Подготовка пациента к анализу мокроты на атипичные клетки

Цель: диагностическая.

Показания: подозрение на злокачественные заболевания легких.

Оснащение: чистая широкогорлая сухая ёмкость, бланки направлений.

I . Подготовка к процедуре ( накануне вечером)

1. Установить доверительные отношения с пациентом.

2. Предупредить и объяснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования и получить согласие на исследование.

3. Обеспечить лабораторной посудой, направлением накануне вечером. Провести инструктаж.

4. Объяснить пациенту суть и ход предстоящей процедуры (если он с нею не знаком) и особенности подготовки. При необходимости дать ему письменную инструкцию:

· вечером, накануне исследования, перед сном тщательно почистить зубы;

· утром, после сна, натощак, тщательно прополоскать рот кипяченой водой;

· сделать несколько глубоких вдохов;

· открыть крышку плевательницы, откашляться и собрать мокроту в чистую сухую плевательницу (достаточно 5 мл);

· закрыть крышку плевательницы и поставить ее в специальный ящик в санитарной комнате.

5. Попросить пациента повторить информацию, задать ему вопросы по алгоритму подготовки и сбора мокроты.

6. Указать, к каким последствиям может привести несоблюдение рекомендаций медсестры.

7.Обеспечить пациента емкостью для сбора мокроты.

II Выполнение процедуры

8. Проконтролировать действия пациента.

9. Заполнить направление, доставить плевательницу с материалом в лабораторию на исследование.

· При взятии мокроты на атипичные (опухолевые) клетки следует помнить, что эти клетки быстро разрушаются, поэтому собирать следует свежевыделенную мокроту.

· Для большей вероятности попадания опухолевых клеток в мокроту иногда применяют предварительные ингаляции с протеолитическим ферментом трипсином, способствующим выхождению мокроты из наиболее глубоких отделов бронхиального дерева.

III . Завершение процедуры

10. Сделать запись о проведенной процедуре.

11.Подклеить полученные результаты исследования в медицинскую документацию.

IX. Анализы кала

ВЗЯТИЕ КАЛА ДЛЯ КОПРОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ

Цель: диагностическая: определение функциональной способности желудочно-кишечного тракта.

Показания: заболевания желудочно-кишечного тракта.

Оснащение: чистая сухая стеклянная ёмкость от 30 до 100 мл, шпатель, перчатки, направление.

I . Подготовка к процедуре ( за 4-5 дней до исследования):

1. Установить доверительные отношения с пациентом, объясните пациенту цель предстоящего исследования и правила подготовки к нему:

· необходимо в течение 4-5 дней соблюдать диету, назначенную врачом (диета Шмидта, Певзнера) В некоторых случаях специальная диета не назначается;

· подготовить накануне ёмкость с крышкой для взятия кала ;

· кал собирается в день исследования утром после опорожнения кишечника в судно без воды.

II . Выполнение процедуры

2. Вымыть руки (социальный уровень), надеть перчатки.

3. Взять шпателем после акта дефекации 5-10 г фекалий (без примеси мочи) и поместить их в приготовленную ёмкость, закрыть ёмкость крышкой.

Примечание: допускается хранение ёмкости с фекалиями при температуре 3-5 0 С не более 8 часов.

X.Завершение процедуры

4. Поместить шпатель и перчатки в ёмкость с дезинфецирующем средством.

5. Вымыть руки, надеть перчатки, доставить ёмкость с направлением в Ааческую лабраторию.

6. Провести дезинфекцию использованного инструментария с последующей утилизацией одноразового;

7. Сделать запись о проведенной процедуре;

8. Подклеить полученные результаты исследования в медицинскую документацию.

Подготовка пациента к исследованию

Кала и сбор материала

Перед копрологическим исследованием следует убедиться, что пациент не принимает лекарственные средства, примеси которых мешают Ааиопиическому исследованию и влияют на внешний вид каловых масс, а также Ааивают перистальтику кишечника. К таким лекарствам относятся все слабительные, ваго- и симпатикотропные средства (атропин, платифиллин, метацин, адреналин, норадреналин, нафтизин, мезотон, эфедрин, изадрин, обзидан, Ааприлин, прозерин и др.), каолин, бария сульфат, препараты висмута, железа, а также препараты, вводимые в ректальных свечах, приготовленных на жировой основе.

При исследовании, целью которого является изучение степени усвоения различных компонентов пищи, целесообразно применять диеты, содержащие точно дозированные определенные наборы продуктов.

Диета Шмидта (щадящая):

· 1 завтрак: 0,5л. Молока, чая или какао; белый хлеб с маслом; яйцо всмятку;

· 2 завтрак: 0,5л. Жидкой овсяной каши;

· обед: 125г. хорошо измельченного тощего мясо, слегка обжаренного в масле (внутри сырого), 250г. картофельного пюре;

· полдник: 0,5л. Молока, чая или какао; белый хлеб с маслом;

· ужин: 0,5л. Молока или тарелка жидкой овсяной каши, белый хлеб с маслом; 1-2 яйца всмятку (или яичница);

Диета Певзнера (на 1 день);

· 400 г хлеба (в том числе 200г. черного);

· 250 г. мяса, жареного куском;

· жареный картофель, салаты, квашеная капуста, компот, свежие фрукты.

Для исследования в лабораторию направляют суточное (!) количество Ала. При растительном питании количество фекалий гораздо больше, чем при питании животной пищей.

По Шмидту после пробной диеты в течение суток у здорового человека выделяется 200-250г. экскрементов. Увеличение суточного количества кала (полифекалия) может быть обусловлено нарушением всасывания, желчеотделения, заболеваниями желудка, поджелудочной железы и кишечника.

Вот почему для исследования степени усвоения пищи должна быть собрана вся суточная порция фекалий.

ЗАПОМНИТЕ! В лабораторию нельзя доставлять кал после клизмы, введения свечей, приема внутрь красящих веществ, касторового и вазелинового масла, белладонны, пилокарпина, железа, висмута, бария.

Дата добавления: 2019-01-14 ; просмотров: 130 ; ЗАКАЗАТЬ РАБОТУ

источник

ЦЕЛЬ: выявление атипичных клеток, вызывающих опухоли.

ОСНАЩЕНИЕ: чистый сухой флакон с крышкой.

№ отделения №палаты НАПРАВЛЕНИЕ В клиническую (цитологическую) лабораторию Мокрота на атипичные клетки ИВАНОВ ИВАН ПЕТРОВИЧ Дата: Подпись медсестры:

Этапы	Примечания
ПОДГОТОВКА К ПРОЦЕДУРЕ
1. Объяснить пациенту цель и необходимость предстоящего исследования.	Пациент имеет право на информацию.
2. Обеспечить лабораторной посудой.	В условиях стационара выписать направление по установленной форме.
3. Обучить технике сбора мокроты, проинструктировать о порядке сбора мокроты.	Мокроту собирать только при кашле, а не при отхаркивании. Если пациент испытывает трудности при обучении, оставить письменные рекомендации.
4. Предупредить, что утром, натощак, почистить зубы и тщательно прополоскать рот.	Гигиена ротовой полости предохраняет от попадания содержимого полости рта в мокроту.
ВЫПОЛНЕНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
Откашлять и собрать мокроту в чистую банку в количестве 3-5 мл и закрыть крышку.	Для большей вероятности попадания опухолевых клеток в мокроту иногда применяют предварительные ингаляции с протеолитическим ферментом трипсином, способствующим выхождению мокроты из наиболее глубоких отделов бронхиального дерева.
ОКОНЧАНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
Флакон с посудой сразу же отдать медсестре.	В лабораторию мокрота доставляется сразу же свежевыделенной, так как атипичные клетки быстро разрушаются.

Обучение пациента сбору мокроты на бактериологическое исследование

ПОКАЗАНИЯ: заболевания органов дыхания.

ОСНАЩЕНИЕ: стерильная стеклянная широкогорлая банка с крышкой из крафт-бумаги, направление в лабораторию.

№ отделения №палаты НАПРАВЛЕНИЕ В бактериологическую лабораторию Мокрота на микрофлору и чувствительность к антибиотикам ИВАНОВ ИВАН ПЕТРОВИЧ Дата: Подпись медсестры:

Этапы	Примечания
ПОДГОТОВКА К ПРОЦЕДУРЕ
1. Предупредить и объяснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования.	Пациент имеет право на информацию.
2. Объяснить, что сбор мокроты целесообразно проводить до начала антибиотикотерапии.
3. Обучить технике сбора мокроты: ü предупредить, что собирают мокроту только при кашле, а не при отхаркивании; ü объяснить, что необходимо соблюдать правила личной гигиены до и после сбора мокроты; ü объяснить, что необходимо вечером почистить зубы, а утром, натощак прополоскать рот и глотку кипяченой водой непосредственно перед сбором.	Если пациент испытывает трудности при обучении, оставьте письменные рекомендации. Чистить зубы можно за два часа до сбора мокроты.
ВЫПОЛНЕНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
1. Открыть крышку банки.
2. Откашлять и собрать мокроту (не слюну) в стерильную банку в количестве не менее 5 мл.	Следите, чтобы мокрота не попала на край банки, и не касайтесь внутренней поверхности крышки и банки.
3. Закрыть крышку.
ОКОНЧАНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
Прикрепить направление и доставить в бактериологическую лабораторию.	Исследуется свежевыделенная мокрота не позднее 1-1,5 часов. В условиях стационара в бактериологическую лабораторию мокроту доставляют в герметичном контейнере, а если необходимо транспортировать мокроту на дальнее расстояние, то используется спецтранспорт.

Дезинфекция мокроты и карманных плевательниц в домашних условиях

ЦЕЛЬ: обеспечить инфекционную безопасность. Обеззараживание мокроты и посуды, в которой она находится, проводится одним из способов:

ü налить в плевательницу дезинфицирующий раствор на 1/4 объема, например , 5% раствора хлорамина или 1% активированного раствора хлорамина (или другой регламентированный дезинфицирующий раствор);

ü дать пациенту плевательницу, объяснив необходимость заполнения ее мокротой до метки 3/4 объема плевательницы;

ü обеззаразить мокроту в плевательнице, залив в нее доверху дезинфицирующий раствор на 4 часа;

ü вылить мокроту в канализацию.

Примечание: можно обеззаразить плевательницу методом кипячения в 2% растворе питьевой соды в течение 15 минут.

VIII. Забор материала из зева и носа для бактериологического исследования

НАПРАВЛЕНИЕ В ________________ бактериологическую__________лабораторию (какую) направляется______мазок из зева (З) и носа (Н)_________________ для исследования____на дифтерию___________________________ (цель исследования) Ф.И.О. пациента ____ИВАНОВ ИВАН ПЕТРОВИЧ_____________ Возраст ______________40 лет__________________________________ Место нахождения пациента_БСМП, инфекционное отделение_ Дата, час _______________20 мая 1998 г. 8 час. 40 мин.____________ Подпись взявшего анализ _____________________________________

ЦЕЛЬ: выявить возбудителя заболевания.

ü штатив со стерильными пробирками, плотно закрывающимися ватно-марлевыми тампонами, в которые вмонтированы стержни с накрученными сухими ватными тампонами для забора материала;

ü шпатель стерильный в крафт-пакете;

ü бикс для транспортировки пробирок, штатив;

Забор материала из зева

Этапы	Примечания
ПОДГОТОВКА К ПРОЦЕДУРЕ
1. Объяснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования, сроки получения результата исследования и получить согласие на процедуру.	Объяснить пациенту, что забор материала из зева проводится утром, натощак, до приема лекарственных средств. Достоверный ответ получают через 5-7 дней, если правильно подготовлен пациент и правильно взят мазок.
2. Вымыть руки, надеть маску, перчатки.	Обеспечение инфекционной безопасности.
3. Усадить пациента лицом к источнику света, сесть напротив пациента.
4. Поставить стеклографом номер на пробирках, соответствующий номеру в направлении: ЗЕВ-№1, установить пробирку в штатив.	Порядковый номер каждой пробирки должен соответствовать номеру направления с указанием Ф.И.О. пациента.
5. Взять в левую руку шпатель и пробирку с меткой ЗЕВ-№1	Убедиться, что пробирка соответствует фамилии, имени, отчеству (Ф.И.О.) данного пациента.
ВЫПОЛНЕНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
1. Попросить пациента открыть рот, ввести шпатель в рот, фиксировать им язык пациента.	Обеспечение инфекционной безопасности.
2. Извлечь правой рукой из пробирки стержень со стерильным тампоном, держа его за пробку в виде ватно-марлевого тампона.	Обеспечение инфекционной безопасности.
3. Взять мазок, не касаясь стерильным тампоном слизистой оболочки полости рта и языка, последовательно обтерев правую миндалину, затем небную дужку, язычок, левую небную дужку, левую миндалину и заднюю стенку глотки.	Провести только одним тампоном справа и слева (при подозрении на дифтерию – на границе измененной и неизмененной поверхности миндалин). При неяснолокализованных изменениях взять мазки двумя тампонами: из очага и из всех других секторов ротоглотки, указав это на пробирке.
4. Вынуть шпатель из полости рта, погрузить в дезраствор.	Шпатель после дезинфекции подлежит предстерилизационной обработке и стерилизации.
5. Извлечь тампон, не касаясь им слизистой оболочки полости рта и языка.	Обеспечение инфекционной безопасности.
6. Ввести тампон в пробирку, не касаясь наружной поверхности пробирки, плотно закрыть ее.	Тампон должен как можно меньше времени находиться в нестерильных условиях окружающей среды.
7. Поставить пробирку в штатив, затем в бикс, закрыв его на «замок».	На биксе имеются специальные приспособления для надежного укрепления крышки бикса.
ОКОНЧАНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
1. Снять перчатки, маску, погрузить их в дезинфицирующий раствор.	Обеспечение инфекционной безопасности.
2. Вымыть и осушить руки.
3. Оформить направление в бактериологическую лабораторию.
4. Доставить пробирку с сопроводительным документом в лабораторию.	Пробирку можно хранить в специальном холодильнике не более 2-3 часов.

Забор материала из носа

Этапы	Примечания
ПОДГОТОВКА К ПРОЦЕДУРЕ
1. Объяснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования и получить согласие на процедуру.	Пациент имеет право на информацию.
2. Осмотреть полость носа, убедиться, что она чистая.	При необходимости очистить нос (предложить пациенту высморкаться), удалить корки из полости носа, размягчив их стерильным вазелиновым маслом, затем очистить сухим ватным фитилем.
3. Вымыть руки с мылом, надеть маску и перчатки.	Обеспечение инфекционной безопасности.
4. Поставить стеклографом номер на пробирках, соответствующий номеру в направлении: НОС-2, установить пробирку в штатив.	Порядковый номер каждой пробирки должен соответствовать номеру направления с указанием Ф.И.О. пациента.
5. Усадить пациента лицом к источнику света. Сесть напротив пациента.
ВЫПОЛНЕНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
1. Взять закрытую пробирку с меткой «НОС-2» в левую руку под 3, 4, 5 пальцы, а правой рукой извлечь из нее тампон.	Пальцы правой руки должны касаться только пробки пробирки, в которую вмонтирован стержень с тампоном.
2. Приподнять кончик носа пациента большим пальцем левой руки, а правой ввести тампон вглубь правой, затем левой полости носа.	Тампон вводится легким вращательным движением в нижний носовой ход на глубину 1,5-2 см.
3. Извлечь тампон из полости носа.	Тампон должен как можно меньше времени находиться в нестерильных условиях окружающей среды.
4. Осторожно, не касаясь наружной поверхности пробирки, ввести в нее тампон.	Следите, чтобы пробирка была плотно закрыта.
5. Поставить пробирку в штатив для пробирок, затем в бикс, закрыв его на «замок».	Проверить соответствие номера пробирки с номером направления и Ф.И.О. пациента. На биксе имеются специальные приспособления для надежного укрепления крышки бикса.
ОКОНЧАНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
1. Снять перчатки, маску, погрузить их в дезинфицирующий раствор.	Обеспечение инфекционной безопасности.
2. Вымыть и осушить руки.
3. Оформить направление в бактериологическую лабораторию.
4. Доставить взятый материал в биксе с направлением в бактериологическую лабораторию.	Пробирку можно хранить в специальном холодильнике не более 2-3 часов.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском гугл на сайте:

источник

— заболевания органов дыхания и ССС.

— чистая стеклянная широкогорлая банка из прозрачного стекла, направление.

Последовательность действий:

1. Объяснить правила сбора, получить согласие.

2. Утром почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой.

3. Откашлять и собрать в банку 3-5 мл мокроты, закрыть крышкой.

5. Доставить в клиническую лабораторию в течение 2 часов.

— Для определения суточного количества мокроту собирают в течение суток в одну большую посуду и хранят в прохладном месте.

— Мокроту рекомендуется собирать в специально оборудованном помещении у открытого окна или форточки.

— Не допускается загрязнение банки с наружной стороны.

Оценивается: консистенция (вязкая, студенистая, стекловидная), цвет (прозрачная, гнойная, серая, кровянистая), клеточный состав (наличие лейкоцитов, эритроцитов, эпителия, дополнительных включений.

— выявления возбудителя заболевания и определение чувствительности его к антибиотикам.

— стерильная пробирка или банка с крышкой (заказывается в бак. лаборатории), направление.

Последовательность действий:

1. Объяснить цель и суть сбора мокроты, получить согласие.

2. Утром натощак после туалета полости рта и до назначения а/б.

3. Пробирку или банку поднести ко рту, открыть ее, не касаясь краев посуды руками и ртом откашлять мокроту и сразу закрыть крышкой, соблюдая стерильность.

4. Отправить анализ в баклабораторию в течение 2 часов в контейнере спецтранспортом. Примечание: стерильность посуды сохраняется в течение 3 суток.

Сбор мокроты на МБТ (микобактерии туберкулеза):

Порядок сбора мокроты:

1. Объяснить суть и цель назначения, получить согласие.

3. Утром натощак после туалета полости рта после нескольких глубоких вдохов откашлять мокроту в чистую сухую банку (15-20 мл), закрыть крышкой. Если мокроты мало, то ее можно собирать в течение 1-3 суток, сохраняя в прохладном месте.

4. Доставить анализ в клиническую лабораторию.

Примечание: Если назначается посев мокроты на ВК, то мокрота собирается в стерильную посуду в течение 1 суток, храня в прохладном месте, и доставляется в баклабораторию.

Сбор мокроты на атипичные клетки:

— диагностическая (диагностика, исключение онкопатологии).

Последовательность сбора:

1. Объяснить пациенту правила сбора мокроты.

2. Утром после туалета полости рта собрать мокроту в чистую сухую банку.

4. Доставить в цитологическую лабораторию сразу, т.к. атипичные клетки быстро разрушаются.

Правила пользования карманной плевательницей:

Плевательницей пользуются пациенты, выделяющие мокроту.

Запрещается:

— сплевывать мокроту на улице, в помещении, в платок, полотенце;

Плевательница дезинфицируются по мере заполнения, но не реже 1 раза в сутки. При большом количестве мокроты – после каждого использования.

Для обеззараживания мокроты: залить 10% хлорной известью в соотношении 1:1 на 60 мин или засыпать сухой хлорной известью из расчета 200 г/л мокроты на 60 мин.

При выделении или подозрении на ВК — 10% хлорная известь на 240 мин или сухая хлорная известь на 240 мин в тех же соотношениях; 5% хлорамином на 240 мин.

После обеззараживания мокроту сливают в канализацию, а посуду, в которой обеззараживалась мокрота, моют обычным способом с последующей дезинфекцией.

Обеззараживание карманных плевательниц: кипячение в 2% растворе соды 15 мин или в 3% хлорамин на 60 мин.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: Как то на паре, один преподаватель сказал, когда лекция заканчивалась — это был конец пары: «Что-то тут концом пахнет». 8334 — | 7954 — или читать все.

193.124.117.139 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.

Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)
очень нужно

источник

Атипичная бронхиальная клетка

Общее описание

Атипичные клетки представляют собой клетки, резко отличающиеся по своим морфологическим характеристикам от аналогичных клеток той же ткани, имеющих нормальную структуру. Наличие в мокроте атипичных клеток свидетельствует о наличии злокачественного новообразования, затрагивающего дыхательные пути. Образование атипичных клеток является общим свойством злокачественных опухолей. При раке патологическому преобразованию подвергаются клетки эпителия. Такое свойство клеток, связанное с изменением их морфологии при злокачественном опухолевом росте, называется клеточным атипизмом, а измененные клетки, соответственно, атипичными. Нередко опухолевые клетки настолько изменяются, что визуально установить их первичную принадлежность к той или иной ткани становится невозможным.

Атипичные клетки обладают способностью легко отделяться от ткани из-за потери некоторых качеств межклеточных соединений. Отделившиеся клетки откашливаются вместе с мокротой. Кроме самих атипичных клеток в мокроте при злокачественных опухолях могут быть обнаружены кусочки опухолевой ткани, эритроциты, лейкоциты.

Аудитория риска

Анализ мокроты на атипичные клетки назначается больным, у которых подозревается злокачественное новообразование дыхательных путей. Обычно исследуется мокрота больных при длительном кашле, длительном незначительном повышении температуры тела, при обнаружении при флюорографии или рентгенографии теней в легких неясного происхождения, в случаях, когда имеется кровохарканье невыясненного генеза.

Подготовка и проведение исследования

Мокрота собирается утром в специально подготовленную чистую емкость утром до приема пищи. Для этого больной тщательно полоскает ротоглотку водой, после чего глубоко вдыхает воздух через рот и продолжительно откашливается. Нередко мокроты отделяется недостаточно, в этих случаях накануне исследования проводятся раздражающие ингаляции, например, с йодидом калия. Собранная мокрота доставляется в лабораторию.

Лаборант наносит мокроту на предметное стекло и подробно последовательно просматривает под световым микроскопом большое количество полей зрения. Атипичные клетки имеют ряд особенностей строения, позволяющих отличить их от клеток нормального эпителия:

клеточный полиморфизм представляет собой значительные различия в строении, размерах и форме клеток одного класса;
крупные, гиперхромные (интенсивно окрашенные) ядра, при этом соотношение площади ядра и цитоплазмы сдвигается в сторону ядра (так называемый ядерно-цитоплазматический сдвиг);
ядра атипичных клеток различаются по размерам и внешнему виду (ядерный полиморфизм);
появляются крупные ядрышки;
нередко встречаются многоядерные клетки;
присутствуют картины патологического деления (патологических митозов).

Нередко исследование мокроты на атипичные клетки проводится несколько раз: в одних случаях, когда вероятен диагноз рака легких, но атипичные клетки не выявляются, в других, когда выявлены единичные клетки, обладающие свойствами атипизма, но диагноз рака является сомнительным. В любом случае изолированно анализ мокроты на атипичные клетки не позволяет полноценно выставить диагноз новообразования и является лишь частью комплекса диагностических процедур.

Методы исследования

Мокрота с целью выявления атипичных клеток исследуется с помощью микроскопического изучения.

Показатель источник

Исследование мокроты — одно из первых диагностических мероприятий, применяемых у больных с легочной патологией.

Это исследование позволяет выявить даже carcinoma in situ.

Успех цитологической диагностики зависит от правильного сбора мокроты и ее обработки, а также правильной интерпретации цитологической картины.

Высокая эффективность цитологического исследования мокроты при выявлении рака может быть достигнута только путем ее последовательною четырех- или пятикратного исследования (ежедневно или через 1-2 дня).

Для анализа следует брать утреннюю порцию мокроты, откашливаемой больным натощак. В лабораторию мокроту доставляют не позднее 1-1 3/4, ч после откашливания. М. Clee и соавт. (1982) указывают также на необходимость быстрой фиксации мазков без высушивания, при котором нарушается ее структура.

Распознавание рака легкого на основании результатов исследования мокроты зависит от клилико-анатомической формы, типа роста и гистологической структуры опухоли, наличия ателектаза, квалификации врача-цитолога. При центральном раке опухолевые клетки в мокроте удается обнаружить у 52-88% больных: результативность метода при периферическом раке ниже — 33-61% (Агамова К.А., 1993).

Особую ценность имеет цитологическое исследование мокроты, полученной после бронхоскопии: выявляемость рака возрастает до 94% при центральном и до 13% при периферическом раке, а корреляция цитологических и гистологических Данных относительно типа рака легкого отмечается в 82-90% случаев.

В последние годы особое внимание уделяют уточнению дифференциально-диагностических цитологических критериев различных гистологических форм рака легкого для разных объектов, вопросам потенциально предраковых изменений бронхиального эпителия, поиску цитологических маркеров, отражающих состояние эпителия, предшествующее возникновению рака и патогенетически с ним связанное, т.е. дисплазию различной степени выраженности.

Морфологические проявления дисплазии используют как критерий для формирования групп повышенного риска развития злокачественных опухолей легких в программах скрининга раннего рака легкого (Зырянов Б.Н. и др., 1997; Quin D. et al., 1991; Strauss G. et al., 1993).

Детализированная цитологическая классификация предраковых состояний легких разработана в МНИОН им П.А. Герцена (Агамова К.А. и др., 1983): базально-клеточная гиперплазия; гиперплазия бокаловидных клеток; плоскоклеточная метаплазия бронхиального эпителия безатипии клеток; атипическая плоскоклеточная метаплазия бронхиального эпителия; дисплазия, подозрительная в отношении перехода в рак.

Частота распознавания плоскоклеточного рака на основании результатов исследования мокроты 60-65%, мелкоклеточного 54-61%, железистого 22-50% и крупноклеточного 30-42% (Wacha L. et al., 1979; Sanz O.J. et al., 1982).

По данным A. Ng и G. Horak (1983), результативность цитологического исследования мокроты составляет 88,2% (85% при плоскоклеточном, мелкоклеточном и крупноклеточном раке, 75% при аденокарциноме, бронхиолоальвеолярном и железисто-плоскоклеточном раке).

Они установили корреляцию между результатами цитологической диагностики и количеством исследований: при троекратном — 83%, пятикратном и более — 90%. По мере снижения дифференцировки опухолевых клеток показатель корреляции цитологических и гистологических данный снижается.

Исследование мокроты нередко позволяет в самом начале болезни, ло применения бронхоскопии, установить морфологический диагноз (рис. 3.42, 3.43). Это очень важно для тех больных, у которых клинико-рентгенологическая симптоматика заболевания скудна, диагноз рака сомнителен или его наличие не предполагается.

Рис. 3.42. Цитограмма мокроты при высокодифференцированном плоскоклеточном раке легкого. Окраска по Паппенгейму. х 400.

Рис. 3.43. Цитограмма мокроты при аденокарциноме легкого (умеренно дифференцированной). Окраска по Паппенгейму. х 400.

При цитологическом исследовании мокроты можно обнаружить предопухолевое состояние слизистой оболочки бронхов, включая эпидермоидную метаплазию и внутриэпителиальный рак.

Высока эффективность цитологического исследования мокроты при диагностике центрального рака легкого ранних стадий. При наличии опухоли, не выходящей за пределы устья сегментарного бронха (Т1), у большинства больных на основании результатов цитологического исследования мокроты удается морфологически верифицировать диагноз.

Элементы опухоли в мокроте довольно часто обнаруживают среди клеток метаплазированного эпителия. Таким образом, у большого числа больных центральным раком в стадии T1N0M0 опухоль выявляют при цитологическом исследовании до госпитализации и эндоскопического исследования.

Цитологические заключения о раке по мокроте оказываются правильными в 91-92% случаев, ложноположительными — в 1-6% наблюдений. Отсутствие элементов рака в мокроте не дает основания отрицать наличие опухоли легкого.

Достоинство метода заключается в том, что его можно применять амбулаторно. Если кашель отсутствует, то его вызывают искусственно с помощью специального аэрозоля — смеси 15% раствора хлорида натрия и 15% раствора пропиленгликоля.

Результативность цитологического исследования мокроты при злокачественных неэпителиальных опухолях легких значительно ниже, чем при раке легкого.

Только у 16% больных в мокроте находят атипические клетки, что позволяет диагностировать злокачественную опухоль легкого. Установить гистологический тип неэпителиальной злокачественной опухоли удается редко (рис. 3.44). Этот метод в ряде случаев является основным при оценке правильности диагноза.

Рис. 3.44. Цитограммы мокроты при нейросаркоме (а) и злокачественной фиброзной гистисицитоме (б). Окраска по Паппенгейму. х 400.

Затруднения, возникающие при морфологической верификации злокачественных неэпителиальных опухолей на основании исследования мокроты, можно часто объяснить тем, что чаще всего наблюдается периферическая клинико-анатомическая форма данного заболевания, хотя при цитологическом исследовании материала, полученного при бронхоскопии, верифицировать злокачественную опухоль удается в 4 раза чаще.

источник

Цель: обеспечить достоверность диагностики заболеваний дыхательной системы (рака лёгкого).

Оснащение: чистый одноразовый контейнер, направление в лабораторию.

Показания:заболевания органов дыхания.

1. Предупредить и объснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования.

2. Обеспечить лабораторной посудой и направлением.

3. Обучить технике сбора мокроты. Предупредить, что собирают мокроту только при кашле, а не при отхаркивании.

4. Объснить, что необходимо почистить зубы утром и прополоскать рот кипяченой водой непосредственно перед сбором мокроты .

5. Открыть плевательницу. Откашлять и собрать мокроту в чистый одноразовый контейнер. Закрыть крышку. Отдать медсестре.

6. Приклеить направление и доставить в клиническую лабораторию как можно скорее.

7. Мокроту отправляют в лаборатоию сразу, так как атипичные клетки быстро разрушаютя.

Сбор мокроты на чувствительность к антибиотикам

Цель: подбор эффективного антибиотикка

Оснащение: стерильный одноразовый контейнер, направление в лабораторию.

Показания:заболевания органов дыхания.

1. Предупредить и объснить пациенту смысл и необходимость предстоящего

2. Накануне исследования необходимо получить из бактериологической лаборатории

стерильный одноразовый контейнер

3. Объяснить, что сбор мокроты целесообразно проводить до начала

4. Оформите направление на исследование.

5. Объясните пациенту, что мокроту собирают утром натощак.

6. Объясните, что необходимо перед сбором мокроты почистить зубы и

прополоскать рот кипяченой водой непосредственно перед сбором.

7. Первая порция мокроты не собирается в контейнер, а сплёвывается.

8. Последующая порция мокроты собирается в стерильный одноразовый контейнер.

9. Собранную мокроту вместе с направлением доставьте в бактериологическую

Взятие мокроты на микобактерии туберкулеза

Цель: обеспечить достоверность диагностики заболеваний органов дыхания Показания:заболевания органов дыхания, подозрение на туберкулез.

Оснащение: 3 стерильные одноразовые контейнера, с крышкой, направление в

1. Установить доверительные отношения с пациентом.

2. Надеть спецодежду – халат, колпак, маску, перчатки.

3. Взять медицинскую форму ТБ 05 у пациента.

4. Ознакомить пациента с процедурой сбора мокроты.

5. Занести данные о пациенте из ТБ 05 в журнал сбора мокроты.

6. Отметить имя пациента и номер образца на контейнере.

7. Попрость пациента помыть руки, тщательно ополоснуть рот.

8. Перед забором мокроты включить оконный вытяжной вентилятор.

9. Поставить пациента (стать) лицом к широко открытому окну.

10. Дать пациенту контейнер для сбора мокроты, открутить крышку

11. Встать позади пациента на расстоянии не менее 1 метра.

12. Попросить пациента откашлять 3-5 мл мокроты, сплюнуть ее в контейнер и наблюдать за выполнением процедуры.

13. Предложить пациенту плотно закрыть контейнер закручивающейся

крышкой и передать медсестре.

14. Убедиться в правильности закрытия контейнера, обработать его дезраствором, поставить в бикс. Перед транспортировкой наружная поверхность биксов обеззараживается 2-х кратной обработкой одним из имеющихся дез.средств (люмакс-хлор 0,1%, хлордезин 2% и т. Д.)

15. После приёма каждого пациента медицинская сестра должна помыть руки с мылом под проточной водой.

16. При завершении работы снять перчатки, колопак, маски, халат, бумажные

полотенца и сбросить в емкость с отходами класса «В» (упаковка красного цвета).

17. Выдать пациенту чистый контейнер для сбора второго образца мокроты

(ночую мокроту собирают во второй контейнер ) дома утром следующего дня и попросить принести контейнер в кабинет забора мокроты.

18. Предупредить пациента о необходимости сдачи третьего образца

мокроты в кабинете сбора мокроты.

19. Отметить в журале сбора мокроты проведение процедуры.

20. Выключить вытяжной оконный вентилятор через 10 минут после ухода

Забор материала из зева

Цель: Выявить возбудителя заболевания Оснащение: штатив со стерильными пробирками, плотно закрывающимися ватно-марлевыми тампонами, в которые вмонтированы стержни с накрученными сухими ватными тампонами для забора материала; шпатель стерильный в крафт-пакете; бикс для транспортировки пробирок, штатив; стеклограф. 1. Объяснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования, сроки получения результата исследования и получить согласие на процедуру. 2. Вымыть руки, надеть маску, перчатки.

3. Усадить пациента лицом к источнику света, сесть напротив пациента. 4. Поставить стеклографом номер на пробирках, соответствующих номеру в

направлении: ЗЕВ- №1. 5. Взять в левую руку шпатель и пробирку с меткой: ЗЕВ-№1.

6. Попросить пациента открыть рот, фиксировать им язык пациента.

7. Извлечь правой рукой из пробирки стержень со стерильным тампоном, держа его за пробку в виде ватно-марлевого тампона.

8. Взять мазок, не касаясь стерильным тампоном слизистой оболочки полости рта и языка, последовательно обтирая правую миндалину, затем небную дужку, язычок, левую небную дужку, левую миндалину и заднюю стенку глотки. 9. Извлечь тампон, не касаясь им слизистой оболочки полости рта и языка.

10.Ввести тампон в пробирку, не касаясь наружной поверхности пробирки, плотно

закрыть её. 11. Поставить пробирку в штатив для пробирок, затем в бикс, закрыв его на «замок». 12. Снять перчатки, маску утилизировать в КБУ.

13. Вымыть и осушить руки. 14. Оформить направление. 15.Доставить взятый материал в биксе с направлением в бактериологическую лабораторию.

Забор материала из носа

1.Объяснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования, сроки

получения результата исследования и получить согласие на процедуру. 2. Вымыть, осушить руки, надеть перчатки. 3. Поставить стеклографом номер на пробирках, соответствующих номеру в

направлении: НОС- №2, установить пробирку в штатив. 4. Усадить пациента лицом к источнику света, сесть напротив пациента.

5. Взять закрытую пробирку с меткой «НОС-2» в левую руку под 3,4,5 пальцы, а правой

рукой извлечь из нее тампон.

6. Приподнять кончик носа пациента большим пальцем левой руки, а правой – ввести

тампон вглубь правой, затем левой полости.

7. Извлечь тампон из полости носа. 8. Осторожно, не касаясь наружной поверхности пробирки, ввести в нее тампон.

9. Поставить пробирку в штатив для пробирок, затем в бикс, закрыв его на «замок».

10. Снять перчатки, маску утилизировать в КБУ класса Б.

11. Вымыть и осушить руки. 12. Оформить направление. 13. Доставить взятый материал в биксе с направлением в бактериологическую

Дуоденальное зондирование

Цель: все три порции желчи исследуются

микроскопически (определение простейших, лямблий их цисты, описторхии, клетки опухоли, лейкоциты, кошачей, китайской, печёночной двуустки, аскоридов);

химически (определение билирубина, холестерин, желчные кислоты, белок);

бактериологически имеет лишь относительное значение, так как трудно установить, откуда флора – из полости рта, кишечника, желчных путей, и если, дважды одинаков анализ – то бактерионосительство;

лечебная для оттока желчи при застойных явлениях.

Оснащение: стерильный одноразовый дуоденальный зонд, шприц 20 мл одноразовый, зажим, почкообразный лоток, пробирки конусообразные 5-6 штук, полотенце, салфетки, резиновые перчатки, направление в лабораторию, грелка, штатив для пробирок, низкая скамейка, стимуляторы желчного пузыря (сорбит 4-5 пакетов, глюкоза 40%), стакан с тёплой водой.

Показания: взятие желчи для диагностики заболеваний желчного пузыря, желчных путей и с лечебной целью – для стимуляции оттока желчи при застойных явления в желчном пузыре.

Противопоказания: острый холецистит, обострение хронического холецистита, кровотечение.

1. Установить доверительные отношения с пациентом, получить согласие на проведение процедуры.

2. Подготовить пациента за 3 дня до исследования (назначается диета №4):

исключить продукты, вызывающие газообразование;
применять на ночь грелку на область правого подреберья (если дуоденальное зондирование проводится с целью обнаружения лямблий или повторно, то грелка на ночь не применяется).
на ночь выпивать стакан очень сладкого чая, (если нет сахарного диабета) и дать 2 таблетки но-шпы.
предложить пациенту лёгкий ужин накануне вечером, не позднее 19 часов.

3. Исследование проводится утром натощак. Утром, в день исследования, нельзя пить, есть, принимать лекарственные средства, курить.

4. Надеть перчатки, взять зонд руки и в положении пациента стоя, определить расстояние на зонде: от мочки уха до резцов, от резцов до пупка плюс ладонь пациента, поставить метку.

5. Усадить пациента на кушетку и ввести смоченный зонд под краном, обычным способом.

6. Предложить пациенту проглотить зонд до первой метки (примерно 45 см), свободный конец зонда опустите в пробирку (пациент может ходить).

7. На протяжении 20-60 минут пациент заглатывает зонд до метки, когда пациент проглотит зонд до метки, предложите ему лечь на правый бок без подушки, с согнутыми в коленях ногами, положите теплую грелку, завёрнутую в салфетку, под правое подреберье.

8. Под голову положите полотенце.

9. В пробирку начнет поступать светлая, мутная жидкость (её выливают), а затем золотисто-желтая прозрачного цвета жидкость – это дуоденальная желчь – порция А, вязкое содержимое щелочной реакции (20-30 мл)

10. Для получения порции В (пузырная желчь), пациента поворачивают на спину и вводят разведенный сорбит 40-50 мл в зонд, подогретый до температуры тела (37-38ºС), пережимают зажимом.

11. Через 10-15 минут пациента опять поворачивают на правый бок, снимают зажим: через зонд поступает густая темно-оливкового цвета жидкость из желчного пузыря – это порция В, более вязкая желчь. За 20-30 минут выделяется 30-60 мл желчи из желчного пузыря.

12. Опустите зонд в следующую пробирку: вслед за желчью из желчного пузыря

начнет поступать печеночная желчь порция С лимонно-желтого цвета, менее

вязкая желчь. За 20-30 минут выделяется 15-20 мл печеночной желчи.

13.Пробирки помещают в стакан с тёплой водой.

14.Приложите салфетку, извлеките зонд, утилизируйте всё в КСБУ класса Б.

15. Подпишите пробирки (А, В, С), сразу отправьте их в клиническую лабораторию с

16.Снимите перчатки и утилизируйте их в КСБУ класса Б.

Последнее изменение этой страницы: 2016-04-19; Нарушение авторского права страницы

источник

Недопустимо направлять мокроту на исследование в емкостях, не предназначенных для этих целей, так как в них могут содержаться вещества, способные исказить результат анализов.

Нельзя разделять мокроту на две части для исследования в разных лабораториях, так как важные компоненты могут попасть только в один из контейнеров.

Мокрота собирается утром, натощак. Перед сбором мокроты почистите зубы и прополощите рот водой, чтобы удалить частицы пищи и бактериальный налет. Сделайте два глубоких вдоха, задерживая дыхание на несколько секунд, после каждого глубокого вдоха медленно выдыхайте. Затем вдохните в третий раз и с силой выдохните (вытолкните) воздух. Еще раз вдохните и хорошо откашляйтесь.
Поднесите контейнер как можно ближе ко рту и осторожно сплюньте в него мокроту после откашливания. Следите, чтобы мокрота не попала на край контейнера. Не касайтесь внутренней поверхности крышки и стенок стерильного контейнера пальцами. Плотно закройте контейнер крышкой.
Вымойте руки с мылом.
Собранную для исследования утреннюю мокроту доставьте в лабораторию не позднее, чем через 1–1,5 часа после сбора. При этом должны быть созданы условия, исключающие ее охлаждение при транспортировке. В противном случае в мокроте быстро произойдут изменения ее качеств, состава микробных колоний, что может исказить результаты исследования.

Внимание Нельзя собирать мокроту, выделяемую при отхаркивании, только при откашливании. Попадание слюны в образец может существенно влиять на результат исследования.

Общие правила сбора слюны

Внимание! Нецелесообразно проводить исследования слюны на фоне применения глюкокортикоидных препаратов (в т.ч. мазей).

За сутки до взятия слюны не употреблять алкоголь.

За час до сбора слюны не есть, не курить, не чистить зубы (если нет других указаний от лечащего врача).
За 10 минут до сбора слюны прополоскать рот водой.

За сутки и в течение всего периода сбора слюны исключить физические нагрузки, не употреблять кофеин (чай, кофе, кофеиносодержащие энергетические напитки, продукты, жевательная резинка), алкоголь;
За один час до сбора слюны не курить;
За 30 минут до сбора слюны не употреблять пищу, не чистить зубы, в том числе не использовать зубную нить и ополаскиватель для полости рта, не жевать жевательную резинку;
За 10 минут до сбора слюны прополоскать рот водой;
Прием седативных препаратов, кортизона ацетата, эстрогенов, пероральных контрацептивов, глюкокортикоидных препаратов (в т. ч. мазей) может вызвать повышение уровня кортизола. Отмена лекарственных препаратов осуществляется строго по рекомендации лечащего врача.

Продробнее о правилах сбора слюны для исследований «Кортизол в слюне» смотрите по ссылке

Мокрота собирается утром, натощак. Перед сбором мокроты почистите зубы и прополощите рот водой, чтобы удалить частицы пищи и бактериальный налет. Сделайте два глубоких вдоха, задерживая дыхание на несколько секунд, после каждого глубокого вдоха медленно выдыхайте. Затем вдохните в третий раз и с силой выдохните (вытолкните) воздух. Еще раз вдохните и хорошо откашляйтесь.
Поднесите контейнер как можно ближе ко рту и осторожно сплюньте в него мокроту после откашливания. Следите, чтобы мокрота не попала на край контейнера. Не касайтесь внутренней поверхности крышки и стенок стерильного контейнера пальцами. Плотно закройте контейнер крышкой.
Вымойте руки с мылом.
Собранную для исследования утреннюю мокроту доставьте в лабораторию не позднее, чем через 1–1,5 часа после сбора. При этом должны быть созданы условия, исключающие ее охлаждение при транспортировке. В противном случае в мокроте быстро произойдут изменения ее качеств, состава микробных колоний, что может исказить результаты исследования.

Внимание! Нельзя собирать мокроту, отделяющуюся при отхаркивании. Попадание слюны в образец может существенно влиять на результат исследования.

Мокрота собирается утром, натощак. Перед сбором мокроты почистите зубы и прополощите рот водой, чтобы удалить частицы пищи и бактериальный налет. Сделайте два глубоких вдоха, задерживая дыхание на несколько секунд, после каждого глубокого вдоха медленно выдыхайте. Затем вдохните в третий раз и с силой выдохните (вытолкните) воздух. Еще раз вдохните и хорошо откашляйтесь.
Поднесите контейнер как можно ближе ко рту и осторожно сплюньте в него мокроту после откашливания. Следите, чтобы мокрота не попала на край контейнера. Не касайтесь внутренней поверхности крышки и стенок стерильного контейнера пальцами. Плотно закройте контейнер крышкой.
Вымойте руки с мылом.
Собранную для исследования утреннюю мокроту доставьте в лабораторию не позднее, чем через 1–1,5 часа после сбора. При этом должны быть созданы условия, исключающие ее охлаждение при транспортировке. В противном случае в мокроте быстро произойдут изменения ее качеств, состава микробных колоний, что может исказить результаты исследования.

Внимание! Нельзя собирать мокроту, выделяемую при отхаркивании, только при откашливании. Попадание слюны в образец может существенно влиять на результат исследования.

Для бактериологического исследования мокроту собирают до начала антибактериальной терапии или через определенный промежуток времени после введения препарата.

Порядок сбора

Мокрота собирается утром, натощак. Перед сбором мокроты почистите зубы и прополощите рот водой, чтобы удалить частицы пищи и бактериальный налет. Сделайте два глубоких вдоха, задерживая дыхание на несколько секунд, после каждого глубокого вдоха медленно выдыхайте. Затем вдохните в третий раз и с силой выдохните (вытолкните) воздух. Еще раз вдохните и хорошо откашляйтесь.
Поднесите контейнер как можно ближе ко рту и осторожно сплюньте в него мокроту после откашливания. Следите, чтобы мокрота не попала на край контейнера. Не касайтесь внутренней поверхности крышки и стенок стерильного контейнера пальцами. Плотно закройте контейнер крышкой.
Вымойте руки с мылом.
Собранную для исследования утреннюю мокроту доставьте в лабораторию. При этом должны быть созданы условия, исключающие ее охлаждение при транспортировке. В противном случае в мокроте быстро произойдут изменения ее качеств, состава микробных колоний, что может исказить результаты исследования.

Внимание Мокрота собирается натощак.

Предварительно почистите зубы, десны и язык зубной щеткой и прополощите рот кипяченой водой комнатной температуры.

Порядок сбора

Сделайте два глубоких вдоха, задерживая дыхание на несколько секунд, после каждого глубокого вдоха медленно выдыхайте. Затем вдохните в третий раз и с силой выдохните (вытолкните) воздух. Еще раз вдохните и хорошо откашляйтесь.
Поднесите контейнер как можно ближе ко рту и осторожно сплюньте в него мокроту после откашливания. Следите, чтобы мокрота не попала на край контейнера. Не касайтесь внутренней поверхности крышки и стенок стерильного контейнера пальцами. Плотно закройте контейнер крышкой.
Вымойте руки с мылом.
Собранную для исследования утреннюю мокроту доставьте в лабораторию.

Мокрота. На грибы Cand >Внимание! Мокрота собирается до начала антибактериальной терапии.

Порядок сбора

Сделайте два глубоких вдоха, задерживая дыхание на несколько секунд, после каждого глубокого вдоха медленно выдыхайте. Затем вдохните в третий раз и с силой выдохните (вытолкните) воздух. Еще раз вдохните и хорошо откашляйтесь.
Поднесите контейнер как можно ближе ко рту и осторожно сплюньте в него мокроту после откашливания. Следите, чтобы мокрота не попала на край контейнера. Не касайтесь внутренней поверхности крышки и стенок стерильного контейнера пальцами. Плотно закройте контейнер крышкой.
Вымойте руки с мылом.
Собранную для исследования утреннюю мокроту доставьте в лабораторию.

Мокрота собирается до начала антибактериальной терапии. Предварительно почистите зубы, десны и язык зубной щеткой и прополощите рот кипяченой водой комнатной температуры.

Порядок сбора

Сделайте два глубоких вдоха, задерживая дыхание на несколько секунд, после каждого глубокого вдоха медленно выдыхайте. Затем вдохните в третий раз и с силой выдохните (вытолкните) воздух. Еще раз вдохните и хорошо откашляйтесь.
Поднесите контейнер как можно ближе ко рту и осторожно сплюньте в него мокроту после откашливания. Следите, чтобы мокрота не попала на край контейнера. Не касайтесь внутренней поверхности крышки и стенок стерильного контейнера пальцами. Плотно закройте контейнер крышкой.
Вымойте руки с мылом.
Собранную для исследования утреннюю мокроту доставьте в лабораторию.

Внимание! Качественным материалом для анализа считается мокрота, имеющая слизистый или слизисто-гнойный характер, а также содержащая плотные белесоватые включения.

У детей, не умеющих откашливать мокроту и заглатывающих ее, следует поступить следующим образом:

Вызвать рефлекторный кашель, раздражая ватным тампоном, накрученным на ручку чайной ложки область корня языка и задней стенки глотки.
Полученную мокроту собрать этим же тампоном и поместить в контейнер.

Так же следует поступать с очень слабыми больными, которые не могут откашляться самостоятельно.

источник

Смоленское областное государственное бюджетное профессиональное образовательное учреждение

«Вяземский медицинский колледж имени Е.О. Мухина»

«СБОР МОКРОТЫ НА ИССЛЕДОВАНИЕ»

ПМ.04. и ПМ. 07. Выполнение работ по профессии младшая медицинская сестра по уходу за больными

МДК. 04.03. и 07.03. Технология оказания медицинских услуг

31.02.01. Лечебное дело углубленной подготовки

34.02.01. Сестринское дело базовой подготовки

СБОР МОКРОТЫ НА КЛИНИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ

Показания: заболевания органов дыхания.

Оснащение: чистая сухая плевательница с крышкой, направление в лабораторию.

в клиническую лабораторию

Подпись м/с ______ Дата ____

I . Подготовка к процедуре

1. Подготовку к процедуре осуществлять накануне ве чером.

2. Идентифицировать пациента, представиться. Уточнить, как к нему обращаться.

3. Объяснить пациенту ход и цель процедуры. Указать, к каким последствиям может привести не соблюдение рекомендаций медсестры (нарушение условий подготовки и сбора материала ведет к ошибочным результатам исследования, что затрудняет диагностику и лечение).

4. Получить добровольное информированное согласие пациента на предстоящую процедуру. В случае отсутствия такового уточнить дальнейшие действия у врача.

5. Попросить пациента повторить информацию вслух, задать ему вопросы по алгоритму подготовки и сбора мокроты.

6. Обеспечить пациента чистой сухой плевательницей с крышкой и направлением в лабораторию. При необходимости дать ему письменную инструкцию.

1.Пациенту утром после сна , натощак, тщательно про полоскать рот кипяченой водой.

2.Сделать несколько глубоких вдохов; открыть крышку плевательницы, откашляться и собрать мокроту в чистую сухую пле вательницу (3- 5 мл).

3.Закрыть крышку пле вательницы крышкой.

4.Поставить емкость с биологическим материалом в специальный ящик в санитарной комнате.

1.Медицинской сестре обеспечить доставку биологического материала в клиническую лабораторию на исследование.

2.Сделать запись в медицинских документах о проведе нии процедуры и реакции пациента.

3.Подклеить полученные результаты исследования в медицинскую документацию.

СБОР МОКРОТЫ НА БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

Показания: заболевания органов дыхания.

Оснащение: стерильная плевательница (чашка Петри), направление в лабораторию.

в бактериологическую лабораторию

Подпись м/с ______ Дата ____

I . Подготовка к процедуре

1. Подготовку к процедуре осуществлять накануне ве чером.

2. Идентифицировать пациента, представиться. Уточнить, как к нему обращаться.

3. Объяснить пациенту ход, цель процедуры и особенности подготовки к ней, обратив особое внимание на правила использования стерильной лабораторной посуды. Указать, к каким последствиям может привести несоблюдение рекомендаций медсестры (нарушение условий подготовки и сбора материала ведет к ошибочным результатам исследования, что затрудняет диагностику и лечение).

6. Обеспечить пациента стерильной плевательницей (чашкой Петри) и направлением в лабораторию. При необходимости дать ему письменную инструкцию.

1. Пациенту утром после сна , натощак, почистить зубы и тщательно про полоскать рот кипяченой водой.

2. Откашляться, открыть крышку плевательницы и сплюнуть мокроту в стерильную сухую плевательницу, не касаясь краев посуды ртом или руками, стараться не допускать попадания слюны.

3. Быстро закрыть крышку плевательницы, соблюдая стерильность.

4.Поставить емкость с биологическим материалом в специальный ящик в санитарной комнате.

1.Медицинской сестре обеспечить доставку биологического материала в бактериологическую лабораторию на исследование.

2.Сделать запись в медицинских документах о проведе нии процедуры и реакции пациента.

3.Подклеить полученные результаты исследования в медицинскую документацию.

СБОР МОКРОТЫ НА ОПУХОЛЕВЫЕ КЛЕТКИ (АТИПИЧНЫЕ)

Показания: подозрение на злокачественное заболевание легких.

Оснащение: чистая сухая емкость с крышкой, направление в лабораторию.

в клиническую (цитологическую) лабораторию

Мокрота на атипичные клетки

Подпись м/с ______ Дата ____

1. Подготовку к процедуре осуществлять накануне ве чером.

2. Идентифицировать пациента, представиться. Уточнить, как к нему обращаться.

6. Обеспечить пациента чистой сухой емкостью с крышкой и направлением в лабораторию. При необходимости дать ему письменную инструкцию.

1. Пациенту утром после сна, натощак, тщательно прополоскать рот кипяченой водой.

2. Сделать несколько глубоких вдохов, открыть крышку сухой чистой емкости, откашляться и собрать мокроту в емкость.

3. Закрыть емкость крышкой и быстро отдать ее медсестре.

1. Медицинской сестре обеспечить доставку биологического материала в клиническую (цитологическую) лабораторию на исследование.

2 . Сделать запись в медицинских документах о проведении процедуры и реакции пациента.

3 . Подклеить полученные результаты исследования в медицинскую документацию.

СБОР МОКРОТЫ НА МИКОБАКТЕРИИ ТУБЕРКУЛЁЗА

МЕТОДОМ МИКРОСКОПИИ (БАКТЕРИОСКОПИЧЕСКИЙ МЕТОД)

Цель: диагностическая (обнаружение микобактерий туберкулёза).

Показания: ранняя диагностика туберкулёза.

Оснащение: стерильный контейнер (одноразовый или многоразовый с широким горлышком) с плотно завинчивающей крышкой, бланк направления (ф. № 05-ТБ/у).

Отделение _________ палата______

в клиническую лабораторию

Мокрота на ВК (микобактерии туберкулеза)

Подпись м/с ______ Дата _________

1. Подготовку к процедуре осуществлять накануне ве чером.

2. Идентифицировать пациента, представиться. Уточнить, как к нему обращаться.

3.Объяснить пациенту ход и цель процедуры. Предупредить пациента, что сбор мокроты проводится в специально отведённом изолированном месте. Собирается три образца мокроты в присутствии медицинской сестры.

5.Попросить пациента повторить информацию вслух, задать ему вопросы по алгоритму подготовки и сбора мокроты.

3. Обеспечить пациента емкостью для сбора мокроты и направлением в лабораторию. На боковой стенке контейнера указать номер образца мокроты.

1. Пациенту утром после сна, почистить зубы и тщательно прополоскать рот кипячёной водой.

2. Медицинская сестра (используя средства защиты: маску, перчатки, резиновый фартук) стоит сбоку от пациента, открывает крышку стерильной салфеткой и подаёт плевательницу пациенту.

3.Пациенту сделать несколько глубоких вдохов и выдохов, откашляться и собрать

мокроту в пле вательницу (достаточно 5 мл), передать плевательницу медицинской сестре.

4.Медицинская сестра закрывает плевательницу крышкой, ставит ее в контейнер (металлический бикс) для транспортировки образцов мокроты, оформляет сопроводительный лист (в 2-х экземплярах) доставки диагностического материала для микроскопического исследования на туберкулёз (ф.04-2-ТБ/у), который помещает в полиэтиленовый пакет.

— если вместо мокроты собрана слюна, повторить сбор мокроты;

— если количество мокроты недостаточно, ее собирают в течение суток, ночью храня в холодильнике, отправляя в лабораторию вместе с утренней порцией;

— в амбулаторных условиях возможен и самостоятельный сбор материала пациентом.

1. Направить контейнер с образцами мокроты в клиниче скую лабораторию на исследование.

2. Сделать запись в медицинских документах о проведе нии процедуры – журнал регистрации диагностического материала, собранного для микроскопических исследований на туберкулёз (ф. 04-1-ТБ/у).

3. Подклеить полученные результаты исследования в медицинскую документацию.

источник

Результат	Интерпретация