложил использовать калиброванные петли не только для посева, но и для приготовления разведений. Однако все эти методы не получили широкого распространения. Оценка диагностической значимости полученных результатов. Оценка результатов бактериологического исследования проводится на основании сочетанного анализа информации о видовом составе микрофлоры (по данным бактериоскопического и бактериологического исследований), численности отдельных видов микроорганизмов, стабильности их выделения во времени, клинических данных и результатов терапии. В целом лидирующее положение в этиологии внебольничных пневмоний занимают пневмококки. Например, по данным, Л.А.Вишняковой и соавт. [10] 97,1% пневмоний у детей в возрасте от 1 месяца до 14 лет имели пневмококковую этиологию. При оценке результатов бактериологического исследования необходимо принимать во внимание господствующее значение определенных видов микроорганизмов в типичных клинических ситуациях. Так, крупозная пневмония вызывается пневмококками; лобарная пневмония чаще всего пневмококками, клебсиеллами, стафилококками; очаговые пневмонии — пневмококками, гемофильными палочками, энтеробактериями, синегнойными палочками [18]. Первичная атипичная пневмония чаще всего обусловлена микоплазмами, легионеллами или хламидиями; пневмония на фоне хронического бронхита — гемофильной палочкой, стрептококками; пневмония на фоне гриппа — стафилококками, пневмококками, гемофильными палочками; аспирационная пневмония — энтеробактериями, синегнойной палочкой, анаэробами; пневмония на фоне иммунодефицита — энтеробактериями, стафилококками [45]. Госпитальная пневмония у новорожденных (0-7 дней) чаще всего связана со Streptococcus spp., Escherichia coli, реже: Staphylococcus aureus, Chlamydia trachomatis, Pseudomonas spp. [70]. Острые бронхиты и бронхиолиты, вызываются, как правило, вирусами или микоплазмами, но со 2-3 дня заболевания осложнятся наслоением бактериальной инфекции (чаще всего обусловленной пневмококками или гемофильной палочкой) [5]. Бронхолегочная инфекция у больных муковисцидозом наиболее часто вызывается синегнойной палочкой [24]. Господствующая роль в этиологии острых инфекционных деструкций легких принадлежит несорообразующим анаэробам, стафилококкам [54]. Для ориентировочной оценки численности микроорганизмов в мокроте и их этиологической роли используется следующая схема: I — очень скудный рост — рост единичных колоний (до 10); II — скудный рост — рост 10 — 25 колоний; III — умеренный рост — рост множества сосчитываемых колоний (не менее 50); IV — обильный рост — сплошной рост не сосчитываемых колоний. I и II степени роста свидетельствуют в пользу загрязнения или носительства, а III и IV — в пользу этиологической значимости данного микроорганизма [43]. Более сложную схему оценки этиологии инфекционного процесса предлагают Л.А.Вишнякова и соавт. [9]. Её применение подразумевает выполнение лабораторией количественного посева мокроты. Согласно данной схемы этиология острой пневмонии может быть определена на основании одного из следующих критериев: Обнаружение монокультуры S.pneumoniae в крови или в плевральном эксудате. Выделение пневмококка или гемофильной палочки в количестве 10 6 кл./мл в мокроте или 10 4 — в трахеобронхиальном смыве. Выявление в течение заболевания при помощи реакции непрямой иммунофлуоресценции 4-кратного или более значительного изменения первоначального титра антипневмококковых антител или титра 1:320 для детей 0-3 лет или 1:640-1:1280 для взрослых больных. При обследовании больных острой пневмонией на поздних сроках болезни и на фоне этиотропной антибактериальной терапии обнаружение в мокроте или трахеобронхиальных смывах низких концентраций (менее 10 6 или 10 4 кл./мл) пневмококка с последующим снижением их не менее чем в 100 раз или при одновременном выявлении антипневмококковых антител в титре 1:640. При возникновении вторичного инфекционного процесса выделение в 2-3 последующих исследованиях с интервалом 2-5 дней одного и того же вида условно-патогенных бактерий в концентрации 10 6 кл./мл в мокроте или 10 4 кл/мл в трахеобронхиальном смыве в сочетании с выявлением местной или системно-иммунологической реакции организма на этот возбудитель. Обнаружение пневмококкового антигена в крови, плевральном эксудате или моче. Этиологию внебольничных пневмоний с помощью стандартных методов лабораторного исследования не удается установить в 30-50% случаев. По мнению А.И.Синопальникова и соавт. [59], это обусловлено рядом обстоятельств: · примерно у 30% больных пневмонический кашель имеет не продуктивный характер; · часть возбудителей (Mycoplasma pneumoniae, Chlamydia pneumoniae, Legionella pneumoniae и др.) не могут быть обнаружены с помощью рутинных методов (табл. 9); · в ряде случаев трудно правильно отдифференцировать «резидентную» флору и возбудитель; · не всегда удается получить мокроту, пригодную для бактериологического исследования (см. выше); · часть больных получает антибиотики до начала бактериологического обследования. Некоторые специальные методы диагностики заболеваний, обусловленных отдельными пневмотропными микроорганизмами.
В зарубежной практике при диагностике пневмоний часто используется исследование крови. Безусловно, обнаружение возбудителя в крови позволяет наиболее точно судить об этиологии процесса, однако, по данным Л.А.Вишняковой и соавт.[10], исследования крови эффективны лишь в первые 2-3 дня болезни и бывают положительными только у 10-25% больных. Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском: Лучшие изречения: Увлечёшься девушкой-вырастут хвосты, займёшься учебой-вырастут рога 9702 — 193.124.117.139 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь. Отключите adBlock! источник В честь Альфреда Нейссера, открывшего в 1879 году возбудителя гонореи, назвали большую группу однотипных бактерий. Сокращённо её называют Neisseria spp или Neisseria species (бактерии рода Нейссерия). Гонококк является наиболее характерным представителем этой «семьи». Важное медицинское значение имеет другой близкий родственник – Нейссерия Менингитидис (Neisseria meningitidis), вызывающий бактериальный менингит или острое воспаление оболочек головного мозга. Другие же представители семейства, хотя и обитают на слизистых оболочках человеческого организма, агрессивных свойств не проявляют. По этой причине их называют непатогенными нейссериями. Это значит, что данные микробы обитают в горле, на слизистых оболочках зева, носоглотки в нормальных условиях у здоровых людей.
Что есть общего у непатогенных и патогенных нейссерий? Практически все они обитают на слизистых оболочках верхних дыхательных путей (за исключением гонококков и Neisseria cinerea, обитающих и на слизистой оболочке мочеполовой системы). Почти все нейссерии имеют округлую форму, напоминающую кофейное зерно, и располагаются парно. При окраске по Грамму окрашиваются в красный цвет (грамотрицательные бактерии). Нейссерии не способны передвигаться самостоятельно. Обладают способностью расщеплять простые сахара. Основное отличие патогенных нейссерий проявляется в способности проникать через слизистые оболочки и попадать в подслизистое пространство, а оттуда в кровь. Более того, и возбудитель менингита, и возбудитель гонореи имеют защитные механизмы, позволяющие обманывать иммунную систему. Непатогенные нейссерии такой возможностью не обладают. Neisseria elongata – самый древний представитель семейства нейссерий, обитающий в организме человека. По этой причине бактерия имеет другое строение и больше похожа на палочку. Neisseria cinerea вызывает похожие на гонорею симптомы. Возможно, причина в том, что она идентична гонококку на 50%, по данным генетического анализа. Neisseria lactamica обычно обитает в носоглотке детей. Её присутствие в организме защищает от менингококковой инфекции. Neisseria subflava обитает в зеве здоровых людей, но известно, что эта бактерия способна вызывать менингит у больных, перенесших оперативное вмешательство на головном мозге. Лечение проводится как при менингококковом воспалении мозговых оболочек. Кроме того, Нейссерия субфлава и neisseria perflava способны вызывать сепсис или заражение крови. Что это такое? Слишком слабый организм не способен сдерживать микробов на “границе”, которой являются слизистые оболочки. Бактерии проходят через них и попадают в кровь, с током которой разносятся по всему организму и вызывают тотальный воспалительный процесс. Neisseria mucosa обитает на слизистой оболочке носоглотки. Известно, что эта бактерия способна вызывать сепсис. Описаны случаи заражения крови у здоровых молодых людей, возникающие из-за неё. Входными “воротами” в таких случаях стал банальный пирсинг языка. Neisseria sicca (Нейссерия сикка) считается нормальным обитателем носоглотки. Несмотря на это известно, что эта бактерия способна вызывать сепсис, пневмонию, воспаление сердца, мозговых оболочек и другие заболевания у ослабленных больных. Neisseria flavescens – это самый безобидный представитель непатогенных нейссерий, редко вызывающий инфекции. Можно ли считать, что непатогенные нейссерии в горле, в зеве – это безопасно? Почему их назвали непатогенным, несмотря на то, что они способны вредить человеку? Нужно ли лечение, если у больного обнаружены представители neisseria species в горле, в зеве (например, та же нейссерия сикка)? Как лечить безопасную инфекцию? Если человек практически здоров, его организм “не по зубам” этим не всегда дружелюбным микробам. Бакпосев, выявивший neisseria spp. в мазках из зева или носоглотки, не является показанием для лечения. Для здорового человека больший риск представляют возможные ошибки, часто возникающие из-за сходства гонококков с непатогенными нейссериями (возможен ложноположительный результат на гонорею). В то же время эти микробы могут быть опасны людям с иммунодефицитными заболеваниями (ВИЧ, СПИД), пациентам, получающим химиотерапию по поводу онкологических патологий, или принимающим препараты, подавляющие иммунитет (например, при трансплантации органов или из-за аутоиммунного заболевания). источник Подскажите пожалуйста какое нужно лечение результат анализа мазка из зева: Добрый день. Жалоб нет, но иногда (не часто) ощущается першение в горле. Подскажите, пожалуйста, не требуется ли санация, не опасно ил это? Ирина Юрьевна, большое спасибо за ответ. Добрый день. Ребенку 8 лет. Болеем раз 10 в год. (першение, заложенность носа, высокая температура 38.7) Функция миндалин: Смыв (миндалина правая): Тонзилоцитограмма: Риноцитограмма: Так же сдавали ОАК: Сообщите пожалуйста, на сколько все у нас не хорошо? Здравствуйте, уже несколько месяцев беспокоит субфебрилитет, началось все с гайморита в июле 2017, делали прокол, курс антибиотиков, антигистаминные препараты, потом было обострение в декабре 2017 пролечил, делал диагностическую пункцию ничего не было по снимкам гайморовых пазух тоже не выявлен гайморит, отек практически прошел, и с конца года беспокоит температура начинается с 11 -12 00, снижается часов в 23 00, Сдавал все анализы -в норме, кроме как в общем анализе крови относительные лимфоциты повышены -47 относительные нейтрофилы понижены -36, И совсем недавно сдал мазок зева по результатам Посев на флору и АЧ Подскажите требуется ли лечение и может ли превышение этих норм быть причиной субфебрилитета? Здравствуйте, добрый доктор). Особо ничего не беспокоит, болею редко. Но сделал бактериологическое исследование миндалин, и вышли такие результаты: Чувствительны к: Амоксициллин/клавулановая кислота. R — резистентный Вопрос: Как и чем лучше лечить? И опасно ли при таких бактериях поцелуи и оральный секс, можно ли заразить партнера? МОЙ Чувствительность бактериофагам пр-ва ФГУП «НПО «Микроген» Название/показатель Зона подавления роста Чувствительность Мужа Название/показатель Зона подавления роста Чувствительность источник Мазок из зева берут для проведения стандартного бактериологического исследования с целью изучения микробного состава и количественного соотношения микрофлоры носоглотки. Это метод лабораторной диагностики, позволяющий выявить возбудителей инфекционно-воспалительных заболеваний верхних отделов респираторного тракта. Для определения этиологии инфекции необходимо провести бактериологическое исследование отделяемого носа и зева на микрофлору. Специалисты направляют больных с хроническим ринитом, тонзиллитом и фарингитом в микробиологическую лабораторию, где стерильным ватным тампоном отбирают биоматериал из носа и зева и проводят его исследование. По результатам анализа специалист определяет возбудителя патологии и его чувствительность к антибиотикам. Причины и цели взятия мазка на микрофлору из зева и носа:
В баклабораторию направляют больных для исследования материала из носоглотки с целью исключения или подтверждения конкретной инфекции. В направлении указывают микроорганизм, наличие которого необходимо подтвердить или опровергнуть. На слизистой оболочке зева и носа обитает множество микроорганизмов, составляющих нормальную микрофлору носоглотки. Исследование отделяемого горла и носа показывает качественное и количественное соотношение микробов, обитающих в данном локусе. Типы микроорганизмов, обитающих на слизистой носоглотки у здоровых людей:
При патологии в мазке из зева и носа можно обнаружить такие микроорганизмы:
Чтобы результаты анализа были максимально достоверными, необходимо правильно отобрать клинический материал. Для этого следует подготовиться. За две недели до забора материала прекращают прием системных антибиотиков, а за 5-7 суток рекомендуют перестать использовать антибактериальные растворы, ополаскиватели, спреи и мази для местного применения. Сдавать анализ следует натощак. Перед этим запрещено чистить зубы, пить воду и жевать жвачку. В противном случае результат анализа может оказаться ложным. Мазок из носа на эозинофилы сдают также натощак. Если человек поел, необходимо подождать как минимум два часа.
Чтобы взять мазок из носа, необходимо усадить пациента напротив и слегка запрокинуть ему голову. Перед анализом необходимо очистить нос от имеющейся слизи. Кожу ноздрей обрабатывают 70% спиртом. Стерильный тампон вводят поочередно сначала в один, а затем в другой носовой ход, проворачивая инструмент и плотно прикасаясь к его стенкам. Тампон быстро опускают в пробирку и направляют материал на микроскопическое и микробиологическое исследование. Исследуемый материал наносят на предметное стекло, фиксируют в пламени горелки, окрашивают по Граму и изучают под микроскопом с иммерсионным маслом. В мазке обнаруживают грамотрицательные или грамположительные палочки, кокки или коккобациллы, изучают их морфологические и тинкториальные свойства. Микроскопические признаки бактерий — важный диагностический ориентир. Если в мазке находятся грамположительные кокки, расположенные скоплениями, напоминающими гроздья винограда, предполагают, что возбудителем патологии является стафилококк. Если кокки окрашены по Граму положительно и располагаются в мазке цепочками или парами, возможно это стрептококки; грамотрицательные кокки — нейсерии; грамотрицательные палочки с закругленными концами и светлой капсулой — клебсиеллы, мелкие грамотрицательные палочки — эшерихии, синегнойные палочки. Дальнейшее микробиологическое исследование продолжают с учетом микроскопических признаков. Каждый микроорганизм растет на своей «родной» среде с учетом рН и влажности. Среды бывают дифференциально-диагностическими, селективными, универсальными. Их основное предназначение – обеспечение питания, дыхания, роста и размножения бактериальных клеток. Посев исследуемого материала необходимо проводить в стерильном боксе или ламинарном шкафу. Медработник должен быть одет в стерильную одежду, перчатки, маску и бахилы. Это необходимо для соблюдения стерильности в рабочей зоне. В боксе следует работать молча, аккуратно, обеспечивая личную безопасность, поскольку любой биологический материал считается подозрительным и заведомо заразным. Мазок из носоглотки засевают на питательные среды и инкубируют в термостате. Спустя несколько суток на средах вырастают колонии, имеющие различную форму, размер и цвет. Существуют специальные питательные среды, которые являются селективными для конкретного микроорганизма.
Материал втирают тампоном в среду на небольшой площадке размером 2 кв. см., а затем с помощью бактериологической петли штрихами рассевают по всей поверхности чашки Петри. Посевы инкубируют в термостате при определенной температуре. На следующий день посевы просматривают, учитывают количество выросших колоний и описывают их характер. Пересевают отдельные колонии на селективные питательные среды для выделения и накопления чистой культуры. Микроскопическое изучение чистой культуры позволяет определить размер и форму бактерии, наличие капсулы, жгутиков, спор, отношение микроба к окрашиванию. Идентифицируют выделенные микроорганизмы до рода и вида, при необходимости проводят фаготипирование и серотипирование. Результат исследования врачи-микробиологи выписывают на специальном бланке. Для расшифровки результата мазка из зева требуются значения показателей. Название микроорганизма состоит из двух латинских слов, обозначающих род и вид микроба. Рядом с названием указывают количество бактериальных клеток, выраженное в особых колониеобразующих единицах. После определения концентрации микроорганизма переходят к обозначению его патогенности – «флора условно-патогенная». У здоровых людей на слизистой оболочке носоглотки живут бактерии, выполняющие защитную функцию. Они не доставляют дискомфорта и не вызывают развития воспаления. Под воздействием неблагоприятных эндогенных и экзогенных факторов количество этих микроорганизмов резко увеличивается, что приводит к развитию патологии.
После выявления возбудителя патологии и его идентификации до рода и вида переходят к определению его чувствительности к фагам, антибиотикам и противомикробным препаратам. Лечить заболевание горла или носа необходимо тем антибиотиком, к которому выявленный микроб максимально чувствителен. результатов исследования мазка из зева Варианты результатов исследования мазка из зева:
Микробиологическое исследование отделяемого зева и носа на флору позволяет определяют вид микробов и их количественное соотношение. Все патогенные и условно-патогенные микроорганизмы подлежат полной идентификации. Результат лабораторной диагностики позволяет врачу правильно назначить лечение. источник NEISSERIA (Neisseria Trevisan 1885) — род кокковидных грамотрицательных бактерий семейства Neisseriaceae, Prevot 1933. Бактерии рода N.— аэробные или факультативноанаэробные кокки, у к-рых одна сторона вогнута, как у боба; располагаются обычно попарно, вогнутой стороной друг к другу, грамотрицательны. Нек-рые виды плохо растут на обычных питательных средах, но хорошо размножаются на сывороточных средах или средах с добавлением крови. Для N. характерна цитохромоксидазиая и каталазная активность. Род N. по классификации Берджи (Bergey’s Manual of Determinative Bacteriology, 1974) включает в себя следующие виды: N. gonorrhoeae — гонококк — возбудитель гонореи (см.), N. meningitidis — менингококк — возбудитель менингита (см.); не патогенны N. sicca, N. subfla-va, N. flavescens, N. mucosa. N. flavescens иногда патогенен для людей (большинство штаммов, по-видимому, патогенно для мышей), серо-логически связан с N. sicca. Входивший ранее в этот род N. catarrhalis отнесен в род Branhamella и название изменено на Branhamella catarrhalis. Neisseria sicca (von Lingelsheim 1908), Bergey et al. 1923 (Diplococcus pharyngis siccus, von Lingelsheim 1906, Diplococcus siccus von Lingelsheim 1903) описан в 1906 г. Лингель-схеймом (W. von Lingelsheim), выделен из слизи носоглотки. Кокки, расположенные поодиночке или парами (диплококки), мельче менингококков, иногда инкапсулированы, хорошо растут на простом агаре. Колонии неправильной округлой формы, непрозрачные, возвышающиеся над поверхностью среды, на кровяном агаре — сероватые, иногда сухие, крошатся при попытке снятия. На асцит-агаре колонии мелкие, 3 мм в диаметре, сероватые или слегка желтоватые, сухие морщинистые, с трудом снимающиеся со среды. Нек-рые штаммы образуют пигмент ксантофил. В изотоническом р-ре хлорида натрия N. sicca спонтанно агглютинируют. Разлагают левулезу, мальтозу без образования газа, Не ферментируют галактозу, лактозу, инулин, маннит, дульцит. Расщепляют сахарозу, Факультативные анаэробы. Оптимальная температура роста 36—38°. Neisseria subflava (Flugge 1886), Trevisan 1889 (Micrococcus subflavus Fliigge 1886; Neisseria fiava, Bergey et al. 1923). По внешнему виду кокков, окраске по Граму, сахаролити-ческим свойствам и по образованию зеленовато-желтого пигмента N. subflava, N. flava и N. perflava объединены в один вид. Обнаруживают на слизистой оболочке дыхательных путей; иногда в цереброспинальной жидкости при менингите (X. Ногучи, 1963). Ферментирует декстрозу и мальтозу без образования газа, не разлагает левулезу, сахарозу, лактозу, галактозу, инулин, маннит и дульцит, факультативный аэроб. Гемолиза не дает. Желатины не разжижает. Сероводород и индол не образует. Оптимум роста при t° 37°; при t° 24° растет не всегда. Часто агглютинирует в изотоническом р-ре хлорида натрия. Neisseria flavescens, Branham 1930 выделен из цереброспинальной жидкости больного эпидемическим цереброспинальным менингитом. Крупные кокки, располагающиеся парами; часты гигантские формы. На агаре с декстрозой растет плохо, хорошо растет на агаре с кровью и на полужидком агаре. Колонии мелкие суховатые, золотисто-желтые. Не разлагает декстрозу, левулезу, мальтозу и сахарозу. Факультативный аэроб. Оптимальная температура роста 37°. Neisseria mucosa Veron et al. 1959, выделен Лингельсхеймом в 1906 г. из носоглотки и цереброспинальной жидкости у больного с пневмонией и явлениями менингита. Кокки имеют капсулу или находятся в массе, окруженной липким слоем. Растет на простых средах, однако лучше на средах с добавлением сыворотки крови или асцитической жидкости; при этих условиях образуется больше слизистого слоя. Оптимум роста при t° 30—37°, отдельные штаммы растут при t° 42°; при t° ниже 22° роста нет. Желатину не разжижает, редуцирует нитрат и нитрит до газа и ферментирует глюкозу, мальтозу, фруктозу, сахарозу. На агаре колонии 1,5—4 мм в диаметре, круглые, слегка сливающиеся, сероватые, слизистые. Верон (М. Veron) с соавт. (1959) описал слегка желтый штамм. Не дает равномерной взвеси при смешивании в изотоническом р-ре хлорида натрия. Ввиду ограниченных возможностей лаб. методов, применяемых для видовой дифференциации, а также разнообразия и непостоянства свойств N., таксономическое положение ряда видов не патогенных N. остается неясным и постоянно меняется. Так, положение ряда Neisseria (N. animalis, N. canis, N. caviae, N. cinerea, N. cuniculi, N. denitrificans, N. elongata, N. ovis, N. suis) в классификационной таблице Берджи (1974) еще не определено. Нет также общепризнанных различий штаммов N. gonorrhoeae по антигенным свойствам из-за большого количества различных серологических вариантов (сероваров). Библиогр.: Андреева З.М. и Немировская Т. И. К систематике Нейссерия, Журн, микр., эпид, и иммун., № 1? с. 16, 1977; Красильников Н. А. Определитель бактерий и актиномицетов, с. 250, 295, М.— Л., 1949; Bergey’s manual of determinative bacteriology, ed. by R. E. Buchanan a. N. E. Gibbons, Baltimore, 1974; G or d o n J. Е» The gram-negative cocci in «colds» and influenza, J. infect. Dis., v. 29, p. 462, 1921; Kin s-Dury D. T. Deoxyribonucleic acid homologies among species of the genus Neisseria, J. Bact., v. 94, p. 870, 1967; Wilson G. S. a. Miles A. Topley and Wilson’s principles of bacteriology, virology and immunity, v. 1 — 2, L., 1975. источник № 43 004 Инфекционист 03.04.2017 Мазок из носа -посев на флору с определением чувствительности к антибиотикам. Выделенная флора staphylococcus epidermidis. Количество- скудный рост(10^2-10^3). Норма 1*10^6 и более. Патогенность- нормальная флора мазок из зева(ротоглотки). Выделенная флора- Neisseria mucosa. Количество- обильный рост(10^6и выше) норма 1*10^6 и более. Патогенность -нормальная флора. Выделенная флора — Streptococcus viridans group. Количество- обильный рост(10^6и выше). Норма-1*10^6 и более. Патогенность-нормальная флора Здравствуйте, в анализе получен рост только нормальной и безвредной микрофлоры, антибиотики не нужны. Здравствуйте, Лиза Справиться со стрептококковой инфекцией можно достаточно надежно и быстро с помощью биорезонанса — http://centrzdorovia.ru/borba-s-infekciey-devita-ap/.Звоните,проконсультирую.
|
| 7624 — 
или читать все. 
Чтобы правильно взять материал из зева, пациенты откидывают голову назад и широко раскрывают рот. Специально обученный персонал лаборатории шпателем прижимает язык и собирает отделяемое глотки специальным инструментом – стерильным ватным тампоном. Затем извлекает его из полости рта и опускает в пробирку. Пробирка содержит специальный раствор, которой предотвращает гибель микробов во время транспортировки материала. Пробирку необходимо доставить в лабораторию в течение двух часов с момента забора материала. Взятие мазка из горла – процедура безболезненная, но неприятная. Прикосновение ватного тампона к слизистой глотки может спровоцировать рвотные позывы.
Основной средой для микробов зева и носа является кровяной агар. Это высокочувствительная среда, содержащая питательные вещества для сапрофитных и патогенных бактерий. Пневмококки и золотистый стафилококк продуцируют гемолизины и вызывают гемолиз эритроцитов. Гемолитическая активность микробов — основной фактор патогенности, которым обладает большинство болезнетворных бактерий. Характер роста, цвет и зона гемолиза отличаются у микробов разных родов и видов.
Ваши персональные даннные надежно защищены. Платежи и работа сайта осуществляются c использованием защищенного протокола SSL.