Обеззараживание мокроты и посуды

Туберкулезные микобактерий поражают все органы и ткани организма и поэтому могут выделяться различными путями (с мокротой, калом, мочой и т. д.). Наиболее важными с эпидемиологической точки зрения путями выделения туберкулезных микобактерий из организма человека являются дыхательные пути.

Обеззараживание мокроты и плевательниц. Специально выделенное лицо ежедневно собирает плевательницы с мокротой больных и помещает их в закрытый бак или специально сделанный металлический ящик с гнездами для плевательницы. Больным раздают чистые плевательницы.

Обеззараживание мокроты вместе с плевательницами. Настольные и карманные плевательницы перед выдачей больным наполняют на 1 /₃ водой для лучшего опорожнения. Не реже одного раза в сутки плевательницы обеззараживают: 1) кипятят в течение 15 мин с момента закипания в 2% растворе соды, полностью покрывающем все плевательницы; 2) заливают в сосуде с крышкой 2,5% активированным раствором хлорамина на 2 ч. По окончании обеззараживания мокроты ее выливают в уборную, а плевательницы и сосуд, в котором происходила дезинфекция, моют обычным способом.

Обеззараживание мокроты. 1. В эмалированный или фаянсовый сосуд с крышкой сливают мокроту, заполняя сосуд не более чем на половину его объема. Затем к мокроте добавляют одно из следующих дезинфицирующих средств в сухом виде (в граммах на 1 л мокроты): хлорную известь — 200 г с экспозицией 1 ч, хлорамин — 50 г с последующим добавлением такого же количества сульфата, хлорида аммония или 10% нашатырного спирта; смесь хорошо перемешивают, закрывают крышкой и оставляют в сосуде на 2 ч; 2) мокроту заливают 2,5% активированным раствором хлорамина (на 1 часть мокроты берут 2 части раствора) и после тщательного перемешивания оставляют на 2 ч при температуре 15-18°С. При использовании 5% раствора хлорамина длительность обеззараживания составляет 6 ч.

После удаления мокроты плевательницы обеззараживают путем кипячении в течение 15 мин в 2% растворе соды либо в течение 30 мин — в воде или же путем погружения на 1 ч в 1% раствор хлорамина.

Обеззараживание посуды производят после каждого приема нити больным туберкулезом. Методы дезинфекции: кипячение в 2% растворе соды в течение 15 мин; кипячение в воде в течение 30 мин; погружение в вертикальном положении на 1 ч в 0,5% активированный раствор хлорамина или 0,4% активированный осветленный раствор хлорной извести; погружение на 2 ч в 2% (содержащий 0,5% активного хлора) неактивированный раствор хлорной извести; погружение на 4 ч в 5 раствор хлорамина. Предметы, служившие для обработки пищи, для удаления остатков нищи с посуды, обеззараживают кипячением в течение 15 мин в 2% растворе соды или в течение 30 мин — в воде.

Воду, в которой кипятилась посуда, выливают в канализацию. Посуду после дезинфекции ополаскивают чистой водой и просушивают в сушильном шкафу (вытирание посуды полотенцами не допускается).

Пищевые остатки обеззараживают в закрытых сосудах кипячением в течение 15 мин с момента закипания. После такой дезинфекции их можно использовать для кормления животных.

Белье (постельное, нательное, столовое) хранят до стирки в отдельном изолированном помещении. Методы дезинфекции белья: замачивание в 2% растворе соды с последующим кипячением в закрытом сосуде в течение 15 мин; замачивание в 1% активированном растворе хлорамина при температуре не ниже 14°С в течение 1-2 ч при расходе 5 л раствора на 1 кг белья и с периодическим перемешиванием белья деревянной лопаткой. В 5% растворе хлорамина замачивание продолжается 4-6 ч (при температуре и норме расхода дезинфицирующего раствора, как в предыдущем методе). Препараты хлора при дезинфекции цветного белья в большей или меньшей степени обесцвечивают его.

Вещи больного и не подлежащие стирке больничные вещи, а также постельные принадлежности (матрацы, подушки, одеяла) обеззараживают в дезинфекционных камерах.

Уборку помещений и находящихся в них предметов обстановки производят ежедневно обязательно влажным способом. Для мытья применяют горячие мыльные и 2% содовые растворы. Паркетные полы протирают тряпкой, слегка увлажненной керосином. Пятна туберкулезной мокроты дезинфицируют и удаляют 5% раствором хлорамина с помощью тряпки, обильно смоченной в этом растворе или в 2% растворе осветленной хлорной извести. Предметы уборки обеззараживают после каждой уборки кипячением в течение 15 мин (тряпки) либо замачиванием в 1% активированном растворе хлорамина (веники и т. д.) в течение 2 ч, или в 5% растворе хлорамина (без активатора) в течение 6 часов, или в 2% осветленном раствора хлорной извести — 2 ч.

Выделения больного туберкулезом при поражении мочеполовой системы или с кишечной формой немедленно засыпают сухой хлорной известью из расчета 200 г хлорной извести на 1 кг выделений, хорошо перемешивают и оставляют в закрытой посуде на 2 ч. После указанного срока контакта содержимое приемника выливают в уборную, а приемник ополаскивают горячей водой или погружают в дезинфицирующий раствор. Книги и игрушки не реже одного раза в 5 дней освобождают от пыли влажной протиркой или подвергают обработке пылесосом (в последнем случае пылесос покрывают мешком, обильно увлажненным дезинфицирующим средством, что предупреждает рассеивание пыли).

источник

Для обеззараживания мокроты:

1. Заливают (из расчета 2 объема дезраствора на 1 объем мокроты) 5% раствором хлорамина Б на 12 часов или 10%маточным раствором хлорной извести на 1 час, или засыпают на 1 час хлорной известью (200г/л)

2. После обеззараживания мокроту сливают в канализацию, а плевательницы или посуду, в которой дезинфицировали мокроту, моют обычным способом.

3. Плевательницы кипятят в 2% растворе соды 30 минут или погружают в 3% раствор хлорамина на 1 час.

Взятие мазка из зева и носа.

Стерильная пробирка с сухим тампоном, шпатель, перчатки, маска.

Исследование проводится натощак (не полоскать рот, не есть, не пить, не курить).

АЛГОРИТМ ДЕЙСТВИЙ МЕДСЕСТРЫ:

1. Усадите пациента лицом к источнику света;

2. Вымойте руки, наденьте перчатки, маску;

3. Возьмите в левую руку шпатель и пробирку;

4. Надавите шпателем на корень языка, правой рукой за пробку извлеките из пробирки стерильный тампон;

5. Проведите тампоном по дужкам и небным миндалинам слева и справа, не касаясь слизистой оболочки рта;

6. Осторожно, не касаясь наружной поверхности пробирки, введите стерильный тампон в пробирку;

7. Отправьте пробирку с направлением в лабораторию (можно хранить в холодильнике не более 2-3 часов).

1. При необходимости взять мазок из носа легкими поступательно-вращательными движениями вводите тампон в нижний носовой ход с одной, затем с другой стороны (в каждый носовой ход разные тампоны);

2. При необходимости сохранить мазок пригодным для исследования длительное время, используйте влажный тампон (предварительно слегка увлажните его стерильным физ. раствором).

Взятие крови из вены для биохимического исследования.

1. Накануне объясните пациенту цель исследования и предупредите, что кровь для биохимического исследования берется натощак. Заручитесь его согласием.

2.Приготовьте все необходимое для венепункции: иглу, чистую сухую пробирку в штативе, стерильные ватные шарики и салфетки70-градусный спирт, жгут, клеенчатую подушечку.

4. Вымыть руки с мылом и щеткой, осушить под электросушилкой или полотенцем;

5. Обработать руки двумя ватными шариками, смоченными спиртом;

7. Под локоть пациента подложить клеенчатую подушечку;

8. Завязать жгут на средней трети плеча, используя салфетку;

9. Обработать перчатки спиртом.

10. Попросить пациента сжать и разжать кулак несколько раз;

11.Найти наиболее наполненную вену, обработать область локтевого сгиба последовательно тремя шариками, смоченными спиртом;

12.Натянуть кожу локтевого сгиба левой рукой и фиксировать вену (кулак пациента при этом сжат);

13.Пунктировать вену так же, как для внутривенной инъекции: иглу держать за канюлю срезом вверх, параллельно коже. Под иглу, чтобы не испачкать руку пациента кровью, следует подложить стерильную салфетку;

14.Подставить к канюле иглы чистую сухую пробирку, набрать нужное количество крови (5-10 мл);

15.Снять жгут, предложить пациенту разжать кулак.

При взятии крови для исследования жгут снимают по окончании процедуры, перед извлечением иглы.

16. Извлечь иглу, прижав место пункции ватным тампоном.

17. Попросить пациента согнуть руку в локтевом суставе на 5минут.

18. Закрыть пробирку, прикрепить направление.

19. Поместить иглу, перчатки, испачканные кровью ватные шарики и салфетки в емкость с 3% раствором хлорамина.

20. Поместить пробирку в штатив или контейнер и доставить в лабораторию.

Взятие крови из вены для исследования на ВИЧ u RW

1.Объясните пациенту цель исследования и заручитесь его согласием.

2.Приготовьте все необходимое для венепункции: одноразовый10-20-ти граммовый шприц, иглу 40 мм, стерильные ватные шарики, стерильную пробирку (пробирку закрыть резиновой пробкой), штатив, 70-градусный спирт, жгут, клеенчатую подушечку, резиновые перчатки.

4. Вымыть руки с мылом и щеткой, осушить под электросушилкой или полотенцем;

5. Обработать руки двумя ватными шариками, смоченными спиртом;

7. Под локоть пациента подложить клеенчатую подушечку;

8. Наложить жгут на среднюю треть плеча на салфетку или на рубашку;

9. Обработать перчатки спиртом;

10. Попросить пациента сжать и разжать кулак несколько раз;

11. Найти наиболее наполненную вену, обработать область локтевого сгиба последовательно тремя шариками, смоченными спиртом;

12. Натянуть кожу локтевого сгиба левой рукой и фиксировать вену (кулак пациента при этом сжат);

13. Пунктировать вену так же, как для внутривенной инъекции, иглой со шприцем.

Дата добавления: 2018-05-02 ; просмотров: 526 ; ЗАКАЗАТЬ РАБОТУ

источник

— заболевания органов дыхания и ССС.

— чистая стеклянная широкогорлая банка из прозрачного стекла, направление.

Последовательность действий:

1. Объяснить правила сбора, получить согласие.

2. Утром почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой.

3. Откашлять и собрать в банку 3-5 мл мокроты, закрыть крышкой.

5. Доставить в клиническую лабораторию в течение 2 часов.

— Для определения суточного количества мокроту собирают в течение суток в одну большую посуду и хранят в прохладном месте.

— Мокроту рекомендуется собирать в специально оборудованном помещении у открытого окна или форточки.

— Не допускается загрязнение банки с наружной стороны.

Оценивается: консистенция (вязкая, студенистая, стекловидная), цвет (прозрачная, гнойная, серая, кровянистая), клеточный состав (наличие лейкоцитов, эритроцитов, эпителия, дополнительных включений.

— выявления возбудителя заболевания и определение чувствительности его к антибиотикам.

— стерильная пробирка или банка с крышкой (заказывается в бак. лаборатории), направление.

Последовательность действий:

1. Объяснить цель и суть сбора мокроты, получить согласие.

2. Утром натощак после туалета полости рта и до назначения а/б.

3. Пробирку или банку поднести ко рту, открыть ее, не касаясь краев посуды руками и ртом откашлять мокроту и сразу закрыть крышкой, соблюдая стерильность.

4. Отправить анализ в баклабораторию в течение 2 часов в контейнере спецтранспортом. Примечание: стерильность посуды сохраняется в течение 3 суток.

Сбор мокроты на МБТ (микобактерии туберкулеза):

Порядок сбора мокроты:

1. Объяснить суть и цель назначения, получить согласие.

3. Утром натощак после туалета полости рта после нескольких глубоких вдохов откашлять мокроту в чистую сухую банку (15-20 мл), закрыть крышкой. Если мокроты мало, то ее можно собирать в течение 1-3 суток, сохраняя в прохладном месте.

4. Доставить анализ в клиническую лабораторию.

Примечание: Если назначается посев мокроты на ВК, то мокрота собирается в стерильную посуду в течение 1 суток, храня в прохладном месте, и доставляется в баклабораторию.

Сбор мокроты на атипичные клетки:

— диагностическая (диагностика, исключение онкопатологии).

Последовательность сбора:

1. Объяснить пациенту правила сбора мокроты.

2. Утром после туалета полости рта собрать мокроту в чистую сухую банку.

4. Доставить в цитологическую лабораторию сразу, т.к. атипичные клетки быстро разрушаются.

Правила пользования карманной плевательницей:

Плевательницей пользуются пациенты, выделяющие мокроту.

Запрещается:

— сплевывать мокроту на улице, в помещении, в платок, полотенце;

Плевательница дезинфицируются по мере заполнения, но не реже 1 раза в сутки. При большом количестве мокроты – после каждого использования.

Для обеззараживания мокроты: залить 10% хлорной известью в соотношении 1:1 на 60 мин или засыпать сухой хлорной известью из расчета 200 г/л мокроты на 60 мин.

При выделении или подозрении на ВК — 10% хлорная известь на 240 мин или сухая хлорная известь на 240 мин в тех же соотношениях; 5% хлорамином на 240 мин.

После обеззараживания мокроту сливают в канализацию, а посуду, в которой обеззараживалась мокрота, моют обычным способом с последующей дезинфекцией.

Обеззараживание карманных плевательниц: кипячение в 2% растворе соды 15 мин или в 3% хлорамин на 60 мин.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: На стипендию можно купить что-нибудь, но не больше. 8913 — | 7212 — или читать все.

193.124.117.139 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.

Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)
очень нужно

источник

Цель: обеспечить инфекционную безопасность.

Обеззараживание мокроты и посуды, в которой она находится, проводится одним из способов:

— налить в плевательницу дезинфицирующий раствор на 1 /₄ ее объема, например, 5% р-ра хлорамина или 1% активированного раствора хлорамина (или другой регламентированный дезинфицирующий раствор);

— дать пациенту плевательницу, объяснив необходимость заполнения ее мокротой до метки 3 /₄ объема плевательницы;

— обеззаразить мокроту в плевательнице, залив в нее доверху дезинфицирующий раствор на 4 часа;

— вылить мокроту в канализацию.

Примечание: Можно обеззаразить плевательницу методом кипячения в 2% растворе питьевой соды в течение 15 минут.

Дренажные положения, особенности их выполнения

Цель: обеспечить отделение мокроты.

1.Объяснить пациенту смысл создания дренажного положения в постели- для отделения мокроты самотёком.

2. Получить согласие пациента.

3. Приготовить плевательницу- заполнить плевательницу на 1/3-1/4 дезраствором (5% р-р. Хлорамина), если нет необходимости для сбора мокроты на исследование

1.Поднять ножной конец кровати на 20-30 см. выше уровня пола- использовать устойчивые подставки.

2. Наблюдать за состоянием пациента в постели- убедиться, что увеличилось отхождение мокроты при появлении кашля.

3. Повторить процедуру несколько раз с перерывом в 10-15 мин.

1.Придать кровати обычное положение- при появлении у пациента жалоб на неприятные ощущения, связанные с приподнятым положением тела

Цель: обеспечить отделение мокроты, меняя положение тела в постели.

1.Объяснить пациенту смысл создания дренажного положения в постели- для отделения мокроты самотёком.

2. Получит согласие пациента на процедуру.

3. Приготовить плевательницу- заполнить плевательницу на 1/3-1/4 дезраствором (5% р-р. Хлорамина), если нет необходимости для сбора мокроты на исследование.

Положение1: создать положение Квинке

Положение 2: уложить пациента в постель на щит.

1. Объяснит пациенту, что необходимо поворачивать туловище вокруг своей оси после появления кашля и отхождения мокроты- для появления кашля и отхождения мокроты необходимо сделать глубокий вдох и форсированный выдох.

2. Наблюдать за состоянием пациента в постели- убедиться, что увеличилось отхождение мокроты при появлении кашля.

3. Повторить процедуру 3-5 раз с перерывом 10-15 минут.

1. Уложить пациента на правый бок.

2. Опустить голову и руки ниже уровня кровати.

3. Наблюдать за состояние пациента в постели — убедиться, что увеличилось отхождение мокроты при появлении кашля.

4. Повторить процедуру с положением на левом боку

Положение 4:

1. Предложить пациенту создать коленно-локтевое положение.

2. Наблюдать за состоянием пациента в постели -убедиться, что увеличилось отхождении мокроты при появлении кашля.

1. Придать пациенту обычное (удобное) положение в постели- отменить процедуру (сообщить врачу) при появлении у пациента жалоб на неприятные ощущения, связанные с изменением положения тела в постели или отсутствием кашля.

2. Провести дезинфекцию мокроты и плевательницы- дезинфекция проводиться в одном из регламентированных растворов, например: 5% р-ре хлорамина, экспозиция 4 часа.

3. Сделать запись о выполнении процедуры и реакции пациента на процедуру.

ТЕХНОЛОГИЯ ОКАЗАНИЯ МЕДИЦИНСКИХ УСЛУГ ПАЦИЕНТАМ С ПАТОЛОГИЕЙ ССС

Артериальный пульс — это ритмические толчкообразные колебания стенок артерий, связанные с изменением их кровенаполнения.

Свойства артериального пульса

Частота пульса — величина, отражающая число колебаний стенок артерии за единицу времени. В зависимости от частоты, различают пульс:

− умеренной частоты — 60-90 уд./мин;

− редкий (pulsus rarus) — менее 60 уд./мин;

− частый (pulsus frequens) — более 90 уд./мин.

Ритмичность

Ритмичность пульса — величина, характеризующая интервалы между следующими друг за другом пульсовыми волнами. По этому показателю различают:

− ритмичный пульс (pulsus regularis) — если интервалы между пульсовыми волнами одинаковы;

− аритмичный пульс (pulsus irregularis) — если они различны.

Наполнение пульса — объем крови в артерии на высоте пульсовой волны. Различают:

− пульс умеренного наполнения;

− полный пульс (pulsus plenus) — наполнение пульса сверх нормы;

− пустой пульс (pulsus vacuus) — плохо пальпируемый;

− нитевидный пульс (pulsus filliformis) — едва ощутимый.

Напряжение пульса характеризуется силой, которую нужно приложить для полного пережатия артерии. Различают:

− пульс умеренного напряжения;

− твёрдый пульс (pulsus durus);

− мягкий пульс (pulsus mollis).

Высота пульса — амплитуда колебаний стенки артерий, определяемая на основе суммарной оценки напряжения и наполнения пульса. Различают:

− большой пульс (pulsus magnus) — высокая амплитуда;

− малый пульс (pulsus parvus) — низкая амплитуда.

Форма (скорость)

Форма (скорость) пульса — скорость изменения объёма артерии. Форма пульса определяется по сфигмограмме, и зависит от скорости и ритма нарастания и падения пульсовой волны. Различают:

− скорый пульс (pulsus celes) — скорым называется пульс, при котором как высокий подъём кровяного давления, так и его резкое падение протекают в укороченные сроки. Благодаря этому он ощущается как удар или скачок и встречается при недостаточности аортального клапана, тиреотоксикозе, анемии, лихорадке, артериовенозных аневризмах.

− медленный пульс (pulsus tardus) — медленным называется пульс с замедленным подъёмом и спадением пульсовой волны и встречается при медленном наполнении артерий: стеноз устья аорты, недостаточность митрального клапана, митральный стеноз.

− дикротический пульс (pulsus dycroticus) — при дикротическом пульсе за главной пульсовой волной следует новая, как бы вторая (дикротическая) волна меньшей силы, что бывает лишь при полном пульсе. Ощущается как сдвоенный удар, которому соответствует только одно сердечное сокращение. Дикротический пульс свидетельствует о падении тонуса периферических артерий при сохранении сократительной способности миокарда.

Каротидный пульс —исследуется на сонной артерии, расположенной в области шеи. Артерия пальпируется перед передним краем грудино-ключично-сосцевидной мышцы, выше подъязычной кости и латерально от щитовидного хряща. При данном методе измерения следует мягко пальпировать артерию, при этом пациент должен сидеть или лежать. Стимуляция барорецепторов, расположенных в каротидном синусе, может спровоцировать брадикардию вплоть до остановки сердца у особо чувствительных пациентов. Также не следует пальпировать обе сонные артерии одновременно. Чрезмерное сдавление сонных артерий может привести к обмороку или ишемии мозга.

Тахикардия (др.-греч. ταχύς — быстрый и καρδία — сердце) — увеличение частоты сердечных сокращений от 90 ударов в минуту. Следует различать тахикардию как патологическое явление, то есть увеличение ЧСС в покое, и тахикардию как нормальное физиологическое явление (увеличение ЧСС в результате физической нагрузки, волнения или страха).

Брадикардия (от греч. βραδυ-медленный и καρδιά-сердце) — разновидность нарушений синусового ритма, который контролируется синусовым узлом (это так называемый водитель ритма). Он располагается в устье верхней и нижней полых вен, то есть в месте впадения их в правое предсердие.

Артериа́льная гиперте́нзия (АГ, Гипертония) — стойкое повышение артериального давления от 140/90 мм рт.ст. и выше

Артериальная гипотензия (от др.-греч. ὑπό — под, внизу и лат. tensio — напряжение) — снижение артериального давления более, чем на 20 % от исходного/обычных значений или в абсолютных цифрах — ниже 90 мм рт. ст. систолического давления или 60 мм рт.ст. среднего артериального давления. Изолированное снижение диастолического давления, например, при недостаточности полулунных клапанов аорты или при тиреотоксикозе, не принято называть артериальной гипотензией (гипотонией). Снижение артериального давления только на одной руке (как, например, при болезни Такаясу) также не следует относить к артериальной гипотензии, так как последняя предполагает общее снижение артериального давления, точнее — снижение центрального артериального давления.

источник

Дезинфекция мокроты и карманных плевательниц. Правила сбора мокроты на исследования Личная гигиена больного и питание

Дезинфекция при туберкулезе включают в себя несколько мероприятий.

Дезинфекция мокроты . Для сбора мокроты больной должен иметь две карманные плевательницы с плотно завинчивающимися крышками. В ту из них, которая находится в пользовании, на ⅓ наливают 5% раствор хлорамина, другую стерилизуют. Карманные плевательницы следует носить в съемных карманах из мягкой ткани, которые дезинфицируют не реже одного раза в неделю. Обеззараживать мокроту можно различными способами.

1. Карманные плевательницы со снятыми крышками устанавливают в сосуде и заливают 2% раствором соды так, чтобы он покрывал нх сверху на 4-5 см. Сосуд при этом должен быть заполнен не более чем на ⅓ своей емкости во избежание переливания через край пены при кипении. Сосуд ставят на огонь и кипятят мокроту вместе с плевательницами и крышками от них в теченис15 мин. После этого мокроту и жидкость выливают в канализационную систему, а плевательницы, крышки и сосуд моют обычным способом. Недостаток этого способа — неприятный запах, появляющийся при кипячении большого количества мокроты.
2. Обеззараживание хлорамином:
   а) плевательницы с мокротой залипают в сосуде 5% раствором хлорамина на 6 ч;
   б) добавляют к мокроте сухой хлорамин из расчета 50 г на 1л мокроты, перемешивают и добавляют таков же количество хлорида или сульфат аммония, снова все перемешивают, закрывают сосуд крышкой и оставляют на 2 ч (при этом образуется много пены, но без повышения температуры);
   в) собранную в плевательницу мокроту дезинфицируют двойным количеством 2,5% активированного раствора хлорамина в течение 2 ч.
3. Дезинфекция хлорной известью: плевательницы должны быть заполнены мокротой на половину объема, хлорную известь насыпают в плевательницы из расчета 2 г на 10 мл мокроты, тщательно перемешивают и оставляют на 1 ч. В больничных условиях мокроту можно обеззараживать отдельно от плевательниц, сливая ее в эмалированный, фаянсовый или деревянный сосуд с метками на внутренней стенке. Сосуд заполняют мокротой наполовину и добавляют сухую хлорную известь из расчета 200 г на 1 л мокроты. После тщательного перемешивания сосуд закрывают крышкой и оставляют на 1 ч. Температура при этом в сосуде повышается до 80-90°,образуется много пены. Обеззараживание мокроты происходит под действием температуры и хлора. Мокроту, имеющую после обеззараживания хлорной известью или хлорамином вид полужидкой пенистой массы, сливают в канализационную систему, а посуду, в которой производили дезинфекцию, моют.
4. Уничтожение мокроты можно проводить путем сжигания в специальных печах, на кострах (в сельской местности): мокроту выливают на бумагу небольшими порциями и сжигают.

Для обeззаpаживания плeватeльниц после удаления из них мокроты рекомендуется кипячение в течение 15 мин в 2% растворе соды или в течение 30 мин в воде либо погружение на 1 ч в 1% активированный раствор хлорамина.

Дeзинфeкцию бeлья производят кипячением в 2% растворе соды в течение 30 мин либо замачиванием на 2 ч в 1% активированном растворе хлорамина или на 4 ч в 5% растворе хлорамина. В обоих случаях на 1 кг белья берут 5 л дезинфицирующего раствора, белье погружают поштучно в развернутом виде. Цветное белье под действием хлора несколько обесцвечивается. Для уменьшения вредного влияния хлора на ткань белье после дезинфекции рекомендуется сразу выстирать или прополоскать.

Дeзинфeкция постeльныx пpинадлeжнocтeй и носильныx вeщeй должна производиться в паровых или пароформалиновых камерах не реже одного раза в 3 мес. Носильное платье, кроме того, необходимо проветривать и утюжить ежедневно. В паровых камерах нельзя дезинфицировать кожаные, меховые, резиновые вещи и изделия из них, предметы из целлулоида и пластмассы, а также хлопчатобумажные и шерстяные ткани, окрашенные нестойкими красителями.

Дeзинфeкцию посуды производят кипячением в 2% растворе соды в течение 15 мин или в воде в течение 30 мин либо погружением на 1 ч в 0,5% активированный раствор хлорамина или в 0,4% активированный раствор хлорной извести или в 2% неактивированный раствор хлорной извести (с содержанием 0,5% активного хлора). Нужно иметь в виду, что препараты хлора коррозируют металлические предметы, поэтому ножи, вилки, ложки следует обеззараживать кипячением. Химической дезинфекции должна предшествовать тщательная механическая очистка посуды щеткой от остатков пищи. Продезинфицированную посуду ополаскивают чистой горячей водой и сушат (вытирать посуду не следует). Предметы, предназначенные для удаления остатков пищи с посуды, обеззараживают кипячением в течение 15 мин в 2% растворе соды или в воде в течение 30 мин.

Дeзинфeкцию пищeвыx остатков производят кипячением в закрытой посуде в течение 30 мин. После этого их можно скармливать скоту. При невозможности воспользоваться кипячением остатки пищи смешивают с 2 объемами 20% хлорноизвесткового молока и через 2 ч выбрасывают в помойную яму.

Дeзинфeкцию мочи и фeкалий (при туберкулезе почек, кишечника) производят немедленно после дефекации путем засыпания их в приемнике выделений (подкладные судна, ночной горшок) сухой хлорной известью с последующим перемешиванием. Хлорную известь берут из расчета 200 г на 1 л выделений. После 2-часового контакта фекалий с хлорной известью их выливают в канализационную систему, а приемник выделений ополаскивают горячей водой.

Дeзинфeкцию пpeдмeтов уxода за больными (судна, утки, грелки, кружки Эсмарха и пр.) производят кипячением в 2% растворе соды в течение 15 мин. Стеклянные, фаянсовые и эмалированные предметы можно обеззараживать путем погружения на 2 ч в 10% осветленный раствор хлорной извести, а затем мыть водой. Резиновые предметы (подкладные круги, грелки) тщательно протирают тряпками, увлажненными 5% раствором хлорамина.

Дeзинфeкции книг, игpушeк производят путем камерной обработки. Малоценные и не годные к употреблению вещи сжигают.

Teкущую дeзинфeкцию помeщeния производят ежедневно, обязательно влажным способом, летом при открытых окнах, зимой при открытых фрамугах или форточках. Особенно тщательно следует обрабатывать стену около кровати больного, кровать и все предметы, находящиеся в радиусе 2 м от нее. Видимые пятна мокроты предварительно удаляют тряпками, смоченными 5% раствором хлорамина. Остальные поверхности обмывают и протирают тряпками, смоченными горячим мыльным или 2% содовым раствором.

Неполированную мебель раз в неделю обмывают горячей мыльной водой с 2% содержанием соды. С мягкой мебели снимают чехлы, а затем протирают ее влажной тряпкой или обрабатывают пылесосом. Пол и полированную мебель протирают тряпкой, слегка смоченной керосином. Щетки, веники, тряпки обеззараживают кипячением в течение 15 мин в 2% растворе соды либо погружением на 4 ч в 5% раствор хлорамина или на 2 ч в 1% активированный раствор хлорамина. Для текущей дезинфекции помещений с успехом применяют также облучение ртутно-кварцевыми лампами различных систем (переносные, стационарные). Находиться в помещении в период работы лампы нельзя.

Следует помнить, что к уходу за больным и к работе по дезинфекции помещения и различных предметов нельзя допускать детей и подростков.

Заключитeльную дeзинфeкцию производят в очаге туберкулеза работники санитарно-эпидемиологических станций немедленно во всех случаях временного (на срок не менее 1 мес) или постоянного выбытия бацилловыделителя. При этом обеззараживают помещение, обстановку квартиры и все предметы, которыми пользовался или с которыми соприкасался больной. Пол, стены, потолок, мебель обильно орошают 5% раствором хлорамина из гидропульта. Через 2 ч помещение убирают и просушивают. Обои после дезинфекции удаляют, а стены белят или вновь оклеивают обоями. Поверхности, окрашенные масляной краской, через 2 ч после обеззараживания протирают сухой тряпкой. Перед дезинфекцией в помещении уничтожают мух. В противотуберкулезных учреждениях дезинфекцию по типу заключительной производят 2 раза в год.

Лица, производящие дезинфекцию, для предупреждения инфицирования должны работать в марлевых масках и резиновых перчатках, которые по окончании работы обеззараживают кипячением в воде в течение 30 мин или в 2% растворе соды в течение 15 мин.

Цель: обеспечение безопасности окружающей среды.

Показания: заболевания органов дыхания, туберкулез легких, сбор мокроты на различные исследования.

Приготовьте: стерильную карманную плевательницу (широкогорлый, градуированный сосуд из темного стекла с плотно завинчивающейся крышкой), дезинфектанты.

1. Проведите беседу с пациентом о правилах пользования плевательницей.

2. Выдайте пациенту чистую сухую индивидуальную плевательницу для сбора мокроты.

3. Заполните плевательницу на ¼ часть дезинфектантом (для обеззараживания мокроты).

4. Дайте пациенту плевательницу, объяснив необходимость заполнения ее мокротой до метки ¾ объема плевательницы.

5. При наполнении плевательницы обеззаразьте мокроту в плевательнице, залив в нее доверху дезраствор на 4 – часа.

6. Слейте мокроту с дезинфицирующим раствором из плевательницы в канализационную сеть (в туберкулезных диспансерах и больницах мокроту сжигают в специальных печах).

7. Промойте плевательницу под проточной водой и погрузите ее на определенное время в дезинфектант, используемый в данной медицинской организации.

8. Промойте плевательницу под проточной водой, высушите и поставьте на полку для хранения чистых плевательниц.

Показания: исследование микрофлоры зева, подозрение на инфекционное заболевание.

Приготовьте: штатив со стерильными пробирками с плотно закрывающимися марлевыми тампонами, в которые вмонтированы стержни с накрученными сухими ватными тампонам, шпатель стерильный в крафт – пакете, лоток, бикс для транспортировки пробирок: бланк – направление, стеклограф для маркировки пробирки, перчатки, маску, емкость с дезраствором, КБСУ.

1. Объясните пациенту ход и цель процедуры и получите согласие на ее проведение.

3. Промаркируйте стеклографом пробирку, поставьте соответствующий номер в направлении: ЗЕВ — №1, установите пробирку в штатив.

4. Проведите деконтаминацию рук на гигиеническом уровне, наденьте маску и перчатки.

5. Усадите пациента лицом к источнику света и попросите пациента слегка запрокинуть голову назад.

6. Сядьте напротив пациента.

7. Возьмите в левую руку стерильную пробирку с тампоном между IV и V пальцами и шпатель тремя другими пальцами.

8. Попросите пациента широко открыть рот, зафиксируйте язык, надавив шпателем на корень языка книзу и кпереди.

9. Извлеките стержень со стерильным тампоном из пробирки, взяв его правой рукой за пробку, в которую он вмонтирован.

10. Введите тампон в полость рта, не касаясь слизистой оболочки шеек, зубов, языка, мягкого неба.

11. Снимите тампоном слизь с небных дужек и миндалин в следующей последовательности: правая миндалина, правая небная дужка, язычок левая миндалина, левая и задняя стенка глотки.

12. Извлеките тампон из ротовой полости, не касаясь слизистой оболочки рта, зубов, языка и введите его в пробирку, не касаясь ее края и наружной поверхности, затем плотно закройте.

13. Извлеките шпатель из полости рта, погрузите в емкость с дезраствором.

14. Поставьте штатив с пробиркой в бикс, закройте на «замок».

15. Снимите перчатки, маску, поместите в КБСУ.

16. Вымойте и осушите руки.

17. Доставьте взятый материал в бикс с направлением в баклабораторию не позднее 2-х часов после взятия или поместите в термостат при t 0 – 37 0 С до отправки в бактериологическую лабораторию.

Ø забор материала из зева проводится утром, натощак или через 2 часа после приема пищи, питья, до полоскания горла, чистки зубов (до приема лекарственных препаратов);

Ø результат бакисследования получают через 5 – 7 дней при соответствующей подготовке локальных изменениях материал берется двумя тампонами – из очага и всех других секторов.

Цель: диагностическая: выявление возбудителя заболевания.
Показания : исследование микрофлоры носа, подозрение на инфекционное заболевание.
Приготовьте: штатив со стерильными пробирками, плотно
закрывающимися ватно— марлевымитампонами(пробкой), в которые вмонтированыстержни снакрученными сухимиватнымитампонами для забора материала; шпатель стерильный в крафт-пакете; бикс для транспортировки пробирок, штатив, стеклограф, направление, резиновые перчатки, маску, вазелиновое масло, турунды, КБСУ.

1. Объясните пациентуцельи ход исследования и получите его согласие напроцедуру.

2. Заполните направление в бактериологическую лабораторию (МО, отделение, №палаты, ФИО пациента, возраст, № истории болезни, цель исследования, дата взятия анализа, подпись м/с).

3. Промаркируйте стеклографом пробирку, поставьте соответствующий номеру в направлении: «НОС-2», установите пробирку в штатив.

4. Проведите деконтаминацию рук на гигиеническом уровне, наденьте маску, перчатки.

5. Усадите пациента лицом к источнику света, голова должна быть слегка запрокинута назад.

6. Садитесь напротив пациента. Осмотрите полость носа.

7. Очистите при необходимости переднюю часть полости носа (предложите пациенту высморкаться), удалите корки из полости носа, размягчив ихстерильным вазелиновым маслом. Затем очистите сухой веткой турундой.

8. Возьмите закрытую пробирку с меткой «НОС-2» в левую руку под III, IУ, У пальцы, а правой рукой, держа за пробку извлеките из нее тампон (пальцы правой руки должны касаться только пробки пробирки, в которую вмонтирован стержень с тампоном).

9. Приподнимите большим пальцем левой руки кончик носа пациента, а правой рукой введите тампон легкими вращательными движениями в один носовой ход, затем в другой, на глубину 1,5-2 см плотно прикасаясь к их стенкам и перегородке носа.

10. Извлеките тампон с содержимым из полости носа.

11. Осторожно, не касаясь краев и наружной поверхности пробирки, введите в нее тампон.

12. Следите, чтобы пробирка была плотно закрыта.

13. Поставьте пробирку в штатив, затем в бикс, закрыв его на «замок».

14. Снимите перчатки, маску, поместите в КБСУ.

15. Вымойте и осушите руки.

16. Отправьте взятый материал в биксе с направлением в бактериологическую лабораторию не позднее 2-х часов.

Примечание: материал до доставки необходимо хранить в холодильнике
при t 0 – 4° — 6 0 С.

1. У пациента нарушено удовлетворение потребностей; дышать, быть здоровым, поддерживать нормальную температуру тела, работать, выделять, в безопасности

Настоящие : кашель с отделением слизисто-гнойной мокроты, снижение аппетита, похудание неверие в благополучный исход заболевания, тревога о своем состоянии.

Потенциальные : высокий риск развития эмфиземы легких , дыхательной недостаточности (осложнений)

2. Приоритетная проблема : кашель с отделением слизисто-гнойной мокроты. Краткосрочная цель: пациент отметит улучшение отхождения мокроты к концу недели Долгосрочная: пациент продемонстрирует знания о дисциплине кашля и способах про-филактики застоя мокроты .

Оценка эффективности: пациент отметил улучшение отхождения мокроты к концу не-дели и демонстрирует знания о методах профилактики застоя мокроты. Цель достигну-та.

Пользование карманной плевательницей.

Индивидуальными плевательницами пользуются при заболеваниях органов дыхания с отхождением мокроты и для сбора ее на исследование.

1. Необходимо объяснить пациенту правила пользования плевательницей.

2. Следует выдать ему сухую чистую плевательницу с плотной крышкой.

3. Заполнить мокроту на ¼ объема 3-ным раствором хлорамина, при туберкулезной патологии — 5-ным раствором хлорамина .

4. После дезинфекции мокроту слить в канализацию, а мокроту от туберкулезных больных сжечь с опилками в специальной печи.

5. Использованные плевательницы дезинфицировать в 3-ном растворе хлорамина в течение 1 часа. Если плевательницей пользовался туберкулезный пациент, то обработка проводится 5-ным раствором хлорамина в течение 4 часов.

6. Затем плевательницу следует промыть проточной водой. Хранить в чистом сухом виде в специально отведенном месте.

Цель: обеспечить инфекционную безопасность.

Обеззараживание мокроты и посуды, в которой она находится, проводится одним из способов:

Налить в плевательницу дезинфицирующий раствор на 1/4 ее объема, например, 5% р-ра хлорамина или 1% активированного р-ра хлорамина (или другой регламентированный дезинфицирующий раствор);
дать пациенту плевательницу, объяснив необходимость заполнения ее мокротой до метки 3/4 объема плевательницы;
обеззаразить мокроту в плевательнице, залив в нее доверха дезинфицирующий раствор на 4 часа;
вылить мокроту в канализацию.

Примечание: можно обеззаразить плевательницу методом кипячения в 2 % растворе питьевой соды в течение 15 минут.

• лекарственное средство в аптечной упаковке,
• стерильную пипетку,
• лоток,
• ватные шарики,
• водяную баню,
• ватные жгутики (турунды).

1. Подогрейте лекарственный раствор до температуры тела на водяной бане.

2. Усадите пациента (если это возможно).

3. Голову пациента поверните на здоровую сторону.

4. При наличии отделяемого из уха — очистите слуховой проход ватными жгутами (турундами) и сбросите их в лоток с дезинфицирующим раствором.

5. Наберите в пипетку лекарственное вещество, одну каплю капнуть себе на тыльную сторону кисти руки.

6. Оттяните левой рукой мочку уха пациента в сторону и вверх, правой рукой держите пипетку и отсчитывайте капли (2-3 капли в ухо).

7. Введите в наружное ухо пациента ватный тампон.

8. Больной находится в данном положении 10-15 минут.

9. Пипетку сбросьте в лоток с дез.раствором.

38) Последовательность выполнения процедуры:

1) взять пузырь для льда, лед или снег, охлажденную воду, полотенце (пеленку);

2) психологически подготовить пациента к манипуляции;

3) проверить целостность пузыря;

4) положить пузырь на столик, открыть пробку, поместить туда кусочки льда или снега, долить холодной воды, заполнив пузырь на 1/2–2/3 его объема;

5) вытеснить воздух из пузыря, положив его на стол и надавливая на пузырь до появления воды возле горловины, закрутить пробку;

6) проверить пузырь на герметичность, перевернув его пробкой книзу;

8) завернуть в полотенце или пеленку заполненный пузырь и приложить к месту применения на 20–30 мин;

9) при необходимости повторной постановки пузыря манипуляцию повторить через 10–15 мин, по мере таяния льда в пузыре воду сливать и докладывать кусочки льда или снег;

10) продезинфицировать использованное оснащение;

11) сделать запись о выполнении процедуры.

39) Оснащение. Стерильные: резиновые перчатки, ректороманоскоп , пинцет, марлевые салфетки, вазелин, другие: кружка Эсмарха, клеенка, фартук, касторовое масло.

1. В случае запоров подготовку пациента начинают за 2-3 дня до исследования. Ежедневно назначают по 50 г касторового или оливкового масла и проводят очистительные клизмы накануне вечером и утром до выделения чистой воды. Последнюю клизму делают утром за 2 часа до исследования.

2. Если стул нормальный, то достаточно одной клизмы накануне вечером и утром за 2 часа до проведения исследования.

3. Во время процедуры создайте пациенту наиболее удобное положение для ввода ректороманоскопа — коленно-локтевое: пациент становится на колени на стол для перевязок так, чтобы ступни свисали за его край, а локти или плечи упирались в стол. Второе возможное положение пациента – лежа на правом боку с приподнятым тазом. Положение пациента определяет врач.

4. Медицинская сестра ассистирует во время процедуры врачу и наблюдает за состоянием пациента.

5. Продезинфицируйте ректороманоскоп и другое использованное оборудование.

6. Вымойте и высушите руки.

7. Сделайте отметку о выполнении процедуры в соответствующем медицинском документе.

40) Клизма — процедура, при которой в нижний отрезок толстого кишечника вводится жидкость с диагностической или лечебной целью. Очистительная клизма назначается с целью разжижения и удаления содержимого нижних отделов толстого кишечника, очистка его от каловых масс и газов.

Прежде, чем рассмотреть алгоритм постановки очистительной клизмы , напомним себе показания к ее применению:

· задержка стула различного происхождения;

· удаление токсичных веществ при отравлениях;

· подготовка пациентов к операциям и родам;

· подготовка к эндоскопическим и рентгенологическим исследованиям толстого кишечника;

· подготовка к применению лекарственных клизм.

Мокрота может содержать много различных элементов, обнаруживаемых только вооруженным глазом:

Исследование мокроты различными методами предпринимается часто и имеет большое значение для диагностики легочных заболеваний. Кроме того, мокрота служит источником распространения заразных болезней, таких, как туберкулез, грипп и др.

С целью профилактики заражения окружающих медицинская сестра должна научить больного правильно обращаться с мокротой (особенно это касается мокроты больных туберкулезом).

I. Стараться не кашлять, находясь в непосредственной близости со здоровыми людьми, а если не удается задержать кашель, то прикрыть рот платком, чтобы частицы мокроты не попали на другого человека.

II. Не сплевывать мокроту на пол, так как, высыхая, она заражает воздух, а через него — других людей.

III. Не сплевывать мокроту в платок, так как она может попасть на одежду больного и во время стирки служить источником заражения других людей.

IV. Собирать мокроту в плевательницы с плотными крышками. Для этой цели рекомендуется пользоваться индивидуальными карманными и настольными плевательницами. Перед употреблением в плевательницу на 1/3 ее объема наливают 5% раствор хлорамина для дезинфекции и для того, чтобы мокрота не прилипала к стенкам сосуда.

V. Мокроту больных туберкулезом сжигают в особых печах или спускают в канализацию после обеззараживания: или 15-минутным кипячением в 2% растворе соды, или добавлением на 2 часа к 1л мокроты 20 г-сухой хлорной извести, или добавлением на 2 часа 5% раствора активированного хлорамина.

Для собирания мокроты пользуются плевательницами различной емкости из светлого прозрачного стекла с делениями и крышкой. В таких сосудах удобно осматривать мокроту и определять ее количество. Обычно сестры ежедневно измеряют суточное количество мокроты и записывают полученные данные в истории болезни.

Если назначен анализ мокроты, то на посуду наклеивают этикетку с указанием фамилии и инициалов больного, номера палаты и отделения или номера амбулаторной карты л даты. Бывают случаи, когда больная женщина или ребенок не могут отхаркивать мокроту и заглатывают ее.

Таких больных следует попытаться научить отхаркивать мокроту, а если это не удается, то для анализа снимают мокроту с голосовых связок под контролем гортанного зеркала или делают диагностическое промывание желудка и исследуют промывные воды.

«Общий уход за больными», Е.Я.Гагунова

источник

Мокротой называется патологический секрет, выделяемый с кашлем из дыхательных путей. Больным при организации сбора мокроты необходимо разъяснять, что для исследования нужно собирать мокроту, выделенную при откашливании, а не слюну и слизь из носоглотки.

Для сбора мокроты используют чистую, сухую, широкогорловую склянку. Существуют индивидуальные плевательницы из темного стекла, с завинчивающимися крышками и градуировкой на боковой поверхности.

Сбор мокроты для общего клинического анализа осуществляется утром до приема пищи, примесь которой мешает исследованию. Собирают мокроту после тщательного полоскания рта и горла, чистки зубов. Перед забором полость рта можно тщательно прополоскать раствором пищевой соды, фурацилина (1 : 5000), 0,01%-ным раствором калия перманганата. После этого больной, откашливаясь, собирает в посуду 3—5 мл мокроты. Анализ мокроты производят в день ее выделения. Мокроту необходимо направить в лабораторию в течение 2 ч с момента забора, так как длительное стояние ведет к размножению флоры и аутолизу клеточных элементов. При необходимости мокроту сохраняют в холодильнике.

Сбор мокроты для выявления микобактерий туберкулеза осуществляется в течение суток, так как в лабораторию необходимо представить достаточное ее количество — не менее 12—15 мл.

Для сбора мокроты на чувствительность к антибиотикам используют стерильные чашки Петри.

В ряде случаев больной не может собрать мокроту на исследование в связи с ее малым количеством или трудностью отделения. Тогда накануне сбора мокроты больному дают отхаркивающие или муколитические средства (термопсис, йодистый калий).

Мокрота чаще всего инфицирована, поэтому по окончании работы исследуемый материал, посуду, в которой он находился, предметные стекла следует обеззараживать. Обеззараживание производят физическими и химическими методами. К физическим методам относится кипячение в воде с добавлением соды в течение 1 ч, а также автоклавирование при температуре 120 °С в течение 30 мин.

Препаровальные иглы после употребления немедленно прокаливают на огне.

Для обеззараживания химическим методом используют активированные аммонийными соединениями растворы хлорамина и хлорной извести (50 г хлорамина и 50 г сульфата или хлорида аммония на 1 л дистиллированной воды). Заливают инфицированный материал двойным количеством дезинфицирующего раствора и оставляют на 4 ч.

Можно использовать ДТСГК (двутретьосновная соль гипохлорида кальция), обладающую большой бактерицидной активностью.

После обеззараживания посуду моют обычными средствами.

Мокроту с микобактериями туберкулеза дезинфицируют кипячением вместе с плевательницами или раздельно в 2%-ном растворе гидрокарбоната натрия в течение 15—20 мин с момента закипания. Для химической дезинфекции мокроту обрабатывают 5%-ным раствором хлорамина в течение 6 ч (так как лекарственно-устойчивые микобактерии туберкулеза могут обладать повышенной устойчивостью к дезинфицирующим препаратам, целесообразно увеличить экспозицию в этих случаях до 12 ч), 2,5%-ным активированным хлорамином в течение 2 ч.

Оба эти препарата применяют в соотношении: 1 часть мокроты — 2 части дезинфицирующего раствора.

Для дезинфекции мокроты используют также хлорную известь в соотношении: 100 мл мокроты — 20 г сухой хлорной извести, после перемешивания дезинфекция продолжается 1 ч.

источник

Дезинфекция при туберкулезе включают в себя несколько мероприятий.

Дезинфекция мокроты . Для сбора мокроты больной должен иметь две карманные плевательницы с плотно завинчивающимися крышками. В ту из них, которая находится в пользовании, на ⅓ наливают 5% раствор хлорамина, другую стерилизуют. Карманные плевательницы следует носить в съемных карманах из мягкой ткани, которые дезинфицируют не реже одного раза в неделю. Обеззараживать мокроту можно различными способами.

1. Карманные плевательницы со снятыми крышками устанавливают в сосуде и заливают 2% раствором соды так, чтобы он покрывал нх сверху на 4—5 см. Сосуд при этом должен быть заполнен не более чем на ⅓ своей емкости во избежание переливания через край пены при кипении. Сосуд ставят на огонь и кипятят мокроту вместе с плевательницами и крышками от них в теченис15 мин. После этого мокроту и жидкость выливают в канализационную систему, а плевательницы, крышки и сосуд моют обычным способом. Недостаток этого способа — неприятный запах, появляющийся при кипячении большого количества мокроты.
2. Обеззараживание хлорамином:
   а) плевательницы с мокротой залипают в сосуде 5% раствором хлорамина на 6 ч;
   б) добавляют к мокроте сухой хлорамин из расчета 50 г на 1л мокроты, перемешивают и добавляют таков же количество хлорида или сульфат аммония, снова все перемешивают, закрывают сосуд крышкой и оставляют на 2 ч (при этом образуется много пены, но без повышения температуры);
   в) собранную в плевательницу мокроту дезинфицируют двойным количеством 2,5% активированного раствора хлорамина в течение 2 ч.
3. Дезинфекция хлорной известью: плевательницы должны быть заполнены мокротой на половину объема, хлорную известь насыпают в плевательницы из расчета 2 г на 10 мл мокроты, тщательно перемешивают и оставляют на 1 ч. В больничных условиях мокроту можно обеззараживать отдельно от плевательниц, сливая ее в эмалированный, фаянсовый или деревянный сосуд с метками на внутренней стенке. Сосуд заполняют мокротой наполовину и добавляют сухую хлорную известь из расчета 200 г на 1 л мокроты. После тщательного перемешивания сосуд закрывают крышкой и оставляют на 1 ч. Температура при этом в сосуде повышается до 80—90°,образуется много пены. Обеззараживание мокроты происходит под действием температуры и хлора. Мокроту, имеющую после обеззараживания хлорной известью или хлорамином вид полужидкой пенистой массы, сливают в канализационную систему, а посуду, в которой производили дезинфекцию, моют.
4. Уничтожение мокроты можно проводить путем сжигания в специальных печах, на кострах (в сельской местности): мокроту выливают на бумагу небольшими порциями и сжигают.

Для обeззаpаживания плeватeльниц после удаления из них мокроты рекомендуется кипячение в течение 15 мин в 2% растворе соды или в течение 30 мин в воде либо погружение на 1 ч в 1% активированный раствор хлорамина.

Дeзинфeкцию бeлья производят кипячением в 2% растворе соды в течение 30 мин либо замачиванием на 2 ч в 1% активированном растворе хлорамина или на 4 ч в 5% растворе хлорамина. В обоих случаях на 1 кг белья берут 5 л дезинфицирующего раствора, белье погружают поштучно в развернутом виде. Цветное белье под действием хлора несколько обесцвечивается. Для уменьшения вредного влияния хлора на ткань белье после дезинфекции рекомендуется сразу выстирать или прополоскать.

Дeзинфeкция постeльныx пpинадлeжнocтeй и носильныx вeщeй должна производиться в паровых или пароформалиновых камерах не реже одного раза в 3 мес. Носильное платье, кроме того, необходимо проветривать и утюжить ежедневно. В паровых камерах нельзя дезинфицировать кожаные, меховые, резиновые вещи и изделия из них, предметы из целлулоида и пластмассы, а также хлопчатобумажные и шерстяные ткани, окрашенные нестойкими красителями.

Дeзинфeкцию посуды производят кипячением в 2% растворе соды в течение 15 мин или в воде в течение 30 мин либо погружением на 1 ч в 0,5% активированный раствор хлорамина или в 0,4% активированный раствор хлорной извести или в 2% неактивированный раствор хлорной извести (с содержанием 0,5% активного хлора). Нужно иметь в виду, что препараты хлора коррозируют металлические предметы, поэтому ножи, вилки, ложки следует обеззараживать кипячением. Химической дезинфекции должна предшествовать тщательная механическая очистка посуды щеткой от остатков пищи. Продезинфицированную посуду ополаскивают чистой горячей водой и сушат (вытирать посуду не следует). Предметы, предназначенные для удаления остатков пищи с посуды, обеззараживают кипячением в течение 15 мин в 2% растворе соды или в воде в течение 30 мин.

Дeзинфeкцию пищeвыx остатков производят кипячением в закрытой посуде в течение 30 мин. После этого их можно скармливать скоту. При невозможности воспользоваться кипячением остатки пищи смешивают с 2 объемами 20% хлорноизвесткового молока и через 2 ч выбрасывают в помойную яму.

Дeзинфeкцию мочи и фeкалий (при туберкулезе почек, кишечника) производят немедленно после дефекации путем засыпания их в приемнике выделений (подкладные судна, ночной горшок) сухой хлорной известью с последующим перемешиванием. Хлорную известь берут из расчета 200 г на 1 л выделений. После 2-часового контакта фекалий с хлорной известью их выливают в канализационную систему, а приемник выделений ополаскивают горячей водой.

Дeзинфeкцию пpeдмeтов уxода за больными (судна, утки, грелки, кружки Эсмарха и пр.) производят кипячением в 2% растворе соды в течение 15 мин. Стеклянные, фаянсовые и эмалированные предметы можно обеззараживать путем погружения на 2 ч в 10% осветленный раствор хлорной извести, а затем мыть водой. Резиновые предметы (подкладные круги, грелки) тщательно протирают тряпками, увлажненными 5% раствором хлорамина.

Дeзинфeкции книг, игpушeк производят путем камерной обработки. Малоценные и не годные к употреблению вещи сжигают.

Teкущую дeзинфeкцию помeщeния производят ежедневно, обязательно влажным способом, летом при открытых окнах, зимой при открытых фрамугах или форточках. Особенно тщательно следует обрабатывать стену около кровати больного, кровать и все предметы, находящиеся в радиусе 2 м от нее. Видимые пятна мокроты предварительно удаляют тряпками, смоченными 5% раствором хлорамина. Остальные поверхности обмывают и протирают тряпками, смоченными горячим мыльным или 2% содовым раствором.

Неполированную мебель раз в неделю обмывают горячей мыльной водой с 2% содержанием соды. С мягкой мебели снимают чехлы, а затем протирают ее влажной тряпкой или обрабатывают пылесосом. Пол и полированную мебель протирают тряпкой, слегка смоченной керосином. Щетки, веники, тряпки обеззараживают кипячением в течение 15 мин в 2% растворе соды либо погружением на 4 ч в 5% раствор хлорамина или на 2 ч в 1% активированный раствор хлорамина. Для текущей дезинфекции помещений с успехом применяют также облучение ртутно-кварцевыми лампами различных систем (переносные, стационарные). Находиться в помещении в период работы лампы нельзя.

Следует помнить, что к уходу за больным и к работе по дезинфекции помещения и различных предметов нельзя допускать детей и подростков.

Заключитeльную дeзинфeкцию производят в очаге туберкулеза работники санитарно-эпидемиологических станций немедленно во всех случаях временного (на срок не менее 1 мес) или постоянного выбытия бацилловыделителя. При этом обеззараживают помещение, обстановку квартиры и все предметы, которыми пользовался или с которыми соприкасался больной. Пол, стены, потолок, мебель обильно орошают 5% раствором хлорамина из гидропульта. Через 2 ч помещение убирают и просушивают. Обои после дезинфекции удаляют, а стены белят или вновь оклеивают обоями. Поверхности, окрашенные масляной краской, через 2 ч после обеззараживания протирают сухой тряпкой. Перед дезинфекцией в помещении уничтожают мух. В противотуберкулезных учреждениях дезинфекцию по типу заключительной производят 2 раза в год.

Лица, производящие дезинфекцию, для предупреждения инфицирования должны работать в марлевых масках и резиновых перчатках, которые по окончании работы обеззараживают кипячением в воде в течение 30 мин или в 2% растворе соды в течение 15 мин.

источник