Подготовка пациента к анализу мокроты на чувствительность к антибиотикам

Цель. Изучение микрофлоры мокроты; определение чувствительности микрофлоры мокроты к антибиотикам.
Показания. Бронхиты, пневмония.
Противопоказания. Легочное кровотечение.
Оснащение. Направление в бактериологическую лабораторию; стерильная чашка Петри, завернутая в крафт-бумагу.
Техника взятия мокроты для бактериологического исследования.
1. Накануне вечером пациента предупреждают о предстоящем исследовании. Его просят, чтобы до момента забора мокроты (когда медицинская сестра придет к нему с лабораторной посудой) он не принимал пищи, воды, лекарств, не курил, не чистил зубы (антисептические средства, содержащиеся в пасте, ослабляют микрофлору) и приготовил стакан с кипяченой водой.
2. К пациенту приходят утром до завтрака и просят прополоскать рот кипяченой водой и хорошо откашляться.
3. Во время откашливаний освобождают чашку Петри от упаковки и снимают с нее крышку. Поднеся чашку Петри ко рту пациента, просят сплюнуть мокроту в чашку, не касаясь губами ее краев.
4. Сразу же закрывают чашку Петри, заворачивают ее и отправляют в лабораторию вместе с направлением.
5. При поступлении результата исследования его подклеивают в историю болезни.
Примечание. Не рекомендуется оставлять пациенту чашку Петри с вечера во избежание нарушения ее стерильности.

К основным исследованиям относятся измерение роста и веса больного, определение артериального давления, клинический анализ крови и мочи, определение группы крови и резус-фактора, рентгеноскопия органов грудной клетки, исследование кала на яйца глистов. При некоторых заболеваниях очень важно знать исходные показатели веса больного, так наблюдение за динамикой веса может иметь большое значение при подозрении на злокачественные новообразования, при подготовке к операции больных с тиреотоксическим зобом. Данные измерения роста нужны при некоторых методиках определения основного обмена. Анализ крови, который берут у всех поступивших больных, помогает врачу в постановке диагноза и лечении. Если больному по характеру заболевания, объему предстоящей операции потребуется переливание крови, необходимо определить группу крови и резус-принадлежность. Операционная травма усиливает нагрузку на почки, поэтому в предоперационном периоде изучают состояние почек, производят анализ мочи. Сестра следит за своевременной отправкой мочи на анализ и измеряет при необходимости суточное количество мочи (диурез). Иногда показатели диуреза диктуют проведение ряда дополнительных мероприятий в предоперационной подготовке больного. У всех больных, которые поступают для плановых операций, берут кровь для постановки реакции Вассермана. При положительной реакции иногда меняют тактику — операцию либо откладывают, либо отменяют. Состояние нервной системы, психики больного во многом определяет исход операции. В этом плане поведение медицинского персонала может очень помочь или, наоборот, принести огромный вред. Сестра является главным помощником врача в подготовке психики больного. Большинство больных волнуются перед операцией, а некоторые— настолько, что отказываются от оперативного лечения. В тех случаях, когда операция необходима, когда от нее зависит жизнь больного, сестра должна помочь врачу убедить больного в необходимости оперативного вмешательства.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: Для студента самое главное не сдать экзамен, а вовремя вспомнить про него. 9938 — | 7458 — или читать все.

источник

Цель: обеспечить достоверность диагностики заболеваний дыхательной системы (рака лёгкого).

Оснащение: чистый одноразовый контейнер, направление в лабораторию.

Показания:заболевания органов дыхания.

1. Предупредить и объснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования.

2. Обеспечить лабораторной посудой и направлением.

3. Обучить технике сбора мокроты. Предупредить, что собирают мокроту только при кашле, а не при отхаркивании.

4. Объснить, что необходимо почистить зубы утром и прополоскать рот кипяченой водой непосредственно перед сбором мокроты .

5. Открыть плевательницу. Откашлять и собрать мокроту в чистый одноразовый контейнер. Закрыть крышку. Отдать медсестре.

6. Приклеить направление и доставить в клиническую лабораторию как можно скорее.

7. Мокроту отправляют в лаборатоию сразу, так как атипичные клетки быстро разрушаютя.

Сбор мокроты на чувствительность к антибиотикам

Цель: подбор эффективного антибиотикка

Оснащение: стерильный одноразовый контейнер, направление в лабораторию.

Показания:заболевания органов дыхания.

1. Предупредить и объснить пациенту смысл и необходимость предстоящего

2. Накануне исследования необходимо получить из бактериологической лаборатории

стерильный одноразовый контейнер

3. Объяснить, что сбор мокроты целесообразно проводить до начала

4. Оформите направление на исследование.

5. Объясните пациенту, что мокроту собирают утром натощак.

6. Объясните, что необходимо перед сбором мокроты почистить зубы и

прополоскать рот кипяченой водой непосредственно перед сбором.

7. Первая порция мокроты не собирается в контейнер, а сплёвывается.

8. Последующая порция мокроты собирается в стерильный одноразовый контейнер.

9. Собранную мокроту вместе с направлением доставьте в бактериологическую

Взятие мокроты на микобактерии туберкулеза

Цель: обеспечить достоверность диагностики заболеваний органов дыхания Показания:заболевания органов дыхания, подозрение на туберкулез.

Оснащение: 3 стерильные одноразовые контейнера, с крышкой, направление в

1. Установить доверительные отношения с пациентом.

2. Надеть спецодежду – халат, колпак, маску, перчатки.

3. Взять медицинскую форму ТБ 05 у пациента.

4. Ознакомить пациента с процедурой сбора мокроты.

5. Занести данные о пациенте из ТБ 05 в журнал сбора мокроты.

6. Отметить имя пациента и номер образца на контейнере.

7. Попрость пациента помыть руки, тщательно ополоснуть рот.

8. Перед забором мокроты включить оконный вытяжной вентилятор.

9. Поставить пациента (стать) лицом к широко открытому окну.

10. Дать пациенту контейнер для сбора мокроты, открутить крышку

11. Встать позади пациента на расстоянии не менее 1 метра.

12. Попросить пациента откашлять 3-5 мл мокроты, сплюнуть ее в контейнер и наблюдать за выполнением процедуры.

13. Предложить пациенту плотно закрыть контейнер закручивающейся

крышкой и передать медсестре.

14. Убедиться в правильности закрытия контейнера, обработать его дезраствором, поставить в бикс. Перед транспортировкой наружная поверхность биксов обеззараживается 2-х кратной обработкой одним из имеющихся дез.средств (люмакс-хлор 0,1%, хлордезин 2% и т. Д.)

15. После приёма каждого пациента медицинская сестра должна помыть руки с мылом под проточной водой.

16. При завершении работы снять перчатки, колопак, маски, халат, бумажные

полотенца и сбросить в емкость с отходами класса «В» (упаковка красного цвета).

17. Выдать пациенту чистый контейнер для сбора второго образца мокроты

(ночую мокроту собирают во второй контейнер ) дома утром следующего дня и попросить принести контейнер в кабинет забора мокроты.

18. Предупредить пациента о необходимости сдачи третьего образца

мокроты в кабинете сбора мокроты.

19. Отметить в журале сбора мокроты проведение процедуры.

20. Выключить вытяжной оконный вентилятор через 10 минут после ухода

Забор материала из зева

Цель: Выявить возбудителя заболевания Оснащение: штатив со стерильными пробирками, плотно закрывающимися ватно-марлевыми тампонами, в которые вмонтированы стержни с накрученными сухими ватными тампонами для забора материала; шпатель стерильный в крафт-пакете; бикс для транспортировки пробирок, штатив; стеклограф. 1. Объяснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования, сроки получения результата исследования и получить согласие на процедуру. 2. Вымыть руки, надеть маску, перчатки.

3. Усадить пациента лицом к источнику света, сесть напротив пациента. 4. Поставить стеклографом номер на пробирках, соответствующих номеру в

направлении: ЗЕВ- №1. 5. Взять в левую руку шпатель и пробирку с меткой: ЗЕВ-№1.

6. Попросить пациента открыть рот, фиксировать им язык пациента.

7. Извлечь правой рукой из пробирки стержень со стерильным тампоном, держа его за пробку в виде ватно-марлевого тампона.

8. Взять мазок, не касаясь стерильным тампоном слизистой оболочки полости рта и языка, последовательно обтирая правую миндалину, затем небную дужку, язычок, левую небную дужку, левую миндалину и заднюю стенку глотки. 9. Извлечь тампон, не касаясь им слизистой оболочки полости рта и языка.

10.Ввести тампон в пробирку, не касаясь наружной поверхности пробирки, плотно

закрыть её. 11. Поставить пробирку в штатив для пробирок, затем в бикс, закрыв его на «замок». 12. Снять перчатки, маску утилизировать в КБУ.

13. Вымыть и осушить руки. 14. Оформить направление. 15.Доставить взятый материал в биксе с направлением в бактериологическую лабораторию.

Забор материала из носа

1.Объяснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования, сроки

получения результата исследования и получить согласие на процедуру. 2. Вымыть, осушить руки, надеть перчатки. 3. Поставить стеклографом номер на пробирках, соответствующих номеру в

направлении: НОС- №2, установить пробирку в штатив. 4. Усадить пациента лицом к источнику света, сесть напротив пациента.

5. Взять закрытую пробирку с меткой «НОС-2» в левую руку под 3,4,5 пальцы, а правой

рукой извлечь из нее тампон.

6. Приподнять кончик носа пациента большим пальцем левой руки, а правой – ввести

тампон вглубь правой, затем левой полости.

7. Извлечь тампон из полости носа. 8. Осторожно, не касаясь наружной поверхности пробирки, ввести в нее тампон.

9. Поставить пробирку в штатив для пробирок, затем в бикс, закрыв его на «замок».

10. Снять перчатки, маску утилизировать в КБУ класса Б.

11. Вымыть и осушить руки. 12. Оформить направление. 13. Доставить взятый материал в биксе с направлением в бактериологическую

Дуоденальное зондирование

Цель: все три порции желчи исследуются

микроскопически (определение простейших, лямблий их цисты, описторхии, клетки опухоли, лейкоциты, кошачей, китайской, печёночной двуустки, аскоридов);

химически (определение билирубина, холестерин, желчные кислоты, белок);

бактериологически имеет лишь относительное значение, так как трудно установить, откуда флора – из полости рта, кишечника, желчных путей, и если, дважды одинаков анализ – то бактерионосительство;

лечебная для оттока желчи при застойных явлениях.

Оснащение: стерильный одноразовый дуоденальный зонд, шприц 20 мл одноразовый, зажим, почкообразный лоток, пробирки конусообразные 5-6 штук, полотенце, салфетки, резиновые перчатки, направление в лабораторию, грелка, штатив для пробирок, низкая скамейка, стимуляторы желчного пузыря (сорбит 4-5 пакетов, глюкоза 40%), стакан с тёплой водой.

Показания: взятие желчи для диагностики заболеваний желчного пузыря, желчных путей и с лечебной целью – для стимуляции оттока желчи при застойных явления в желчном пузыре.

Противопоказания: острый холецистит, обострение хронического холецистита, кровотечение.

1. Установить доверительные отношения с пациентом, получить согласие на проведение процедуры.

2. Подготовить пациента за 3 дня до исследования (назначается диета №4):

исключить продукты, вызывающие газообразование;
применять на ночь грелку на область правого подреберья (если дуоденальное зондирование проводится с целью обнаружения лямблий или повторно, то грелка на ночь не применяется).
на ночь выпивать стакан очень сладкого чая, (если нет сахарного диабета) и дать 2 таблетки но-шпы.
предложить пациенту лёгкий ужин накануне вечером, не позднее 19 часов.

3. Исследование проводится утром натощак. Утром, в день исследования, нельзя пить, есть, принимать лекарственные средства, курить.

4. Надеть перчатки, взять зонд руки и в положении пациента стоя, определить расстояние на зонде: от мочки уха до резцов, от резцов до пупка плюс ладонь пациента, поставить метку.

5. Усадить пациента на кушетку и ввести смоченный зонд под краном, обычным способом.

6. Предложить пациенту проглотить зонд до первой метки (примерно 45 см), свободный конец зонда опустите в пробирку (пациент может ходить).

7. На протяжении 20-60 минут пациент заглатывает зонд до метки, когда пациент проглотит зонд до метки, предложите ему лечь на правый бок без подушки, с согнутыми в коленях ногами, положите теплую грелку, завёрнутую в салфетку, под правое подреберье.

8. Под голову положите полотенце.

9. В пробирку начнет поступать светлая, мутная жидкость (её выливают), а затем золотисто-желтая прозрачного цвета жидкость – это дуоденальная желчь – порция А, вязкое содержимое щелочной реакции (20-30 мл)

10. Для получения порции В (пузырная желчь), пациента поворачивают на спину и вводят разведенный сорбит 40-50 мл в зонд, подогретый до температуры тела (37-38ºС), пережимают зажимом.

11. Через 10-15 минут пациента опять поворачивают на правый бок, снимают зажим: через зонд поступает густая темно-оливкового цвета жидкость из желчного пузыря – это порция В, более вязкая желчь. За 20-30 минут выделяется 30-60 мл желчи из желчного пузыря.

12. Опустите зонд в следующую пробирку: вслед за желчью из желчного пузыря

начнет поступать печеночная желчь порция С лимонно-желтого цвета, менее

вязкая желчь. За 20-30 минут выделяется 15-20 мл печеночной желчи.

13.Пробирки помещают в стакан с тёплой водой.

14.Приложите салфетку, извлеките зонд, утилизируйте всё в КСБУ класса Б.

15. Подпишите пробирки (А, В, С), сразу отправьте их в клиническую лабораторию с

16.Снимите перчатки и утилизируйте их в КСБУ класса Б.

Последнее изменение этой страницы: 2016-04-19; Нарушение авторского права страницы

источник

Цель. Изучение состава мокроты.
Показания. Заболевания бронхолегочного аппарата.
Противопоказания. Легочное кровотечение.
Оснащение. Чистая сухая банка из прозрачного стекла с большим отверстием и плотно закрывающейся крышкой; направление в клиническую лабораторию.
Техника выполнения взятия мокроты для исследования на общий анализ.
1. Накануне вечером предупреждают пациента, чтобы утром с 6.00 до 7.00, не принимая пищи, воды, лекарств, не чистя зубов пастой и щеткой (щетка может травмировать слизистую и тогда в мокроте могут быть прожилки крови), он прополоскал рот кипяченой водой, а затем хорошо прокашлялся и, отхаркнув мокроту, сплюнул ее на дно банки, закрыл банку крышкой и поставил ее в определенном месте в санитарной комнате.
2. Отправляют мокроту к началу работы в лабораторию (с 7.00 до 8.00).
3. При поступлении результата его подклеивают в историю болезни.
Примечания. Крышкой для банки для собирания мокроты на общий анализ может служить плотная бумага или полиэтилен, закрепленный вокруг отверстия банки резинкой. Курить пациенту до собирания мокроты не рекомендуется.

Цель. Выделение микобактерии туберкулеза
Показания. Подозрение на туберкулез легких.
Оснащение. Стерильная сухая банка с плотно закрывающейся крышкой.
Техника взятия мокроты на микобактерии туберкулеза
1. Накануне вечером пациента предупреждают о предстоящем исследовании следующим образом: «Завтра с 6.00 утра вам нужно начать собирать мокроту на исследование. Мокрота на назначенное вам исследование собирается в течение суток. Это значит, что всю мокроту, которая будет у вас выделяться при кашле, необходимо сплевывать в эту банку. Банку, пожалуйста, ставьте в прохладное место и плотно закрывайте крышкой». Необходимо показать пациенту то место, где в течение суток будет храниться банка с мокротой.
2. Собранную мокроту отправляют в бактериологическую лабораторию.
3. Результат исследования вклеивают в медицинскую карту стационарного больного.
Примечания. Если у пациента выделяется мало мокроты и ее будет недостаточно для исследования, то мокроту можно собирать в течение 3 сут, сохраняя в прохладном месте.

источник

Анализ мокроты на микрофлору и чувствительность к антибиотикам является микробиологическим исследованием отделяемого из бронхов, которое выполняется для определения находящихся там микроорганизмов и выбора препаратов для этиотропной терапии. Это исследование обычно назначается пациентам с заболеваниями бронхов и легких. Чаще мокрота получается путем отхаркивания или при помощи аспирации. В некоторых случаях забор материала для анализа выполняется во время проведения бронхоскопии.

Какие микроорганизмы могут находиться в мокроте? Кому назначается этот анализ и как он проводится? Что может повлиять на его результаты? Ответы на эти вопросы можно получить, прочитав эту статью.

Основными показаниями для назначения анализа мокроты на микрофлору и чувствительность к антибиотикам являются следующие случаи:

При отсутствии заболеваний в мокроте могут выявляться следующие симбиотические микроорганизмы (нормальная микрофлора):

Streptococcus viridans group.;
Staphylococcus spp.;
Bacteroides spp.;
Corynebacterium spp. (кроме Corynebacterium diphtheria);
Veillonella spp.;
Neisseria spp. (кроме Neisseria meningitidis);
Candida spр.;
Lactobacillus spp.;
Fusobacterium spp.;
дифтероиды.

При оценке результатов анализов пациентов со сниженным иммунитетом следует учитывать, что при повышении показателей количества представителей нормальной микрофлоры могут развиваться заболевания (т. е. они становятся их возбудителями). Клинически значимыми в таких случаях являются следующие показатели:

10 6 – 10 7 КОЕ/мл в мокроте;
10 4 – 10 5 КОЕ/мл в бронхиальных смывах после бронхиального лаважа.

Наиболее часто встречающимися в мокроте патогенными микроорганизмами являются:

высокопатогенные: Haemophilus influensae, Streptococcus pneumonia, Staphylococcus aureus, Кlebsiella pneumonia;
среднепатогенные: энтеробактерии, Moraxella (Branhamella) cataralis, Cand >

При назначении этого анализа врач обязательно объясняет больному, для чего он необходим и как выполняется. Этот метод диагностики должен проводиться до назначения антибиотиков или спустя некоторое время после завершения их приема. Однако в некоторых случаях допускаются исключения. При туберкулезе мокрота сдается 3 дня подряд в утренние часы.

Если анализ проводится путем отхаркивания, то за день перед его сдачей больному (при отсутствии противопоказаний) следует пить много жидкости. Пациент должен понимать, что в контейнер для сбора материала должна собираться не слюна, а именно мокрота. Для получения продуктивного кашля его обучают следующей процедуре: после проглатывания слюны и трех глубоких вдохов выполняется энергичное покашливание. Утром в день исследования пациент должен почистить зубы и хорошо прополоскать ротовую полость для уменьшения ее обсемененности другими микроорганизмами.

При сборе мокроты методом аспирации врач обязательно предупреждает больного о том, что при введении катетера он может чувствовать незначительный дискомфорт. Если материал будет собираться во время бронхоскопии, то пациент не должен принимать пищу за 6 часов до процедуры. Кроме этого, врач уточняет у больного информацию о возможном присутствии аллергии на местные анестетики.

При заборе мокроты путем откашливания медицинская сестра надевает перчатки и просит больного проглотить слюну, выполнить 3 глубоких вдоха и энергично покашлять. При отсутствии мокроты проводят вдыхание теплого аэрозоля, облегчающего выведении отделяемого. Полученную мокроту пациент сплевывает в стерильный контейнер, который герметично закрывается, маркируется и помещается в дополнительный пластиковый пакет.

Если забор мокроты для анализа проводится путем аспирации, то при необходимости до и после процедуры выполняется ингаляция кислорода. Далее специалист надевает на руки перчатки, присоединяет ловушку для сбора мокроты к катетеру и погружает его в физиологический раствор. После этого катетер медленно вводят через ноздрю в трахею, и при его прохождении через гортань у больного возникает кашель. В этот момент при помощи шприца выполняется аспирация отделяемого, которая должна длиться не более 15 секунд. После этого катетер вынимается из дыхательных путей и выбрасывается. Отсоединенную от шприца ловушку герметично упаковывают, маркируют и отправляют в лабораторию.

Перед бронхоскопией глотку больного орошают и прополаскивают раствором местного анестетика. После начала действия препарата бронхоскоп вводят в просвет бронха и при помощи специальной щеточки собирают необходимый для анализа материал. Мокрота может получаться путем ее аспирации через внутренний канал прибора (иногда перед этим стенка бронха орошается физиологическим раствором). После завершения процедуры бронхоскоп извлекают из дыхательных путей. Полученный образец упаковывают в стерильный контейнер, маркируют и отправляют на исследование.

Материал для анализа должен отправляться в лабораторию сразу же после забора. В некоторых случаях разрешается хранение образцов мокроты на протяжении 2-3 часов в холодильнике при 4 °С.

Иногда допускается сдача мокроты на анализ уже после начала приема антибактериальных средств. При таких обстоятельствах на бланке направления обязательно должны указываться принимаемые больным препараты.

Исказить результаты анализа мокроты на микрофлору и чувствительность к антибиотикам могут следующие факторы:

неправильная техника сбора мокроты;
отсутствие указаний на бланке о проводимой антибактериальной терапии;
задержка при отправке образцов в лабораторию.

Посев мокроты выполняют в чашках Петри на питательные среды (агар, мясопептонный бульон, желатин), к которым иногда добавляют сыворотку, кровь или углеводы. Далее образцы инкубируют в благоприятных для роста микроорганизмов условиях при температуре 36-37 °С на протяжении 18-24 часов. Выделенную из колоний чистую культуру идентифицируют.

После получения колоний возбудителя заболевания приступают к анализу, определяющему его чувствительность к антибактериальным препаратам. Для этого обычно применяется методика дисков, которые смачиваются растворами разных антибиотиков и помещаются в колонию выделенных микроорганизмов. После этого выполняется изучение скорости гибели возбудителя заболевания под воздействием того или иного препарата. Результаты позволяют выбирать наиболее эффективный антибиотик для лечения заболевания.

Расшифровка результатов проводится лечащим врачом.

Анализ мокроты на микрофлору показан при длительном кашле. Поэтому его обычно назначает пульмонолог. Если диагноз еще не установлен, следует обратиться к терапевту для предварительного обследования. Также анализы мокроты используют в практической работе фтизиатры при подозрении на открытые формы туберкулеза.

источник

«Анализ мокроты на чувствительность к антибиотикам»

Анализ мокроты на чувствительность к антибиотикам позволит точно определить возбудителя болезни и подобрать эффективное лечение. Во время микроскопического исследования специалист определяет ДНК микроорганизмов в отделяемом, а также их концентрацию. Тест также включает проверку реакции бактерий на лекарственные препараты. По результатам анализа пациент получит рекомендации по лечению.

Анализ мокроты на чувствительность к антибиотикам требует специальной подготовки. Отделяемое сдают утром, натощак, методом отхаркивания. Перед этим необходимо тщательно почистить зубы и прополоскать рот. Для лучшего отделения слизи за день до теста рекомендуют пить больше жидкости. Исследование не проводят на фоне приема антибиотиков или противовоспалительных средств.

При сухом кашле для забора мокроты используют катетер или проводят биопсию. Манипуляции не входят в стоимость анализов на чувствительность к антибиотикам, оплачиваются отдельно.

Анализ мокроты на посев с определением чувствительности к антибиотикам

Анализ мокроты является одним из ключевых методов дифференциальной диагностики всевозможных бронхолегочных патологий: пневмоний, абсцесса, бронхоэктатической болезни и др. При этом такой метод лабораторного исследования, как посев мокроты, позволяет точноопределить качественный состав исследуемого биоматериала, выявить в нем патогенные микроорганизмы (или условно-патогенные микроорганизмы в высоком титре) и определить их чувствительность к конкретным группам антибиотиков и бактериофагов. Благодаря этому, данный анализ позволяет подобрать эффективное лечение даже в ситуации, когда наблюдается устойчивость патогенных микроорганизмов к многим антибактериальным препаратам.

Когда назначается анализ мокроты на посев с определением чувствительности к антибиотикам?

Проведение микробиологического исследования мокроты путем бактериологического посева с последующим определением чувствительности к антибиотикам выполняется:

при затяжных и тяжело протекающих заболеваниях дыхательных путей,
с целью установления возбудителя инфекционного заболевания,
для подбора рациональной антибактериальной терапии,
в случае неэффективности принимаемых антибиотиков.

Мокрота на посев собирается утром до первого приема пищи в специальный стерильный контейнер с плотно закрывающейся крышкой. Для того, чтобы в биоматериал не попали примеси слюны и слизи, перед сбором образца для исследования проводится тщательное очищение ротовой полости и носоглотки.

Анализу подлежит только свежая мокрота, выделенная в результате продолжительного откашливания.

Сбор мокроты на посев с определением чувствительности к антибиотикам проводят до начала лечения антибактериальными препаратами. В противном случае полученный результат может быть ложноотрицательным.

Исследование мокроты больного с целью определения антибактериальной чувствительности включает в себя:

микроскопию мазка мокроты и предварительную идентификацию типа возбудителя;
посев материала на питательную среду;
культивацию микрооганизмов в индивидуально подобранных условиях;
повторную микроскопию с подробной идентификацией выращенных колоний и определением основных свойств микроорганизмов;
определение чувствительности к антибиотикам.

С помощью различных методов определения чувствительности возможно не только выделение спектра антибактериальных препаратов, обладающих губительным воздействием на выявленные микроорганизмы, но и установление минимально приемлемой для положительного терапевтического эффекта концентрации веществ.

Это исследование показано при всех заболеваниях средних и нижних дыхательных путей инфекционного происхождения : острые и хронические бронхиты, плевриты, пневмонии . Обязательно проводится при осложнениях этих патологий, например, при абсцессе легкого.

Неоднократно анализ должен осуществляться при малейшем подозрении на туберкулез или проводиться как контрольное исследование при его терапии. В ряде случаев посев мокроты назначается при онкологических заболеваниях легких, для уточнения диагноза при возможных их сочетаниях с инфекционной патологией.

Необходимо учитывать, что дыхательные пути содержат нормальную микрофлору, некоторые виды которой при ослабленном иммунитете могут стать патогенными. Наиболее частыми возбудителями воспалительных заболеваний дыхательных путей являются золотистый стафилококк, гемофильная палочка, клебсиелла, стрептококк, энтеробактерии, а также микроскопические грибки. При туберкулезе выявляется палочка Коха.

Забор мокроты должен быть произведен до начала приема антибиотиков и осуществляется 3 способами: путем отхаркивания, аспирацией или с помощью бронхоскопии. Перед этим пациент должен почистить зубы и прополоскать рот. Полученный образец герметично упаковывают и отправляют в лабораторию, где в течение 2 часов он должен быть посеян в чашки Петри на питательную среду. Этот метод называют бактериологическим. При образовании колоний микроорганизмов производится их идентификация. Обнаружение поселений, созданных патогенными бактериями, является важным диагностическим критерием.
Следующий этап исследования-это определение чувствительности микробов к антибиотикам. Для этого чаще используется метод дисков: небольшие диски, пропитанные растворами различных антибактериальных препаратов, помещаются в колонии бактерий. Далее отслеживается скорость гибели колонии вокруг них. Чем быстрее это происходит, тем эффективнее антибиотик.

Бактериологический способ дает возможность не только определить тип возбудителя и его реакцию на антибиотики, но и подсчитать его количественно. Содержание 10/5 и более патогенных микроорганизмов на 1 мл мокроты считается этиологически значимым признаком.
Результат посева дает важнейшую информацию о причине заболевания, его тяжести и помогает выбрать правильный путь лечения.

Автор: Уразбахова Анар Жаксылыковна

источник

Весь контент iLive проверяется медицинскими экспертами, чтобы обеспечить максимально возможную точность и соответствие фактам.

У нас есть строгие правила по выбору источников информации и мы ссылаемся только на авторитетные сайты, академические исследовательские институты и, по возможности, доказанные медицинские исследования. Обратите внимание, что цифры в скобках ([1], [2] и т. д.) являются интерактивными ссылками на такие исследования.

Если вы считаете, что какой-либо из наших материалов является неточным, устаревшим или иным образом сомнительным, выберите его и нажмите Ctrl + Enter.

Сегодня все большую популярность приобретает анализ на чувствительность к антибиотикам. Микрофлора человека довольно разнообразна, представлена большим количеством микроорганизмов, в различных биотопах.

Фармацевтические компании разработали большое количество антибактериальных средств, антибиотиков, которые позволяют поддерживать нормальное соотношение и численность микробных популяций. С началом эры антибиотиков удалось вылечить многие заболевания, которые раньше считались смертельными. Но микроорганизмы также стремятся к выживанию, постепенно адаптируются к действию антибактериальных препаратов. Со временем многие из них обрели устойчивость по отношению ко многим лекарственным средствам, закрепили ее в генотипе и стали передавать из поколения к поколению. Таким образом, новые микроорганизмы, уже изначально не чувствительны к определенным препаратам, и их назначение может быть неэффективно. Фармацевты разрабатывают все новые и новые средства, добавляя в них новые активные компоненты, меняя основную формулу. Но постепенно к ним также вырабатывается устойчивость.

Причина повышенной устойчивости микрофлоры ко многим препаратам, и даже их аналогам зачастую кроется в неправильном и бесконтрольном приеме антибиотиков. Врачи назначают антибиотики и их комбинации при различных бактериальных заболеваниях. При этом не проводится предварительная оценка того, насколько эффективными они окажутся, не подбирается оптимальная дозировка, что очень важно как для лечения, так и для предотвращения механизмов развития дальнейшей устойчивости. Многие ошибочно назначают антибактериальную терапию даже при вирусных заболеваниях, что неэффективно, поскольку антибиотик не действует против вирусов.

Терапия зачастую назначается без предварительной проверки чувствительности, подбор действующего средства и требуемой его дозировки по отношению к каждому конкретному заболеванию и биотопу не производится. Поскольку антибиотики назначаются «в слепую», часто наблюдаются случаи, когда они не проявляют никакой активности по отношению к тем микроорганизмам, которые вызвали заболевание и численность которых нужно снизить. Вместо этого они оказывают воздействие на других представителей микрофлоры, в результате чего развивается дисбактериоз, который является также довольно опасной патологией и может привести к серьезным последствиям. Особенно опасны случаи, когда антибиотик уничтожает нормальную микрофлору, которая призвана защищать организм и поддерживать его нормальное функционирование. Также бывают случаи, когда назначается слишком большая или слишком маленькая дозировка препарата.

Пациенты также безответственно относятся к лечению. Зачастую лечение прекращают после того, как симптомы заболевания перестали беспокоить. При этом полный курс до конца многие предпочитают не заканчивать. Это является одним из факторов, которые способствуют развитию устойчивости у бактерий. Полный курс рассчитан на то, чтобы полностью патогенную микрофлору. Если курс не закончен, она убита не полностью. Те микроорганизмы, которые выжили, подвергаются мутациям, вырабатывают механизмы, которые обеспечивают им защиту от данного средства, и передают ее следующим поколениям. Опасность состоит в том, что устойчивость вырабатывается не только по отношению к данному конкретному препарату, но и ко всей группе препаратов.

Поэтому на сегодня одним из наиболее эффективных средств рациональной терапии и профилактики устойчивости, является предварительное определение чувствительности к назначаемому средству и подбор его оптимальной дозировки.

[1], [2], [3], [4], [5], [6], [7], [8], [9]

В норме такой анализ должен проводить во всех случаях, когда требуется антибактериальная терапия. Исходя из основных законов антибиотикотерапии, любой антибиотик может быть назначен только после того, как проведена предварительная оценка чувствительности микрофлоры к данному средству, в лабораторных условиях определена оптимальная концентрация действующего вещества. На практике, в силу различных причин и обстоятельств, такое исследование перед началом лечения не проводится, и врач вынужден подбирать лекарственное средство «наугад».

Сегодня проверка чувствительности проводится только в тех случаях, когда у врача возникают большие сомнения в отношении того, будет ли назначенное средство эффективно, в случаях длительного отсутствия эффекта от препарата, а также при повторном использовании одного и того же средства в ограниченный промежуток времени. Часто чувствительность определяют при лечении заболеваний, передающихся половым путем. Многие специалисты обращаются к анализу в случае возникновения побочных эффектов, аллергических реакций, и когда нужно заменить один препарат на другой.

Также часто к анализу обращаются для подбора лекарственных средств при антибактериальной терапии в восстановительный период после операций, лапароскопических вмешательств, удаления органов. В отдлениях хирургии, гнойной хирургии такое исследование просто необходимо, поскольку здесь достаточно быстро развивается устойчивость.кроме того, развиваются сверхустойчивые «внутрибольничные»Многие платные клиники подходят к назначению лекарственных препаратов со всей ответственностью – только после проверки чувствительности. Во многих случаях бюджет государственных учреждений просто не позволяет проводить подобные исследования для каждого пациента, которому требуется антибактериальная терапия.

[10], [11], [12], [13], [14], [15]

Подготовка к исследованию не требует никаких специальных мер. Она такая же, как и при проведении любых анализов. За несколько дней до исследования нужно воздержаться от приема алкоголя. Утром, в день забора материала, в большинстве случаев кушать и пить нельзя. Но все зависит от типа анализа. Материал для исследования может быть различным, в зависимости от заболевания.

При заболеваниях горла, дыхательных путей, берут мазок из горла, носа. В венерологии, гинекологии, урологии, берут на анализ мазки из половых органов, кровь. При заболеваниях почек, часто требуется моча. При заболеваниях ЖКТ, некоторых инфекционных заболеваниях, исследуют испражнения, рвотные массы. Иногда может исследоваться грудное молоко, выделения из носа, глазной секрет, слюна, мокрота. При тяжелых патологиях и подозрении на инфекционный процесс, исследуется даже спинномозговая жидкость. Спектр достаточно широк.

Особенности забора материала определяются его биологической принадлежностью. Так, моча, кал, собирается утром в чистую емкость или в специальный контейнер для биологического материала. Забор грудного молока осуществляют до кормления. На исследование берется средняя порция. Мазок забирается при помощи специального тампона, которым проводят по слизистым, затем опускают в пробирку с подготовленной средой. Кровь забирается в пробирку, из пальца или вены. При заборе мазки из уретры или влагалища, рекомендуется в течение нескольких дней воздержаться от половых контактов.

При заборе биологического материала на исследование необходимо в первую очередь обеспечить правильность забора и стерильность. Но это в большинстве случаев является заботой медицинского персонала, пациенту по этому поводу беспокоиться не стоит. Чаще всего к подобным исследованиям обращаются гинекологи и урологи, на втором месте – отоларингологи при лечении заболеваний носоглотки и глотки, верхних дыхательных путей.

[16], [17], [18], [19], [20]

Собранный биологический материал в стерильных условиях доставляется в лабораторию, где и проводятся дальнейшие исследования. В первую очередь производится его первичный посев на универсальные питательные среды. Также берется часть материала для микроскопического исследования. Готовится мазок для микроскопии, проводится исследование, с помощью которого можно определить примерную картину, предполагать какие микроорганизмы присутствуют в образце. Это дает возможность подобать наиболее оптимальные среды для дальнейшего исследования и идентификации микроорганизмов. Также на микроскопии могут быть заметны признаки, указывающие на воспаление, онкологический процесс.

В течение нескольких дней в чашке Петри вырастают колонии микроорганизмов. Затем берут несколько колоний, пересеивают их на селективные питательные среды, которые дают возможность определить примерную группу микроорганизмов. Инкубируют в течение нескольких суток в условиях термостата, затем приступают к идентификации (определению вида микроорганизмов). Идентификацию проводят при помощи специальных биохимических и генетических тестов, определителей. Дополнительно могут проводиться иммунологические следования.

После того, как основной возбудитель выделен, проводя т оценку его чувствительности к антибиотикам. Для этого существует несколько методов. Чаще всего пользуются методом серийных разведений, или диско-диффузионным методом. Методики подробно прописаны в микробиологических справочниках, методических указаниях и стандартах лабораторий.

Суть диско-диффузионного метода состоит в том, что производится засев микроорганизмов, которые были идентифицированы на питательную среду, сверху накладываются специальные диски, пропитанные антибиотиками. В течение нескольких суток посев инкубируют в термостате, затем измеряют результаты. Оценивают степень задержки роста бактерий каждым антибиотиком. Если бактерия чувствительна к антибиотику, вокруг диска образуется «зона лизиса», в котором бактерии не размножаются. Их рост замедленный, или вовсе отсутствует. По диаметру зоны задержки роста определяют степень чувствительности микроорганизма к антибиотику и формулируют дальнейшие рекомендации.

Метод серийных разведений является наиболее точным. Для этого микроорганизмы высеивают на жидкие питательные среды, добавляют антибиотик, разбавленный по системе десятичных разведений. После этого пробирки ставят на несколько суток в термостат для инкубирования. Чувствительность к антибиотикам определяют по степени роста бактерий в питательном бульоне с добавлением антибиотиком. Регистрируют минимальную концентрацию, при которой еще происходит рост микроорганизмов. Это и есть минимальная дозировка препарата (необходим пересчет из микробиологических единиц на действующее вещество).

Это стандартные микробиологические методики, лежащие в основе любого исследования. Они подразумевают ручное выполнение всех манипуляций. Сегодня многие лаборатории оснащены специальным оборудованием, которое выполняет все эти процедуры в автоматическом режиме. Специалисту, работающему с таким оборудованием, необходимо только умение работать с оборудованием, соблюдение правил безопасности и стерильности.

Необходимо учитывать, что показатели чувствительности в условиях лаборатории и в условиях живого организма резко отличаются. Поэтому человеку назначается большая дозировка, чем определилась в ходе исследования. Это связано с тем, что в организме нет столь оптимальных условий для роста бактерий. В лаборатории создаются «идеальные условия». Часть препарата может быть нейтрализовано действием слюны, желудочного сока. Часть нейтрализуется в крови антителами и антитоксинами, которые вырабатываются иммунной системой.

Для начала производят забор биологического материала. Для этого нужно собрать среднюю порцию утренней мочи и доставить ее в лабораторию. Важно соблюдать стерильность и за несколько дней до анализа не принимать антибиотиков, иначе можно получить ложноотрицательный результат. После этого производится стандартный посев, суть которого состоит в выделении чистой культуры возбудителя и подборе антибиотика, который будет оказывать на него оптимальное бактерицидное воздействие. Определяется необходимая концентрация антибиотика.

Анализ мочи чаще всего назначают при подозрении на инфекционно-воспалительный процесс в мочеполовой системе, при иммунодефицитах и нарушении обмена веществ. В норме моча является стерильной жидкостью. Продолжительность такого исследования составляет 1-10 суток и определяется скоростью роста микроорганизма.

Исследование подразумевает выделение микроорганизма, который является возбудителем в чистую культуру. Иногда таких микроорганизмов может быть несколько (микст-инфекция). Некоторые микроорганизмы способны формировать биопленки, которые являются своеобразными «микробными сообществами». Выживаемость биопленок намного выше, чем одиночных микроорганизмов, или ассоциаций. Кроме того, не все антибиотики способны оказывать воздействие на биопленку, и проникать внутрь нее.

Для определения возбудителя, его выделения в чистую культуру, производится посев. В ходе исследования производится несколько посевов, в различные питательные среды. Затем выделяется чистая культура, определяется е биологическая принадлежность, и определяется чувствительность к антибактериальным препаратам. Производится подбор оптимальной концентрации.

Для исследования может использоваться любой биологический материал, в зависимости от заболевания, локализации инфекционного процесса. Продолжительность определяется скоростью роста микроорганизмов.

[21], [22], [23], [24], [25], [26]

Кал исследуют при различных желудочных и кишечных заболеваниях, при подозрении на инфекционный процесс, бактериальной интоксикации, пищевых отравлениях. Целью исследования является выделение возбудителя и подбор к нему оптимальных антибактериальных препаратов, которые будут оказывать высокую активность. Важность этого типа исследования состоит в том, что можно подобрать препарат, который будет оказывать воздействие только на возбудителя заболевания, и не будет воздействовать на представителей нормальной микрофлоры.

Первым и весьма значимым этапом является сбор кала. Его нужно собрать в специальный стерильный контейнер, в утренние часы. Хранить следует не более 1-2 часов. Женщинам при наличии менструальных выделений, следует отложить анализ до окончания, поскольку точность результатов изменится. Материал доставляется на исследование в лабораторию. Анализ проводится с применением стандартной микробиологической техники посева и выделения чистой культуры. Дополнительно проводится антибиотикограмма. По заключению производится разработка рекомендаций, определяется дальнейшая схема исследования.

[27], [28], [29], [30]

Материалом для исследования служит кал, взятый непосредственно после акта дефекации. Нормальная микрофлора ЖКТ состоит из представителей нормальной флоры и нескольких представителей патогенной флоры. Их видовой состав, количество и соотношение строго обозначены и держатся в пределах допустимой нормы. Если такое соотношение нарушается, развивается дисбактериоз. Он может проявляться по-разному. Могут развиваться инфекционные заболевания, если резко увеличивается количество патогенной микрофлоры. Если количество какого-либо микроорганизма резко снижается, свободное место занимают другие представители, которые не свойственны ЖКТ, или же патогенные. Часто свободное место занимает грибок, тогда развиваются различные грибковые поражения, кандидозы.

Для того чтобы определить количественный и качественный состав микрофлоры кишечника, проводят анализ кала на дисбактериоз. Условно всех представителей, обитающих в кишечнике, разделяют на три группы: патогенные, условно-патогенные и непатогенные. Соответственно, анализ состоит из трех частей. Каждая группа микроорганизмов имеет свои потребности в источнике питания, энергии. Для каждой группы нужны отдельные питательные среды и селективные добавки.

Сначала проводят микроскопию и первичный посев. Затем после посева отбирают наиболее крупные колонии, по морфологическим признакам похожие на представителей каждой группы. Производят пересев на селективные среды. После того, как микроорганизмы выросли, производят их идентификацию и сразу же проводят тест на чувствительность к антибиотиком. Применяются стандартные микробиологические методы.

Исследование группы патогенных микроорганизмов, кроме стандартных исследований, подразумевает определение бактерий тифа, паратифа и дизентерии. Также определяется, является ли человек носителем этих микроорганизмов. Комплексное исследование на дисбактериоз включает также исследование представителей группы бифидобактерий и лактобактерий. Исследование занимает порядка недели и зависит от скорости роста микроорганизмов.

[31], [32], [33], [34], [35], [36], [37], [38], [39]

При кишечной инфекции для лечения часто применяют бактериофаги вместо антибиотиков. Бактериофаги представляют собой вирусы бактерий, которые восприимчивы только к ним. Они находят бактерию, с которой комплементарны, проникают в нее и постепенно разрушают бактериальную клетку. В результате инфекционный процесс прекращается. Но не все бактерии чувствительны к бактериофагам. Для того чтобы проверить, будет ли проявлять данный бактериофаг активность по отношению к представителям микрофлоры, нужно провести анализ.

Материалом исследования служит кал. Анализ следует доставить в лабораторию в течение часа, иначе его проведение будет невозможным. Необходимо проводить анализ в нескольких повторностях. Изначальная методика сходна с таковой при определении чувствительности к антибиотикам. Сначала проводится предварительная микроскопия образца, затем – первичный посев на универсальные питательные среды. Затем на селективных питательных средах производят выделение чистой культуры.

Основная работа ведется с чистой культурой. Их обрабатывают различными видами бактериофагов. Если колония растворяется (лизируется), это указывает на высокую активность бактериофага. Если же лизис происходит частичный – бактериофаг функционирует умеренно. При отсутствии лизиса можно говорить об устойчивости к бактериофагу.

Приеимущество фаговой терапии состоит в том, что бактериофаги не оказывают воздействие на организм человека, не вызывают побочного эффекта. Они прикрепляются к определенным видам бактерий и лизируют их. Недостатком является то, что они очень специфичны и оказывают избирательное действие, и не всегда могут прикрепиться к бактериям.

[40], [41], [42], [43], [44], [45], [46], [47], [48]

Анализ представляет собой исследование отделяемого нижних дыхательных путей. Целью является определение вида микроорганизмов, которые выступают в качестве возбудителя заболевания. Также проводится антибиотикограмма. При этом определяют чувствительность возбудителя к антибиотикам, подбирают оптимальную концентрацию. Применяется при заболеваниях дыхательных путей.

Исследование мокроты и другого содержимого легких и бронхов необходимо для выбора схемы терапии, для дифференциации различных диагнозов. Применяется для того, чтобы подтвердить или опровергнуть наличие туберкулеза.

Для начала необходимо получить биологический материал. Он может быть получен при кашле, путем отхаркивания, или путем забора из трахеи при бронхоскопии. Существуют специальные аэрозоли, которые способствуют отхаркиванию. Перед взятием мокроты рот следует прополоскать водой, что позволит снизить степень бактериальной контаминации ротовой полости. Сначала рекомендуется сделать 3 глубоких вдоха, произвести продуктивный кашель. Мокрота также может быть взята методом аспирации из трахеи. При этом в трахею вводится специальный катетер. При бронхоскопии вводится в полость бронхов бронхоскоп. При этом слизистая смазывается анестетиком.

Затем материал поставляют в лабораторию на исследование. Производят посев по стандартной схеме, микроскопия. Затем выделяют чистую культуру, и дальнейшие манипуляции проводят с ней. Ставится антибиотикограмма, которая дает возможность выявить спектр бактериальной чувствительности и подобрать оптимальную дозировку.

При подозрении на туберкулез исследуются утреннюю мокроту в течение трех дней. При исследовании на туберкулез результат будет готов через 3-4 недели. Поскольку микобактерии туберкулеза, которые являются возбудителем заболевания, растут очень медленно.

В норме должны быть обнаружены представители нормальной микрофлоры дыхательных путей. Также необходимо учитывать, что при сниженном иммунитете показатели нормальной микрофлоры могут отличаться.

Представляет собой бактериологическое исследование эякулята спермы с дальнейшим подбором чувствительных антибиотиков и их концентраций. Чаще всего проводится при лечении бесплодия, и других заболеваний мужской половой системы. В том случае, если заболевание сопровождается инфекционным процессом. Основной причиной мужского бесплодия является в большинстве случаев именно инфекция. Обычно изначально проводят спермограмму. По результатам устанавливают оплодотворяющую способность спермы. Если в этом анализе обнаружено большое количество лейкоцитов, можно говорить о воспалительном процессе. При этом обычно сразу же назначают микробиологический анализ, поскольку воспаление почти всегда сопровождается инфекцией. Уже на основании полученных результатов подбирают соответствующую терапию. Исследование обычно назначает андролог.

Также поводом для проведения анализа служит простатит, венерические заболевания. Назначают и в том случае, если у партнерши обнаружено венерическое заболевание.

В основе правильного анализа лежит, прежде всего, правильный забор биологического материала. Забирают материал в специальные сосуды с широким горлом. Температура хранения должна соответствовать температуре тела человека. В таком случае материал может храниться не более часа. В замороженном виде может храниться не более суток. Во время приема антибиотиков посев сдавать нецелесообразно, это меняет клиническую картину. Обычно посев сдают до того, как начат курс антибиотикотерапии. Либо прием лекарств прекратить за 2-3 дня до анализа.

Затем производят его посев на питательную среду. Инкубируют в термостате в течение 1-2 суток. После выделяют чистую культуру, затем проводят идентификацию, определяют чувствительность, а также тип и скорость роста каждой колонии. Чувствительность к антибиотикам определяется в случае выявления патогенных микроорганизмов. В среднем анализ делается 5-7 дней.

[49], [50], [51], [52], [53], [54], [55], [56], [57]

Существует множество тестов, при помощи которых можно определить иммунологическую чувствительность к различным веществам или патогенам. Раньше основным методом было проведение анализов, основанных на реакции агглютинации антител и антигенов. Сегодня эти анализы применяются все меньше, поскольку их чувствительность намного ниже, чем многие современные методики, например глютеновые тесты. Чаще всего в практике прибегают к слюнному тесту на глютен и анализу кала.

Тест на чувствительность к глютену применяется для диагностики различных расстройств кишечника. Основан на реакции иммунной системы. Если в кал добавить глютен, реакция происходит, либо отсутствует. Это расценивается как ложноположительный или ложноотрицательный результат. Положительный указывает на предрасположенность к колитам, высокую вероятность его развития. Также подтверждает целиакию.

Также можно проводить анализ на глютен с использованием слюны в качестве биологического материала. Можно измерять количество антител к глиадину. Положительный результат указывает на чувствительность к глютену. Это может указывать на высокую вероятность диабета. Если в обоих тестах результат положительный, можно подтвердить иабет или целиакию.

[58], [59], [60]

Анализ проводят при лечении инфекционных и воспалительных заболеваний урогенитального тракта, при подозрении на хламидиоз. Материалом для исследования служит соскоб из слизистой влагалища – у женщин, мазок из уретры – у мужчин. Забор производится в процедурном кабинете с использованием одноразового оборудования. Важно соблюдать стерильность. Перед забором материала следует воздержаться от интимной близости в течение 1-2 дней до начала исследования. Если у женщины менструация, забор материала производится спустя 3 дня после ее полного окончания.

Материал доставляют в лабораторию. Полный анализ включает предварительную микроскопию мазка. Это дает возможность визуально определить микрофлору по морфологическим признакам, правильно подобрать питательные среды. Содержание слизи, гноя, частичек эпителия, может прямо или косвенно указывать на развитие воспалительного процесса или злокачественное перерождение клеток.

Затем производят первичный посев. Культуру инкубируют в течение нескольких дней в условиях термостата, производят идентификацию по культуральным признакам. Затем производят пересев на селективные питательные среды, предназначенные для культивирования хламидий. Полученные колонии идентифицируют с использованием биохимических тестов. После определяют чувствительность к антибиотикам стандартными методами. Подбирают наиболее чувствительный антибиотик, его концентрацию. Для культивирования хламидий нужны специальные среды, разработанные именно для этого типа микроорганизмов, которые содержат все необходимые вещества и факторы роста.

Также можно проводить исследование биологическим методом. Для этого заражают возбудителем крыс. В некоторых лабораториях используется вместо крыс специально выращенная культура тканей. Это связано с тем, что хламидии являются внутриклеточными паразитами, и для их культивирования нужны специальные условия. Затем определяют микроорганизмы методом ПЦР. Для определения чувствительности производят пересадку на селективную питательную среду для хламидий, через несколько суток производят учет результатов. О резистентности или чувствительности судят по подавлению инфекционного процесса в клетках.

[61], [62], [63], [64], [65], [66], [67], [68], [69]

В среднем анализ делается в течение 5-7 дней. Некоторые анализы делаются и дольше. Например, при диагностике туберкулеза результатов приходится ждать от 3 недель до месяца. Все зависит от скорости роста микроорганизмов. Часто сотрудникам лаборатории приходится сталкиваться со случаями, когда, пациенты просят сделать анализ быстрее. И даже предлагают «доплату» за срочность. Однако здесь нужно понимать, что от действий лаборанта в данном случае ничего не зависит. А зависит только от того, насколько быстро растет микроорганизм. Каждый вид имеет свою, строго определенную скорость роста.

Показателей абсолютной универсальной нормы для всех анализов не существует. Во-первых, для каждого биотопа эти показатели могут отличаться. Во-вторых, они индивидуальны для каждого микроорганизма. То есть показатели нормы одного и того же микроорганизма, скажем, для горла и кишечника отличается. Так, если в горле преобладает стафилококк как представитель нормальной микрофлоры, то в кишечнике преобладает кишечная палочка, бифидо- и лактобактерии. Также могут существенно отличаться показатели для одного и того же микроорганизма в разных биотопах. Например, кандиды в норме могут содержаться в определенном количестве в урогенительной микрофлоре. В ротовой же полости в норме они не содержатся. Попадание кандид в ротовую полость может указывать на их искусственный занос их из естественной среды обитания.

Моча, кровь, спинномозговая жидкость – это биологические среды, которые в норме должны быть стерильными, то есть не должны содержать никакой микрофлоры. Попадание в эти жидкости микрофлоры указывает на сильный воспалительный, инфекционный процесс, а также указывает на риск развития бактериемии и сепсиса.

В целом, есть примерная классификация. Единицей измерения в микробиологии служит КОЭ/мл, то есть количество колониеобразующих единиц в 1 миллилитре биологической жидкости. Степень обсеменения определяется числом КОЭ и варьирует в широком диапазоне от 10 1 до 10 9 . Соответственно, 10 1 – минимальное количество микроорганизмов, 10 9 – тяжелая степень инфицирования. При этом показателями нормы считается диапазон до 10 3 , все показатели свыше этого числа указывают на патологическое размножение бактерий.

Что касается чувствительности к антибиотикам, все микроорганизмы подразделяют на устойчивые, умеренно чувствительные, чувствительные. Часто этот результат выражают в виде качественной характеристики с указанием МИГ – минимальной ингибирующей дозы антибиотика, которая еще угнетает рост микроорганизма. Для каждого человека, как и для каждого микроорганизма, эти показатели строго индивидуальны.

[70], [71], [72], [73], [74], [75], [76], [77]

При проведении бактериологических исследований, тем более с определением чувствительности к антибиотикам, одного аппарата будет недостаточно. Необходимо полное, комплексное оснащение бактериологической лаборатории. Необходимо тщательно спланировать и подобрать оборудование, которое будет соответствовать каждому этапу исследований. На этапе забора биологического материала необходимы стерильные инструменты, боксы, биксы, контейнеры, камеры для хранения и транспортировочное оборудование для доставки материала в лабораторию.

В лаборатории в первую очередь понадобится качественный микроскоп для микроскопии мазков. Сегодня существует большое количество микроскопов, которые обладают самыми различными свойствами – от традиционного светового до фазово-контрастного и атомно-силового микроскопа. Современное оборудование позволяет сканировать изображение в трехмерном пространстве и рассматривать на большом увеличении с высокой точностью.

На этапе посева и инкубации микроорганизмов могут потребоваться автоклавы, сухожаровые шкафы, эксикаторы, паровые бани, центрифуга. Обязательно необходим термостат, в котором происходит основная инкубация биологического материала.

На этапе идентификации микроорганизмов и проведения антибиотикограммы, могут потребоваться микроманипуляторы, масс-спектрометры, спектрофотометры, колориметры для различных подсчетов и оценки биохимических свойств культур.

Кроме этого, современные лаборатории могут быть оборудованы высокотехнологичной аппаратурой, которая выполняет все перечисленные основные этапы исследования, вплоть до подсчетов результатов в автоматическом режиме. К числу таких приборов относят, к примеру, комплексное устройство бактериологической лаборатории на базе времяпролетного масс-спектрометра. Эта линия приборов дает возможность разделить всю территорию лаборатории на три зоны. Первая зона – грязная, в которой производится прием анализов, регистрация. Вторая зона – рабочая, в которой собственно и производят основные микробиологические исследования. И третья зона – стерилизационная и автоклавная, где производится подготовка и утилизация рабочего материала.

Модели дают возможность производить инкубирование при широком диапазоне температур и условий. Содержится встроенный анализатор крови и других биологических образцов, который выдает результаты с высокой точностью и достоверностью. В комплектацию включены электронные весы, бидистилляторы, центрифуги, автоклавы и стерилизационные шкафы, автоматическая средоварка, водяная баня со встроенной мешалкой, рН-метры, термометры и микроскопы.

Также применяют микробиологический анализатор, в который закладываются исследуемые образцы, питательные среды, наборы тестов для определения чувствительности. Аппарат выполняет необходимые исследования и выдает готовое заключение.

Расшифровку анализа может сделать только врач. Но зачастую пациенты, получив результат на руки, впадают в панику, заметив большое количество непонятных обозначений и цифр. Для того чтобы не теряться, целесообразно иметь хотя бы общее представление о том, как расшифровать анализ на чувствительность к антибиотикам. Обычно в результатах первым пунктом указывают название микроорганизма, который является возбудителем заболевания. Название приводится на латинском языке. Также здесь может быть указан представитель нормальной микрофлоры, который преобладает в организме, поэтому паниковать не стоит. Вторым пунктом указывается степень обсеменения, то есть количество микроорганизма. Обычно это число колеблется в пределах от 10 1 до 10 9 . Третьим пунктом указывается форма патогенности, и четвертым – названия антибактериальных препаратов, к которым этот микроорганизм чувствителен. Рядом указывается минимальная ингибирующая концентрация, при которой происходит подавление роста микроорганизма.

[78], [79], [80], [81], [82], [83], [84]

источник