Меню Рубрики

Цитологическое исследование мокроты роль медсестры

Что такое цитологическое исследование мокроты?

Цитологическое исследование мокроты по-другому называется исследованием мокроты на атипичные клетки, то есть клетки злокачественных опухолей. Анализ предполагает окрашивание мазков мокроты и изучение их под микроскопом специалистом-цитологом. При злокачественном перерождении клетки изменяют своё строение, что можно рассмотреть в микроскоп. Раковые клетки выделяются с мокротой в 85 % случаев. Часто это помогает поставить верный диагноз.

В каких случаях назначают цитологическое исследование мокроты?

Анализ должен проводиться во всех случаях, когда имеется даже малейшее подозрение на рак лёгкого. Наиболее информативен анализ, проведенный пятикратно. Это значительно повышает вероятность выявления атипичных клеток. Цитологическое исследование мокроты применяют врачи-терапевты, пульмонологи, фтизиатры.

У пациентов, имеющих длительный стаж курения, занятых на вредных производствах, а также у тех, чьи ближайшие родственники страдали злокачественными новообразованиями лёгких, этот анализ может использоваться в качестве скрининга для раннего выявления патологии даже при отсутствии симптомов со стороны органов дыхания.

Подозрение на рак лёгкого у врачей возникает, если пациент жалуется на постоянный кашель. Он может быть малопродуктивным, навязчивым или с отделением мокроты. Мокрота в одних случаях светлая слизистая, в других – желтовато-зелёная с прожилками крови, бурая или даже чёрная. Частые пневмонии, достаточно легко поддающиеся лечению, но непрерывно возникающие вновь, также могут навести врача на мысль о раке лёгкого. Неспецифические симптомы (слабость, снижение переносимости физических нагрузок, похудание, плохой аппетит) присущи всем онкологическим заболеваниям.

Значительно реже исследование назначают для диагностики бронхиальной астмы, обнаружения сердечных пороков (по наличию сидерофагов в мокроте), микоза лёгкого, кровотечения из трахеи или бронхов, туберкулёза или хронической обструктивной лёгочной болезни.

Как правильно подготовиться к исследованию и собрать материал?

Мокроту собирают утром в специальный стерильный контейнер, который пациент получает на руки у медперсонала. Следует почистить зубы и тщательно прополоскать рот и горло кипячёной водой. После этого мокроту, полученную при откашливании, сплёвывают в контейнер. Важно понимать, что собрать нужно именно отделяемое бронхов и трахеи, а не слюну из ротовой полости.

Если мокроты образуется мало, врач может назначить обильное питьё в сочетании с отхаркивающими препаратами за несколько дней до исследования, чтобы увеличить продукцию трахеобронхиального секрета.

Преимущества и недостатки метода

Исследование является достаточно недорогим. При сборе материала пациент не подвергается болезненным или неприятным манипуляциям. Однако информативность цитологического исследования мокроты уступает цитологическому исследованию промывных вод бронхов, полученных при бронхоскопии. Кроме того, при бронхоскопии доступен визуальный осмотр измененной области с возможностью взятия небольшого фрагмента тканей для исследования.

Каковы нормальные результаты исследования, и как трактовать полученное заключение?

Нормальное заключение, написанное врачом-цитологом на бланке анализа, выглядит так: «Атипичных клеток не обнаружено». Наличие же таких клеток всегда свидетельствует в пользу рака лёгкого и требует дополнительного обследования для установления локализации процесса, его распространённости и определения лечебной тактики.

Следует понимать, что отсутствие атипичных клеток даже в пятикратных исследованиях не позволяет на 100 % исключить рак лёгкого.

Информация размещена на сайте только для ознакомления. Обязательно необходима консультация со специалистом.
Если вы нашли ошибку в тексте, некорректный отзыв или неправильную информацию в описании, то просим вас сообщать об этом администратору сайта.

Отзывы размещенные на данном сайте являются личным мнением лиц их написавших. Не занимайтесь самолечением!

источник

Слизистый характер бронхиального секрета обусловлен сочетанным функционированием желез подслизистой оболочки бронхов и бокаловидных клеток эпителия. В ответ на инвазию инфекционными агентами эпителий бронхов выделяет цитоки- ны IL-8, IL-6, колониеобразующие факторы гранулоцитов, моноцитов, и др. Так, тучные клетки выделяют хемотаксические факторы «быстрого реагирования»: эозинофильный хемотаксический фактор анафилаксии; хемотаксический фактор нейтрофилов высокой молекулярной массы; хемотаксические факторы, направленные на лимфоциты, базофилы, моноциты; фактор, активирующий тромбоциты (ФАТ). Усиливается синтез и выделение простогландинов, простациклинов, Т-хелперов. Также увеличивается содержание альвеолярных макрофагов. Они осуществляют фагоцитоз, переработку антигена и «передачу» информации лимфоцитам, предотвращают развитие аллергических реакций. Иммунная защита, секреторная активность являются индукторами микроваскулярного просачивания и секреции слизи.

Цитологическое исследование мокроты позволяет выявить болезнетворные микроорганизмы (в том числе микобакте- рию туберкулеза), клетки злокачественных опухолей, примеси (кровь, гной и т.п.), характерные для определенных болезней, а также определить чувствительность бактериальной флоры к антибиотикам.

Возможно обнаружение в мокроте следующих клеток: эпителиальные клетки, или клетки цилиндрического мерцательного эпителия (при бронхитах, бронхиальной астме или злокачественных новообразованиях легких); бокаловидные клетки (при усиленной секреции); базальные или промежуточные клетки; альвеолярные макрофаги из нижних респираторных отделов. Плоский эпителий попадает в мокроту из полости рта и не имеет диагностического значения. Наличие в мокроте более 25 клеток плоского эпителия указывает на то, что данный образец мокроты загрязнен отделяемым из ротовой полости. Альвеолярные макрофаги локализуется в основном в межальвеолярных перегородках. Поэтому анализ мокроты, где присутствует хотя бы 1 макрофаг, указывает на то, что поражены нижние отделы дыхательной системы. При инфаркте легкого, застое в малом кругу кровообращения обнаруживаются «клетки сердечных пороков», т.е. альвеолярные макрофаги с включениями гемосидерина [2].

Встречаются также и макрофаги с липид- ными включениями (липофаги) при туберкулезе, хроническом заболевании легких. Отмечают повышение в мазке мокроты количества нейтрофилов, лимфоцитов, эозинофилов, моноцитов, «гигантских» клеток Пирогова-Лангерганса. Обнаружение более 25 нейтрофилов в поле зрения свидетельствует об инфекции (пневмония, бронхит). Единичные эозинофилы могут встречаться в любой мокроте; в большом количестве (до 50-90% всех лейкоцитов). Они обнаруживаются при бронхиальной астме, эози- нофильных инфильтратах, глистных инвазиях легких и т.п. Эритроциты появляются в мокроте при разрушении ткани легкого, пневмонии, застое в малом круге кровообращения, инфаркте легкого и т.д. Мокрота может содержать клетки злокачественных опухолей, особенно если опухоль растет эндобронхиально или распадается. Определять клетки как опухолевые можно только в случае нахождения комплекса атипичных полиморфных клеток, особенно если они располагаются вместе с эластическими волокнами.

В мазке мокроты могут встречаться волокнистые образования: эластические волокна, фибриновые волокна и спирали Куршмана (при туберкулезе, абсцессе легкого,раке). Эластические волокна имеют вид тонких двухконтурных волоконец одинаковой на всем протяжении толщины, дихотомически ветвящихся. Эластичные волокна исходят из легочной паренхимы. Выявление в мокроте эластичных волокон свидетельствует о разрушении легочной паренхимы (туберкулез, рак, абсцесс). Иногда их присутствие в мокроте используют для подтверждения диагноза абсцедирую- щей пневмонии.

Кристаллические образования также встречаются в мазке мокроты. Это кристаллы Шарко-Лейдена — бесцветные октаэдры различной величины, напоминающие по форме стрелку компаса, состоящие из белка, освобождающегося при распаде эозинофилов(при бронхиальной астме, эмфиземе, глистных инвазиях); кристаллы гематоидина — ромбы, иголки, звезды от желтого до оранжевого цвета (при некрозе ткани, кровоизлияниях при инфаркте легкого кристаллы холестерина (при распаде ткани — туберкулез, абсцесс легкого, рак); друзы актиномицетов [3]. Мокрота в норме не содержит паразитов и яйца гельминтов. Выявление паразитов позволяет установить природу легочной инвазии, а также диагностировать кишечную инвазию и ее стадию [2].

  1. Комплексные лабораторные исследования при профессиональных заболеваниях органов дыхания / Л.А.Иванова, М.Н.Горизонтова, Ю.В. Стаценко и др. // Пульмонология. — 2008. — №4. — С.26- 28.
  2. Никитин А.В., Непосредственное исследование больного с основами синдром- ной диагностики / А.В. Никитин, В.А. Гусманов // Учеб. пособие — Воронеж: Издательство Воронежского университета. — 1995. — C. 208.
  3. Гончарова В.А.Биохимические аспекты тучной клетки / В.А.Гончарова // Проблемы пульмонологии. — 1985. — № 9. — С. 8-87.

источник

Исследование мокроты (цитология) – микроскопический анализ мокроты для обнаружения раковых клеток у больных с подозрением на рак легкого. Основные показания к применению: клинические признаки новообразований легкого, дифференциальная диагностика заболеваний легких.

В свежесобранной мокроте при цитологическом исследовании у пациентов с онкологическими заболеваниями легких в ряде случаев можно обнаружить опухолевые клетки. Опухолевые клеткиобнаруживаются у 85% пациентов с центральным раком легкого. Отсутствие атипичных клеток в мокроте при подозрении на опухолевый рост не является критерием отсутствия рака. В этих случаях необходимо применение других методов исследования: бронхоскопия и гистологическое исследование, проведение инструментальных методов обследования.

Накануне пациенту выдается пластиковая емкость на 100 мл (или приобретается самостоятельно).Мокрота собирается с утра до приема пищи.Рот прополоскать, что бы избежать попадания содержимого рта.Необходимо собирать мокроту, которая отделяется при кашле.После сбора крышка плотно завинчивается и передается медицинской сестре для отправки в лабораторию в день забора материала.До передачи в лабораторию хранить в прохладном месте не более 10-11 часов.======================================

Цель: определить физико-химические свойства и клеточный состав мокроты. Показания: заболевания органов дыхания и сердечно-сосудистой системы.

Приготовьте: — чистую сухую широкогорлую банку из прозрачного стекла 50-100 мл; — напишите и наклейте на наружную стенку банки направление (отделение, № палаты, ФИО пациента, возраст, цель исследования, дата); — кипяченую воду Т 0 — 37°С в количестве 0,5 — 0,7л.

Алгоритм действия: 1. Проведите инструктаж с пациентом о правилах сбора мокроты на исследование и получите его согласие. 2. Мокрота собирается рано утром (натощак) до приема пищи. 3. Попросите пациента: — почистить зубы утром за 2 часа до сбора мокроты; — прополоскать полость рта и глотки кипяченой водой непосредственно перед сбором мокроты; — встать или сесть прямо; — держать банку для сбора мокроты у нижней губы, не касаясь ее: — сделать несколько глубоких вдохов и выдохов, а затем покашлять; — собрать ее в банку в количестве не менее 3-5 мл; — закрыть банку с мокротой крышкой. 4. Осмотрите собранную мокроту и отправьте ее в лабораторию в течение 2 часов после ее сбора.

— если собранная мокрота составляет менее 3-5 мл, то процедуру сбора мокроты необходимо повторить: — пациентам надо указать на то, что исследованию подлежит только мокрота, отделяющаяся при кашле, а не при отхаркивании.

Цель: обнаружение опухолевых клеток в мокроте.

Показания: заболевания органов дыхания, подозрение на онкозаболевания.

Приготовьте: — чистую сухую широкогорлую банку из прозрачного стекла 50-200 мл. — напишите и наклейте на наружную стенку банки направление (отделение, № палаты, ФИО пациента возраст, цель исследования, дата).

Алгоритм действия: 1. Дайте пациенту информацию о правилах сбора мокроты на исследование и получите его согласие. 2. Мокрота собирается рано утром (натощак) до приема пищи, 3. Попросите пациента: — почистить зубы утром за 2 часа до сбора мокроты: — прополоскать полость рта и глотки кипяченой водой непосредственно перед сбором мокроты. — встать или сесть прямо. — держать банку для сбора мокроты нижней губы. — сделать несколько глубоких вдохов и выдохов, а затем покашлять. 4. Соберите отошедшую свежевыделенную мокроту в количестве 3 – 5 мл. в банку, закройте ее крышкой. 5. Осмотрите собранную мокроту и достаньте ее в лабораторию не позднее 1 часа после сбора материала, так как атипичные клетки быстро разрушаются.

1.104. Стандарт «Сбор мокроты для бактериоскопического исследования на туберкулез, в условиях стационара».

Цель: обнаружение микобактерий туберкулеза, научить пациента самостоятельно собрать мокроту. Показание: заболевания органов дыхания Приготовьте: — при плевательницы многоразовые или одноразовые или контейнеры с герметично завинчивающимися крышками; — чистую сухую широкогорлую банку из прозрачного стекла 50 – 200 мл с крышкой; — напишите и наклейте направление (ФИО пациента, год рождения, дата забора идентификационный номер пациента, направление ф. ТБ – 0,5) Алгоритм действия: 1. Проведите инструктаж с пациентом о правилах сбора мокроты на исследование

2. Проводите забор мокроты в отсутствие посторонних лиц на открытом воздухе, либо а специально отведенной для этих целей отдельной комнате, хорошо проветриваемой, с открывающимися окнами, с наличием вытяжной вентиляции и кварцевой лампы. 3. Наденьте маску, клеенчатый фартук, резиновые перчатки. 4. Собирайте мокроту рано утром до приема пищи 3 дня подряд. Выдайте пациент открытую плевательницу или контейнер. 5. Попросите пациента почистить зубы и прополоскать полость рта и зев водой или раствором соды. 6. Встаньте за спиной пациента и попросите его поднести ко рту плевательницу или контейнер.

7. Попросите пациента накрыть рот платком или тканью и сделать 3 глубоких вдоха и выдоха и в конце сильно откашлянуться и сплюнуть мокроту в количестве 3-5 мл в плевательницу или контейнер, не касаясь ее краев. 8. Закройте плевательницу (контейнер) крышкой. 9. Осмотрите мокроту убедитесь, что мокрота содержит плотные гнойные частицы, а не слюну. 10. Отправьте собранную утреннюю пробу мокроты в лабораторию в течение суток. 11. Оформите бланк направление Ф. ТБ-05.

Примечание: при сборе мокроты для бактериоскопического исследования в условиях поликлиники, амбулатории. ФАПа мокроту собирают согласно выше описанных правил. Особенностью сбора мокроты вне стационара является сбор мокроты в два приема. Первая проба мокроты собирается при обращении пациента в поликлинику утром под наблюдением медработника. Вторая проба – утром следующего дня дома и доставляется в лабораторию. Третья проба собирается пациентом в этот же день в поликлинике под

наблюдением медработника (т.е. 2-3 пробы собираются в один день).

— сбор мокроты проводится обязательно под контролем медработника. — многоразовые плевательницы и контейнеры подлежат дезинфекции и стерилизации. — одноразовые плевательницы после использования подлежат уничтожению

Этот сайт использует Akismet для борьбы со спамом. Узнайте как обрабатываются ваши данные комментариев.

источник

— заболевания органов дыхания и ССС.

— чистая стеклянная широкогорлая банка из прозрачного стекла, направление.

Последовательность действий:

1. Объяснить правила сбора, получить согласие.

2. Утром почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой.

3. Откашлять и собрать в банку 3-5 мл мокроты, закрыть крышкой.

5. Доставить в клиническую лабораторию в течение 2 часов.

— Для определения суточного количества мокроту собирают в течение суток в одну большую посуду и хранят в прохладном месте.

— Мокроту рекомендуется собирать в специально оборудованном помещении у открытого окна или форточки.

— Не допускается загрязнение банки с наружной стороны.

Читайте также:  Лекарство от мокроты в носоглотке у взрослого

Оценивается: консистенция (вязкая, студенистая, стекловидная), цвет (прозрачная, гнойная, серая, кровянистая), клеточный состав (наличие лейкоцитов, эритроцитов, эпителия, дополнительных включений.

— выявления возбудителя заболевания и определение чувствительности его к антибиотикам.

— стерильная пробирка или банка с крышкой (заказывается в бак. лаборатории), направление.

Последовательность действий:

1. Объяснить цель и суть сбора мокроты, получить согласие.

2. Утром натощак после туалета полости рта и до назначения а/б.

3. Пробирку или банку поднести ко рту, открыть ее, не касаясь краев посуды руками и ртом откашлять мокроту и сразу закрыть крышкой, соблюдая стерильность.

4. Отправить анализ в баклабораторию в течение 2 часов в контейнере спецтранспортом. Примечание: стерильность посуды сохраняется в течение 3 суток.

Сбор мокроты на МБТ (микобактерии туберкулеза):

Порядок сбора мокроты:

1. Объяснить суть и цель назначения, получить согласие.

3. Утром натощак после туалета полости рта после нескольких глубоких вдохов откашлять мокроту в чистую сухую банку (15-20 мл), закрыть крышкой. Если мокроты мало, то ее можно собирать в течение 1-3 суток, сохраняя в прохладном месте.

4. Доставить анализ в клиническую лабораторию.

Примечание: Если назначается посев мокроты на ВК, то мокрота собирается в стерильную посуду в течение 1 суток, храня в прохладном месте, и доставляется в баклабораторию.

Сбор мокроты на атипичные клетки:

— диагностическая (диагностика, исключение онкопатологии).

Последовательность сбора:

1. Объяснить пациенту правила сбора мокроты.

2. Утром после туалета полости рта собрать мокроту в чистую сухую банку.

4. Доставить в цитологическую лабораторию сразу, т.к. атипичные клетки быстро разрушаются.

Правила пользования карманной плевательницей:

Плевательницей пользуются пациенты, выделяющие мокроту.

Запрещается:

— сплевывать мокроту на улице, в помещении, в платок, полотенце;

Плевательница дезинфицируются по мере заполнения, но не реже 1 раза в сутки. При большом количестве мокроты – после каждого использования.

Для обеззараживания мокроты: залить 10% хлорной известью в соотношении 1:1 на 60 мин или засыпать сухой хлорной известью из расчета 200 г/л мокроты на 60 мин.

При выделении или подозрении на ВК — 10% хлорная известь на 240 мин или сухая хлорная известь на 240 мин в тех же соотношениях; 5% хлорамином на 240 мин.

После обеззараживания мокроту сливают в канализацию, а посуду, в которой обеззараживалась мокрота, моют обычным способом с последующей дезинфекцией.

Обеззараживание карманных плевательниц: кипячение в 2% растворе соды 15 мин или в 3% хлорамин на 60 мин.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: Увлечёшься девушкой-вырастут хвосты, займёшься учебой-вырастут рога 9704 — | 7628 — или читать все.

193.124.117.139 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.

Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)

очень нужно

источник

Мокрота является секретом, выделяющимся при воспалении трахеи, бронхов и легких. Ее появление отмечается не только при поражении дыхательных органов, но и при нарушениях сердца и сосудов. Методы исследования мокроты подразумевают макроскопическое, химическое и микроскопическое определение ее характеристик.

Исследование мокроты дает возможность обнаружить микроорганизмы, вызывающие патологический процесс, обозначить наличие микобактерии при туберкулезе, выявить раковые клетки, кровяные и гнойные примеси, а также определить резистентность бактерий к антибиотикам.

Исследование мокроты на общий анализ проводится при следующих состояниях:

  • кашель;
  • воспаление легких;
  • воспаление бронхов;
  • нагноение легкого;
  • туберкулез;
  • бронхоэктатическая болезнь;
  • легочная гангрена;
  • опухоль в легких;
  • бронхит в острой форме;
  • бронхит в хронической форме;
  • тонзиллит в хронической форме;
  • туберкулез;
  • коклюш;
  • силикоз;
  • острая форма обструктивного бронхита;
  • воспаление легких;
  • сибирская язва.

Слизь будет лучше выделяться, если накануне перед сдачей анализа принять средство для отхаркивания или же употребить большое количество теплого питья. Перед сбором рекомендуется почистить зубы и ротовую полость, прополоскав ее теплой вскипяченной водой.

Сбор мокроты на бактериологическое исследование желательно производить в утренние часы (она скапливается за ночь до приема пищи) в стерильный контейнер, который выдается лабораторией. Для анализа достаточно количества 5 мл. Анализ секрета производится не позднее, чем через 2 часа после его сбора. До момента отправки на исследование контейнер с содержимым должен храниться закрытым в холодильнике.

Количество выделяемого секрета разнится в зависимости от характера патологического процесса. Обычно оно варьируется от нескольких плевков до 1 л за сутки. Малое количество выделяется при воспалении бронхов, застойных процессах легких и при начале приступа бронхиальной астмы. В конце приступа объем возрастает. Он может составлять до 0,5 л, а также выделяться в большом количестве, если имеется отек легких.

Много слизи выделяется при гнойном процессе в легких при сообщении с бронхами, при нагноении, бронхоэктазе и гангрене.

Исследование мокроты на туберкулез показывает распад тканей легких. В особенности такой процесс провоцирует каверна, которая сообщается с бронхами.

Увеличение количества выделяемого секрета может быть сопряжено с ухудшением состояния пациента и наблюдаться в период обострения. Увеличение может относиться и к положительной динамике развития болезни.

Уменьшение количества выделяемой слизи может свидетельствовать о регрессе воспаления или же нарушении в области дренирования полости, наполненной гноем. При этом отмечается ухудшение самочувствия больного.

Слизистый секрет выделяется при бронхитах в острой или хронической форме, бронхиальной астме, пневмонии, онкологической опухоли легкого, бронхоэктатической болезни, эхинококкозе легкого, сопровождающемся нагноением, актиномикозе.

Мокрота с примесью гноя наблюдается при абсцессе легкого, эхинококкозе и бронхоэктатической болезни.

Слизь с примесью крови или же состоящая полностью из крови присуща туберкулезу. Появление крови может свидетельствовать о наличии онкологии, бронхоэктатической болезни, нагноении легкого. Также такое явление наблюдается при синдроме средней доли, инфаркте в легком, травме, актиномикозе и сифилитическом поражении. Кровь может выделяться и при крупозном и очаговом воспалении легких, застойных процессах, сердечной астме и отечности легких.

Серозная мокрота отмечается при отечности легких.

Исследование мокроты выявляет ее различную окрашенность. Слизистые и серозные выделения не обладают цветом или же имеют беловатый оттенок.

Присоединение гноя придает секрету зеленоватый оттенок, что характеризует такие патологические процессы, как абсцесс легкого, гангрена, бронхоэктатическая болезнь, актиномикоз легкого.

Выделения с оттенком ржавчины или коричневого цвета указывают на то, что в них содержится не свежая кровь, а продукт ее распада — гематин. Такой секрет может выделяться при крупозном воспалении легких, сибирской язве, инфаркте легкого.

Зеленоватый цвет с примесью грязи или же желтый секрет свидетельствует о патологии органов дыхания в сочетании с желтухой.

В ярко-желтый цвет мокрота окрашивается при эозинофильной пневмонии.

Слизь цвета охры встречается при сидерозе легкого.

Черноватый или сероватый секрет отмечается при наличии примеси пыли от угля. При отеке легких серозная мокрота наблюдается в большом количестве. Как правило, она окрашена равномерно в розоватый цвет, что объясняется наличием эритроцитов. Такие выделения похожи на жидкий клюквенный морс.

Окрашиваться секрет может и от некоторых лекарственных препаратов. К примеру, антибиотик «Рифампицин» может придать ему красный цвет.

О характере патологического процесса в органах дыхания может свидетельствовать и запах секрета. Мокрота отдает запахом гнили при гангрене легкого или гнилостном поражении бронхов, онкологических новообразованиях, осложнившемся некрозе бронхоэктатической болезни.

Зачастую исследование выделений выявляет наличие слоев. При застойном характере мокрота с примесью гноя наблюдается при нагноении легкого и бронхоэктатической болезни.

Секрет с примесью гнили содержит в себе три слоя. Верхний слой похож на пену, средний серозный, а нижний с примесью гноя. Такой состав характеризует гангрену легкого.

Примесь пищи может отмечаться при наличии злокачественной опухоли в пищеводе при сообщении его с бронхами и трахеей. При попадании эхинококка в бронхи в мокроте могут быть обнаружены крючья или сколекс паразита. Очень редко обнаруживаются взрослые особи аскарид, которые проникают в органы дыхания у ослабленных людей.

Яйца легочной двуустки появляются при разрыве кисты, которая образуется в легких при наличии паразитов.

Гангрена и нагноение легких вызывают появление кусочков некрозов легких. При опухоли в выделениях могут присутствовать их фрагменты.

Свертки, содержащие фибрин, встречаются у пациентов с фибринозным бронхитом, туберкулезом и пневмонией.

Рисовые тельца, или линзы Коха, присущи туберкулезу.

Пробки Дитриха, включающие в себя продукты распада бактерий и ткани легких клеток жирных кислот, встречаются при гнилостном бронхите или же гангрене легкого.

Хроническая форма тонзиллита предполагает выделение из миндалин пробок, схожих с пробками Дитриха.

Исследование мокроты химическим способом предполагает определение:

  • Показателя белка, который может помочь в дифференциальной диагностике хронической формы бронхита и туберкулеза. При бронхите хронической формы в секрете отмечаются следы белка, а при туберкулезном поражении количество белка в мокроте будет намного выше, и оно может быть обозначено цифрами (до 100—120 г/л).
  • Пигментов желчи. Они обнаруживаются в мокроте при поражении органов дыхания в сочетании с гепатитом. В этом случае печень сообщается с легкими. Желчные пигменты присущи пневмонии, что обусловлено распадом внутри легких эритроцитов и последующим изменением гемоглобина.

Для дифференциальной диагностики туберкулеза и многих других поражений легких широко применяется цитологический способ, который включает два этапа: клиническое и микроскопическое исследование мокроты.

Клиническое исследование помогает определить, каким методом должен быть собран материал для получения правильного результата анализа.

Существует два основных вида материала, которых требует микроскопическое исследование мокроты: спонтанный и редуцированный. Второй вид секрета получают воздействием разнообразных раздражителей (средства для отхаркивания, ингаляции и т. д.).

Цитологическое исследование мокроты предполагает изучение макроскопического и микроскопического анализа ее клеток.

Больше всего информации для цитологического анализа несет мокрота, взятая утром на голодный желудок. До исследования она должна храниться не больше 4 часов.

  • В мокроте встречаются клетки плоского эпителия, которые исследуются микроскопически. Но для постановки диагноза они не имеют никакого значения. Клетки цилиндрического эпителия — как единичные, так и в группе — могут отмечаться при таких заболеваниях, как бронхиальная астма, бронхит и рак легких. Следует отметить, что цилиндрический эпителий может появиться и по причине проникновения слизи из носоглотки.
  • Альвеолярные макрофаги представляют собой клетки ретикулоэндотелия. Макрофаги, которые содержатся в протоплазме (фагоцитирующие частицы или пылевые клетки), можно встретить у пациентов, которые длительное время вдыхали пыль.
  • Макрофаги протоплазмы (образуются при распаде гемоглобина) называют клетками сердечного порока. Они могут встречаться во время застойных процессов в легких, стенозе митрального клапана, инфаркте легких.
  • Небольшое количество лейкоцитов содержится в любой мокроте. Их повышенное содержание отмечается в секрете с примесью гноя.
  • Эозинофилы. Такими клетками богата мокрота у астматиков. Клетки могут отмечаться при эозинофильной форме воспаления легких, поражении организма гельминтами, туберкулезе и инфаркте легкого.
  • Эритроциты. Единичные эритроциты не отображают картины заболевания. Появление повышенного количества свидетельствует о наличии кровотечения в легких. В свежей крови определяются неизменные эритроциты. Если же есть примесь крови, которая застоялась в легких в течение долгого времени, то обнаруживаются выщелоченные эритроциты.
  • Раковые клетки. Их можно обнаружить в секрете группами. Они свидетельствуют о наличии опухоли. При нахождении единичных клеток часто возникает трудность при диагностике. В таких случаях проводится повторный анализ мокроты.
  • Эластические волокна, появление которых вызвано распадом легочной ткани, спровоцированным туберкулезом, абсцессом, гангреной, опухолью. Гангрену такие клетки характеризуют не всегда, так как из-за действия ферментов, находящихся в секрете, они могут быть растворены.
  • Спирали Куршмана. Это особые тела, похожие на трубки. Они обнаруживаются при исследовании под микроскопом. Иногда заметны и глазом. Обычно спирали присущи таким заболеваниям, как бронхиальная астма, туберкулез легких и пневмония.
  • Кристаллы Шарко-Лейдена обнаруживаются в мокроте с повышенным содержанием эозинофилов при таких поражениях, как бронхиальная астма, эозинофильная пневмония. Вскрытие очага туберкулеза в просвете бронхов может характеризоваться наличием в секрете эластических волокон-кристаллов ХС, МБТ и аморфной извести (так называемая тетрада Эрлиха) — 100%.

Сбор мокроты для исследования бактериоскопическим методом подразумевает анализ секрета на предмет обнаружения в нем микобактерий, характерных для туберкулеза. Они похожи на тонкие, утолщенные по бокам или же посередине кривые палочки разной длины, которые располагаются как поодиночке, так и группами.

Обнаружение микобактерии туберкулеза не является доминантным признаком для диагностики и требует подтверждения бактериологическим способом. Туберкулезные микобактерии при норме в секрете не обнаруживаются.

Основой для анализа служат гнойные частицы, которые берутся из сорока шести различных областей и тщательно растираются до однородной массы двумя стеклами. Далее они сушатся на воздухе и фиксируются пламенем горелки.

Бактериологическое исследование мокроты методом Циля-Нильсена предполагает ее окрашивание в красный цвет. При этом все частицы секрета, за исключением микобактерии, приобретают синий оттенок, а микобактерии приобретают красный цвет.

При подозрении на поражение организма туберкулезом после трехкратного исследования на наличие микобактерий с отрицательным ответом прибегают к применению метода флотации (анализ Поттенджера).

Обычный способ исследования окрашенного мазка на МТБ дает положительный результат только при количестве МТБ не менее 50 000 единиц в 1 мл мокроты. По числу микобактерий судить о наличии туберкулеза нельзя.

Лабораторные исследования мокроты при наличии неспецифических заболеваний легких при бактериоскопии могут выявить следующие бактерии:

  • При воспалении легких — пневмококки, диплококки Френкеля, бактерии Фридлендера, стрептококки, стафилококки (100%).
  • При гангрене легких можно обнаружить веретенообразную палочку в сочетании со спирохетой Венсана (80%).
  • Дрожжеподобные грибы (70%), для выяснения вида которых требуется посев секрета.
  • Друзы актиномицета (100%) при актиномикозе.

Объем слизи, выделяемой трахеей и бронхами у человека, не страдающего никакими патологиями, колеблется от 10 до 100 мл/сут.

В норме уровень лейкоцитов невысок, а исследование окрашенного мазка на микобактерии дает отрицательный результат.

источник

Исследование мокроты и мочи на атипичные клетки

Показанием к цитологическому исследованию служит необходимость установить (уточнить) природу неопухолевого заболевания или верифицировать процесс при наличии очаговых изменений в легких, выявленных лучевым методом диагностики.

Читайте также:  Кашель с мокротой эффективное средство от кашля

Материалом для цитологического исследования может служить: материал бронхоскопии (пунктат опухоли, отпечаток с биоптата, соскоб щеткой, бронхиолоальвеолярный лаваж (БАЛ), чресбронхиальная пункция (под визуальным контролем или под контролем УЗИ). При подозрении на опухолевый процесс и неудачах морфологического исследования этого материала выполняют трансторакальную пункцию. Кроме того, можно исследовать цитологическим методом материал, полученный при медиастиноскопии, торакоскопии, во время операции. При необходимости установить степень распространения опухолевого процесса исследуют материал из внелегочных очагов (лимфатические узлы, выпотная жидкость). Самым простым методом является цитологическое исследование мокроты. Преимущества этого метода – дешевый, легко повторяемый, недостатки – низкая выявляемость рака, сложности установления гистологической формы опухоли.

Из материала, полученного при бронхоскопии (торакоскопии, пункции) готовят традиционные мазки5 или, если получают жидкость или материал, помещают в контейнеры со стабилизирующим раствором (жидкостная цитология). В лаборатории с помощью цитоцентрифуги готовят тонкослойные препараты.

Мокрота – продукт патологического процесса (заболевания или повреждения) в дыхательной системе, выделяемый при кашлевом толчке. Свежевыделенную мокроту, полученную путем откашливания, собирают в чистую сухую широкогорлую склянку. Для получения полноценного материала должен быть “глубокий” кашель, собирать ее необходимо до еды, после чистки зубов. При подозрении на наличие злокачественной опухоли и отсутствии элементов рака при первом исследовании мокроту следует собирать три дня подряд. Собранную мокроту сразу же необходимо доставить в лабораторию, где ее нужно исследовать немедленно или хранить до исследования в холодильнике. Можно собирать мокроту в склянку с 40–50% спиртовым раствором (50 мл), в течение 3–5 дней, каждый раз после сбора тщательно встряхивая сосуд для того, чтобы мокрота перемешалась со спиртовым раствором.

Препараты готовят в лаборатории, распределяя отобранные под визуальным контролем комочки или, если мокрота собрана в спиртовый раствор, получают тонкослойные препараты с помощью цитоцентрифуги. В связи с тем, что клетки в мокроте часто подвержены дегенеративным изменениям, интерпретация клеточного состава может быть затруднена, поэтому метод применяют, в основном, как метод скрининга при отсутствии данных о злокачественном поражении, а также при предположительном диагнозе опухоли у тяжелых ослабленных больных.

Окрашивают препараты с помощью метода Романовского в любой модификации или гематоксилин-эозином. При исследовании мокроты один препарат окрашивают по Цилю-Нильсену для выявления кислотоустойчивых микобактерий.

Согласно рекомендациям Рабочей группы по бронхоальвеолярному лаважу Европейского респираторного общества, нормальным считают следующий состав бронхиальной порции жидкости БАЛ: бронхиальный эпителий – 5–20%, в том числе: цилиндрический – 4–15%, плоский – 1–5% альвеолярные макрофаги – 64–88%, нейтрофилы – 5–11%, лимфоциты – 2–4% , тучные клетки – 0–0,5%, эозинофилы – 0–0,5%. БАЛ является методом выбора для диагностики: опп ортунистических инфекций респираторной системы, протеиноза, гемосидероза легких, гистиоцитоза Х, профессиональной патологии, связанной с ингаляцией аэрозольных частиц.

По составу клеток выделяют несколько вариантов БАЛ:

  • лимфоцитарно-макрофагальный (саркоидоз, туберкулез, экзогенный аллергический альвеолит, альвеолярный протеиноз, пневмокониоз, коллагеновые болезни);
  • нейтрофильно-макрофагальный (идиопатический фиброзирующий альвеолит, гранулематоз Вегенера, коллагенозы, пневмокониозы, инфекционные болезни, в т.ч. туберкулез);
  • с увеличением числа эозинофилов (экзогенный аллергический альвеолит, бронхиальная астма, аспергиллез, эозинофильная пневмония, аллергия на лекарственные препараты в БАЛ);
  • макрофагальный вариант (у здоровых лиц, часто у курильщиков, а также при различных заболеваниях легких).

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, пользовательских данных (сведения о местоположении; тип и версия ОС; тип и версия Браузера; тип устройства и разрешение его экрана; источник откуда пришел на сайт пользователь; с какого сайта или по какой рекламе; язык ОС и Браузера; какие страницы открывает и на какие кнопки нажимает пользователь; ip-адрес) в целях функционирования сайта, проведения ретаргетинга и проведения статистических исследований и обзоров. Если вы не хотите, чтобы ваши данные обрабатывались, покиньте сайт.

Copyright ФБУН Центральный НИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора, 1998 — 2019

Центральный офис: 111123, Россия, Москва, ул. Новогиреевская, д.3а, метро «Шоссе Энтузиастов», «Перово»
+7 (495) 788-000-1, info@cmd-online.ru

! Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, пользовательских данных (сведения о местоположении; тип и версия ОС; тип и версия Браузера; тип устройства и разрешение его экрана; источник откуда пришел на сайт пользователь; с какого сайта или по какой рекламе; язык ОС и Браузера; какие страницы открывает и на какие кнопки нажимает пользователь; ip-адрес) в целях функционирования сайта, проведения ретаргетинга и проведения статистических исследований и обзоров. Если вы не хотите, чтобы ваши данные обрабатывались, покиньте сайт.

источник

Исследование мокроты — одно из первых диагностических мероприятий, применяемых у больных с легочной патологией.

Это исследование позволяет выявить даже carcinoma in situ.

Успех цитологической диагностики зависит от правильного сбора мокроты и ее обработки, а также правильной интерпретации цитологической картины.

Высокая эффективность цитологического исследования мокроты при выявлении рака может быть достигнута только путем ее последовательною четырех- или пятикратного исследования (ежедневно или через 1-2 дня).

Для анализа следует брать утреннюю порцию мокроты, откашливаемой больным натощак. В лабораторию мокроту доставляют не позднее 1-1 3/4, ч после откашливания. М. Clee и соавт. (1982) указывают также на необходимость быстрой фиксации мазков без высушивания, при котором нарушается ее структура.

Распознавание рака легкого на основании результатов исследования мокроты зависит от клилико-анатомической формы, типа роста и гистологической структуры опухоли, наличия ателектаза, квалификации врача-цитолога. При центральном раке опухолевые клетки в мокроте удается обнаружить у 52-88% больных: результативность метода при периферическом раке ниже — 33-61% (Агамова К.А., 1993).

Особую ценность имеет цитологическое исследование мокроты, полученной после бронхоскопии: выявляемость рака возрастает до 94% при центральном и до 13% при периферическом раке, а корреляция цитологических и гистологических Данных относительно типа рака легкого отмечается в 82-90% случаев.

В последние годы особое внимание уделяют уточнению дифференциально-диагностических цитологических критериев различных гистологических форм рака легкого для разных объектов, вопросам потенциально предраковых изменений бронхиального эпителия, поиску цитологических маркеров, отражающих состояние эпителия, предшествующее возникновению рака и патогенетически с ним связанное, т.е. дисплазию различной степени выраженности.

Морфологические проявления дисплазии используют как критерий для формирования групп повышенного риска развития злокачественных опухолей легких в программах скрининга раннего рака легкого (Зырянов Б.Н. и др., 1997; Quin D. et al., 1991; Strauss G. et al., 1993).

Детализированная цитологическая классификация предраковых состояний легких разработана в МНИОН им П.А. Герцена (Агамова К.А. и др., 1983): базально-клеточная гиперплазия; гиперплазия бокаловидных клеток; плоскоклеточная метаплазия бронхиального эпителия безатипии клеток; атипическая плоскоклеточная метаплазия бронхиального эпителия; дисплазия, подозрительная в отношении перехода в рак.

Частота распознавания плоскоклеточного рака на основании результатов исследования мокроты 60-65%, мелкоклеточного 54-61%, железистого 22-50% и крупноклеточного 30-42% (Wacha L. et al., 1979; Sanz O.J. et al., 1982).

По данным A. Ng и G. Horak (1983), результативность цитологического исследования мокроты составляет 88,2% (85% при плоскоклеточном, мелкоклеточном и крупноклеточном раке, 75% при аденокарциноме, бронхиолоальвеолярном и железисто-плоскоклеточном раке).

Они установили корреляцию между результатами цитологической диагностики и количеством исследований: при троекратном — 83%, пятикратном и более — 90%. По мере снижения дифференцировки опухолевых клеток показатель корреляции цитологических и гистологических данный снижается.

Исследование мокроты нередко позволяет в самом начале болезни, ло применения бронхоскопии, установить морфологический диагноз (рис. 3.42, 3.43). Это очень важно для тех больных, у которых клинико-рентгенологическая симптоматика заболевания скудна, диагноз рака сомнителен или его наличие не предполагается.


Рис. 3.42. Цитограмма мокроты при высокодифференцированном плоскоклеточном раке легкого. Окраска по Паппенгейму. х 400.


Рис. 3.43. Цитограмма мокроты при аденокарциноме легкого (умеренно дифференцированной). Окраска по Паппенгейму. х 400.

При цитологическом исследовании мокроты можно обнаружить предопухолевое состояние слизистой оболочки бронхов, включая эпидермоидную метаплазию и внутриэпителиальный рак.

Высока эффективность цитологического исследования мокроты при диагностике центрального рака легкого ранних стадий. При наличии опухоли, не выходящей за пределы устья сегментарного бронха (Т1), у большинства больных на основании результатов цитологического исследования мокроты удается морфологически верифицировать диагноз.

Элементы опухоли в мокроте довольно часто обнаруживают среди клеток метаплазированного эпителия. Таким образом, у большого числа больных центральным раком в стадии T1N0M0 опухоль выявляют при цитологическом исследовании до госпитализации и эндоскопического исследования.

Цитологические заключения о раке по мокроте оказываются правильными в 91-92% случаев, ложноположительными — в 1-6% наблюдений. Отсутствие элементов рака в мокроте не дает основания отрицать наличие опухоли легкого.

Достоинство метода заключается в том, что его можно применять амбулаторно. Если кашель отсутствует, то его вызывают искусственно с помощью специального аэрозоля — смеси 15% раствора хлорида натрия и 15% раствора пропиленгликоля.

Результативность цитологического исследования мокроты при злокачественных неэпителиальных опухолях легких значительно ниже, чем при раке легкого.

Только у 16% больных в мокроте находят атипические клетки, что позволяет диагностировать злокачественную опухоль легкого. Установить гистологический тип неэпителиальной злокачественной опухоли удается редко (рис. 3.44). Этот метод в ряде случаев является основным при оценке правильности диагноза.


Рис. 3.44. Цитограммы мокроты при нейросаркоме (а) и злокачественной фиброзной гистисицитоме (б). Окраска по Паппенгейму. х 400.

Затруднения, возникающие при морфологической верификации злокачественных неэпителиальных опухолей на основании исследования мокроты, можно часто объяснить тем, что чаще всего наблюдается периферическая клинико-анатомическая форма данного заболевания, хотя при цитологическом исследовании материала, полученного при бронхоскопии, верифицировать злокачественную опухоль удается в 4 раза чаще.

источник

Лекция №3. Тема: Роль медсестры в подготовке пациента к лабораторному исследованию. Гематологические исследования.

Содержание учебного материала:

1.Понятие и значение лабораторной диагностики.

2.Биологические материалы для лабораторных исследований.

3.Виды лабораторных исследований.

4.Роль медсестры в подготовке пациента к лабораторному исследованию

5.Алгоритм подготовки пациента к лабораторным исследованиям

6.Лабораторная посуда, транспортировка биоматериала

8.1. Условия, обеспечивающие достоверность результатов исследования крови

8.2. Содержание инструкции по подготовке к сдаче крови на исследование

8.3. Преимущества использования вакуумных систем для взятия крови на исследование.

8.4. Клинический (общий) анализ крови. Цель исследования. Подготовка пациента к исследованию.

8.5. Биохимическое исследование крови. Цель исследования. Подготовка пациента к исследованию.

8.6. Исследование крови на ВИЧ, сифилис. Цель исследования. Подготовка пациента к исследованию.

8.7. Другие исследования крови: иммунологические анализы, анализ крови на гормоны, анализ на онкомаркеры, коагулограмма. Цель исследования. Подготовка пациента к исследованию.

Понятие о лабораторной диагностике.

Лабораторная диагностика имеет на сегодняшний день огромное значение и является одним из главных помощников для врача в правильной постановке диагноза и соответственно в выборе метода лечения. Разнообразные медицинские анализы входят в основной комплекс обследования пациента и многие из них являются обязательными при первичном обращении к врачу или при поступлении в стационар. Лабораторная диагностика болезней не уступает по информативности другим методам обследования, таким как УЗИ-диагностика, рентгенодиагностика, и т. д. и эффективно дополняет их важными подробностями о состоянии здоровья пациента. Современная медицинская лаборатория в настоящее время имеется во многих клиниках, которые предлагают сдать анализы самого разнообразного значения и дать результат в кратчайшие сроки. Необходимо понимать, что сдать анализы необходимо правильно, только в этом случае лабораторная диагностика болезней будет эффективной. Если предлагается сдать анализы в любое удобное время для пациента, необходимо обязательно уточнить правила подготовки к исследованию. Так, например, анализ крови в клинике позволит дать точную интерпретацию результатов только в случае нескольких часов голодания до забора крови, а клинический анализ мочи очень чувствителен к правильному самостоятельному сбору и может быть собран только преимущественно в утренние часы.

Лабораторная диагностика – совокупность физико-химических, биохимических и биологических методов диагностики, исследующих отклонения в составе и изменения свойств тканей и биологических жидкостей больного, а также выявляющих возбудителей болезней.

Лабораторные анализы выполняются практически у всех пациентов, т.е. значительно чаще, чем другие дополнительные методы обследования пациента.

В клинической медицине методы лабораторной диагностики применяют: для подтверждения клинического диагноза или его уточнения, установления причины болезни (при генетических, инфекционных заболеваниях, отравлениях), для характеристики формы, тяжести течения и определения прогноза болезни, для выбора этиологической и патогенетической терапии, контроля за результатами лечения, для обнаружения патологии при скрининговых исследованиях в диспансеризируемых контингентах населения.

Материалом для лабораторных исследований могут служить различные биологические жидкости: кровь, моча, кал, желудочный сок, желчь, слюна, ликвор, сперма, выпотные жидкости (экссудаты, транссудаты), конденсат выдыхаемой влаги, а также ткань паренхиматозных органов, получаемая способом биопсии.

Биологический материал исследуется в медицинских лабораториях, основным видом которых является клинико-диагностическая лаборатория (КДЛ). В многопрофильных больницах и поликлиниках КДЛ производят общеклинические, гематологические, биохимические, иммунологические, цитологические, серологические, микробиологические и другие виды исследований.

Основные направления лабораторной диагностики. В большом многообразии лабораторной диагностики можно выделить два основных направления, это клинические медицинские анализы и биохимические медицинские анализы. Одно из самых главных мест, можно условно отдать клинической лабораторной диагностике. Клинические анализы знакомы многим и редкий человек никогда не сдавал подобные медицинские анализы. Это первые анализы, которые необходимо сдать при первичном обращении к врачу. Такие анализы являются относительно простыми, быстрыми и достаточно информативными, т. к. содержат основные показатели и отражают главные признаки неблагополучия.

Клинический анализ крови рекомендуется не только при появлении жалоб, но и необходим для профилактических осмотров. Для того чтобы сдать анализы крови на клинику общей картины состояния человека, необходимо обратиться в лабораторию предпочтительно в утренние часы после ночного голодания. В некоторых случаях это правило не соблюдается, например, если пациент требует срочного обследования, или если анализ крови берётся у грудного ребёнка.

Не меньшее значение имеет и клинический анализ мочи. Этот анализ является также очень распространённым и позволяет заподозрить заболевания мочеполовой системы, заболевания эндокринной системы или выявить различные нарушения обмена веществ. Чтобы правильно сдать анализ мочи необходимо заранее подготовить чистую сухую банку ёмкостью около 200 мл. Мочу на клинический анализ мочи пациент собирает самостоятельно, в утренние часы, совершив предварительно гигиенический туалет наружных половых органов. Для анализа мочи требуется собрать именно среднюю порцию мочи, т. к. это может повлиять на результат. Женщинам не рекомендуется сдавать анализ мочи в период менструации. Необходимое количество мочи для анализа взрослому человеку — около 100 мл.

Читайте также:  Окраска мокроты в цитологии

Исследования кала позволяют оценить состояние желудочно-кишечного тракта, а также обнаружить присутствие гельминтов. Как правило, сдать анализ кала можно без специальной подготовки. В некоторых случаях, перед тем, как сдать анализ кала требуется соблюдать определённую диету в течение нескольких дней до сдачи анализа. Обычный клинический анализ кала собирается пациентом самостоятельно. Материал на анализ необходимо собирать утром, но допускается сбор кала и в вечерние часы. Кал на анализ берут из разных мест исследуемого материала. Обычно для анализа требуется около 10 г.

Как видно, медицинские анализы играют в медицине огромную роль, и важное значение имеют правила сбора материала и, конечно, выбор хорошего центра лабораторной диагностики, которая должна отвечать всем требованиям состояния материально-технической базы.

Хорошая лаборатория, анализы в которой сдаются в соответствующих оптимальных условиях и лаборатория, анализы в которой подвергаются в основном ручным методам исследования, могут отличаться в результатах. Помните о том, что интерпретацию результатов следует доверять специалисту и не следует делать поспешных выводов при самостоятельном выявлении некоторых отклонений от нормы показателей сданного анализа.

Лабораторная посуда — специальные и специализированные ёмкости различного конструктивного исполнения, объема, и изготовляемые из разнообразных материалов, устойчивых в агрессивных средах. При необходимости, лабораторная посуда обладает необходимой термостойкостью, прозрачностью и другими нужными физическими свойствами. Перед применением лабораторной посуды она должна быть хорошо вымыта и простерилизована. Для этого её моют ершами или в моечной машине с мыльно-содовым раствором, раствором тринатрийфосфата или моющего порошка. Чистую посуду промывают проточной водой и сушат в сушильном шкафу. При необходимости достижения стерильности лабораторную посуду заворачивают в плотную бумагу и стереилизуют в аэростериле при 160—180 °C 45—60 мин. или в автоклаве при температуре 120 °C 20—30 мин.

Виды лабораторий:

1. Клиническая – проводят общий анализ крови, общий анализ мочи, общий анализ мокроты, кал на яйца гельминтов и др. Срок получения данных 2-3 часа;

2. Биохимическая – проводят такие анализы как ФПП, ПТИ, диастаза. Срок получения данных 1-2 суток;

3. Бактериологическая – проводят анализ крови на стерильность, бак. анализ мочи, кала, мокроты. Сроки получения данных 7-10 дней;

4. Иммунологическая – анализ крови на ВИЧ. Сроки получения данных 7-10 дней.

источник

Подготовка пациента к лабораторным методам исследования: взятие мокроты. Самостоятельная работа студентов по ПМ.04

Самостоятельная работа студентов по ПМ.04

Выполнение работ по должности служащего 24232 «Младшая медицинская сестра по уходу за больными»

Тема занятия: Подготовка пациента к лабораторным методам исследования: взятие мокроты

Задачи данной работы в формировании у студентов: навыка анализа и синтеза изучаемого материала, способность осуществлять внутрипредметные связи и способность применять межпредметные связи.

Выполните задания в тетради письменно

Задание №1. Заполние таблицу, виды лабораторий

Задание №2. Что необходимо объяснить пациенту перед взятием мокроты на исследование?

Задание №3. Как обработать карманную плевательницу?

Задание №4. Составьте тезисы к памятке по подготовке пациента к клиническому (общему) анализу мокроты:

Задание № 5. Перечислите общие меры предосторожности при заборе и транспортировке биологического материала:

Решите ситуационные задачи письменно в тетради, с обоснованием ответа

Задача 1 . У пациента вязкая, плохо отхаркивающаяся мокрота, в связи, с чем он не может собрать ее на исследование. Участковая медсестра порекомендовала пациенту для лучшего отхождения мокроты прием щелочи (щепотку гидрокарбоната натрия на 1 стакан теплого молока, пить небольшими глотками с интервалом 5-10 минут), настой термопсиса или девясила, горчичники и банки, самомассаж грудной клетки. Согласны ли Вы с действиями медсестры? Почему?

Задача 2 . Собирая мокроту для общего анализа, пациент заметил примесь крови и сообщил об этом медсестре. Тактика медсестры?

Задача 3. Медсестра проинструктировала пациента о порядке сбора мокроты на общий анализ следующим образом: утром до еды после чистки зубов собирается 30-50 мл мокроты и банка оставляется в специальном ящике на полу в санитарной комнате. Какая допущена ошибка?

Задача 4. Медсестра, доставляя в баклабораторию собранную мокроту, обнаружила, что две банки не имеют крышек. Тактика медсестры.

Задача 5. Пациент интересуется результатами цитологического исследования мокроты. Тактика медсестры?

Задача 6. Молодая женщина собрала мокроту для общего анализа. На следующий день из лаборатории был получен ответ, что собранный материал для исследования непригоден, так как в ней преобладают слона и слизь из носоглотки. Научите пациентку правильно собирать мокроту.

Задача 7 . В направлении, приложенном к банке с мокротой, медсестра указала Ф.И.О. пациента, N палаты и отделения, предполагаемый диагноз и цель исследования, дату и свою подпись. Правильно ли оформлено направление?

Задача 8. Врач назначил пациенту посев мокроты на БК. Подготовьте посуду и оформите направление.

Задача 9. Пациенту назначено исследование мокроты на общий анализ. Медсестра выдала пациенту чистую карманную плевательницу темного стекла и объяснила, что он должен собрать мокроту утром до еды, предварительно вычистив зубы и тщательно прополоскав рот. Согласны ли Вы с действиями медсестры?

Задача 10. В направлении, приложенном к банке с мокротой, указана фамилия, имя, отчество, отделение, палата и дата. Все ли необходимые сведения указаны?

Задача 11. Для сбора мокроты на определение чувствительности флоры к антибиотикам, медсестра предложила пациенту чистую сухую банку с крышкой. Правильно ли поступила медсестра?

Задача 12. Медсестра взяла у пациента мокроту на ВК в чистую сухую банку светлого стекла и доставила ее в баклабораторию на исследование. Допущена ли ошибка медсестрой?

Задача 13. Больной отказался собирать мокроту для исследования на БК, мотивируя отказ тем, что её выделяется слишком мало. Тактика медсестры?

источник

В.Ю. Мишин

Для диагностики и дифференциальной диагностики туберкулеза и других заболеваний легких в клинической практике широко используют цитологические методы исследования, которые состоят из двух этапов: клинического и микроскопического.

Клиническое исследование дает представление о том, каким методом и как правильно собрать материал, чтобы получить оптимальный результат в самые короткие сроки.

Существует два основных вида материала из легких, подлежащих цитологическому исследованию:

  • эксфолиативный материал — мокрота, которая бывает спонтанной и редуцированной, полученной с помощью различных раздражителей (отхаркивающих средств, раздражающих ингаляций и др.);
  • биопсийный материал, полученный при трансторакальной игловой биопсии и с помощью бронхологических методов исследования (чрезбронхиальная щипцовая биопсия легких, игловая биопсия легких и внутригрудных лимфатических узлов, браш-биопсия и соскоб слизистой бронха, эндокавитарная биопсия, аспираты, бронхоальвеолярный лаваж — БАЛ).

Цитологическое исследование проводят на основе изучения макро-, микроскопического и цитологического анализа мокроты.

При исследовании мазков, окрашенных по гематологической методике, ряд признаков, свойственных той или другой ткани, выявляется значительно ярче, чем при исследовании нативных препаратов. Это имеет существенное значение для цитологического заключения. Наиболее информативной для цитологического исследования считают мокроту, собранную утром, натощак, и которая хранится не более 2— 4 ч до начала исследования.

Количество проб, необходимых для исследования при туберкулезе — две-три, при подозрении на опухоль — пять-шесть.

У больных активным туберкулезом легких мокрота чаще всего гнойная или слизисто-гнойная. При микроскопическом исследовании препаратов слизисто-гнойной мокроты, окрашенных по гематологической методике, выявляются скопления мононуклеарных клеток, в основном альвеолярных макрофагов, лимфоцитов и эпителиоидных клеток с примесью небольшого количества нейтрофилов в стадии деструкции.

При микроскопическом исследовании гнойной мокроты число нейтрофилов возрастает и становится преобладающим; иногда они располагаются на фоне казеозного некроза.

У 14—32% больных активным туберкулезом легких можно обнаружить элементы эпителиоидно-клеточной гранулемы: эпителиоидные клетки и гигантские клетки Пирогова-Лангханса. Кроме этого, в мокроте часто встречаются скопления эозинофилов, появление которых чаще связано с приемом химиопрепаратов, но может быть также проявлением местных аллергических реакций на туберкулезную инфекцию.

Цитологическая картина мокроты больных туберкулезом имеет некоторые особенности. Она отличается своеобразным розовато-фиолетовым фоном, обусловленным наличием казеозного детрита, располагающегося в виде аморфных масс, и нейтрофилами преимущественно в стадии полного расплавления.

Определенное диагностическое значение имеет обнаружение так называемой тетрады Эрлиха, составными элементами которой являются обызвествленные эластические волокна, кристаллы холестерина, соли аморфных фосфатов, МБТ, чаще в виде мелких осколков; иногда находят неполную тетраду. Ее наличие указывает на обострение старых, обычно обызвествленных, очагов в легких.

Указанная выше цитологическая картина мокроты характерна преимущественно для выраженных активных форм туберкулеза. При неактивном и менее выраженном туберкулезном процессе мокрота не имеет специфических цитологических черт. В этих случаях обнаруживаются только клетки плоского эпителия, альвеолярные макрофаги и нейтрофилы, что не является специфичным для туберкулеза. Подобная картина наблюдается при различных процессах в легких и верхних дыхательных путях нетуберкулезного происхождения.

Цитологическое исследование мокроты наиболее показано при дифференциальной диагностике туберкулеза и опухолей легких, грибковых поражениях, гемосидерозе, аденоматозе, средостенно-легочной формы лимфогранулематоза.

Цитологическое исследование материала биопсии. Наибольшее распространение в последние десятилетия получили бронхологические методы взятия биопсийного материала для цитологического исследования. Это связано с их малой травматичностью по сравнению с другими методами (трансторакальной игловой и открытой биопсией легких) и возможностью проведения комплекса биопсий у одного больного, что позволяет повысить результативность исследования.

Метод трансторакальной игловой биопсии легкого показан при отрицательных результатах цитологического исследования мокроты и материала, полученного при бронхоскопии. Наилучшие результаты цитологического исследования при использовании вышеуказанного метода получают при наличии туберкулем и крупноочаговых изменений в легких, расположенных субплеврально.

Эффективность этих методов различна при разных заболеваниях, а также зависит от квалификации бронхолога, хирурга и цитолога, правильного выбора вида биопсии.

При взятии материала с помощью трансторакальной игловой биопсии легкого и комплекса биопсий при бронхоскопии препараты готовит врач, выполняющий исследование, или специально обученная медицинская сестра. После высушивания их на воздухе препараты доставляют в лабораторию, где окрашивают гематологическими красителями.

При микроскопическом исследовании туберкулезное воспаление проявляется в основном двумя морфологическими критериями: формированием эпителиоидно-клеточных гранулем и образованием, чаще в их центре, казеозного некроза, представляющего собой аморфные бесструктурные массы фиолетового цвета, которые часто содержат вкрапления солей извести.

При туберкулезе чаще встречаются гигантские клетки Пирогова-Лангханса.
При длительно текущем туберкулезном воспалении наблюдаются наличие фиброзных изменений, кальцинация участков казеозного некроза. При разжижении казеозных масс отмечается выраженная нейтрофильная инфильтрация, дистрофические изменения эпителиальных клеток.

Сложность дифференциальной диагностики туберкулеза и других гранулематозных заболеваний легких с морфологической точки зрения заключается в том, что легкое на любое длительно протекающее воспаление как специфической, так и неспецифической природы, на любой персистирующий в тканях агент органической и неорганической природы реагирует относительно мономорфной картиной, сопровождающейся в большинстве случаев образованием гранулем, которые при разных заболеваниях имеют свои морфологические особенности, не всегда, к сожалению, позволяющие дифференцировать эти заболевания.

Поэтому при проведении дифференциальной диагностики туберкулеза с другими гранулематозными и диссеминированными процессами в легких наиболее эффективным является параллельное применение чрезбронхиальной щипцовой биопсии легкого, дополненное БАЛ с использованием для их изучения комплекса цитологических методов исследования.

Цитологическое исследование жидкости бронхоальвеолярного лаважа (БАЛ-жидкость). БАЛ считается одним из наиболее безопасных методов получения диагностического материала, а возможность его многократной повторяемости является важным условием для инструментального контроля течения патологического процесса в легком.

Для цитологического исследования БАЛ-жидкости достаточно 10 мл смыва, который сразу же после получения его от больного фильтруют через четыре слоя марли или мелкую металлическую сетку в центрифужную силиконизированную пробирку. После этого определяют цитоз (количество клеток в 1 мл смыва) и процент жизнеспособности альвеолярных макрофагов в камере Фукса-Розенталя.

Оставшуюся профильтрованную БАЛ-жидкость центрифугируют при комнатной температуре в течение не менее 10 мин со скоростью 1500 об/мин на обычной центрифуге или цитоцентрифуге. Из осадка готовят мазки, которые высушивают, фиксируют и окрашивают краской Романовского в течение 4 мин.

Эндопульмональная цитограмма определяется на основании подсчета 500 клеток; при этом учитывают альвеолярные макрофаги, лимфоциты,
нейтрофилы, эозинофилы, базофилы и др. Клетки бронхиального эпителия при подсчете цитограммы БАЛ -жидкости не учитывают.

Клеточный состав БАЛ-жидкости у здоровых некурящих лиц содержит 93±5% альвеолярных макрофагов, 7±1% лимфоцитов и менее 1% нейтрофилов, эозинофилов, базофилов. Общее количество клеток в
1 мл смыва варьирует в среднем от 0,002 до 0,15 ,0; жизнеспособность альвеолярных макрофагов 90% и более.

При различных патологических процессах происходят изменения в соотношении клеточных элементов БАЛ-жидкости, причем эти изменения имеют определенную направленность в зависимости от этиологии и активности заболевания.

При туберкулезе наряду с лимфоцитозом (25—60%) отмечается увеличение количества нейтрофилов, в основном при вторичных формах активного специфического процесса (фиброзно-кавернозный и цирротический туберкулез).

При первичном туберкулезе с поражением внутригрудных лимфатических узлов отмечается лимфоцитоз. Соотношение лимфоцитов и нейтрофилов в эндопульмональной цитограмме при туберкулезе зависит от формы, распространенности и активности специфического процесса, а также наличия сопутствующих неспецифических воспалительных заболеваний бронхов и легких. Возможно выявление типичных МБТ или их зернистых шаров £-форм.

При различных формах туберкулеза в фазе стабилизации и обратного развития процесса эндопульмональная цитограмма близка к норме.
Для саркоидоза и экзогенно-аллергического альвеолита характерен лимфоцитоз в активной фазе процесса наряду с увеличением содержания общего количества клеток. Впрочем, при саркоидозе лимфоцитоз отражает степень активности процесса и не зависит от формы заболевания.

При ряде заболеваний (злокачественные новообразования, гемосидероз, гистиоцитоз, альвеолярный протеиноз, микозы, эхинококкоз и др.) в БАЛ-жидкости обнаруживают клетки и специфические признаки, характерные для этих заболеваний, позволяющие установить диагноз, что особенно важно при наличии противопоказаний к биопсийным методам.

источник